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domingo, 17 de junio de 2018

Zooropsis spinimana (la araña de Julia y Gabri)

Hoy voy a hablaros de otra araña araneomorfa de la Superfamilia Heteropodoidea que se encontró el otro día mi amiga Julia en su casa. Como no podía llamar a Frank de la Jungla para que le sacase ese centollo de casa, no fuese a ser que les picase, lo metió en un Tuper y me llamó a mí.

Lo primero que le dije a mi amiga Julia es que las arañas no suelen picar a los humanos excepto que se las moleste, sea intencionadamente o sin querer (cosa mas frecuente), pero lo cierto es que de esta especie sí se han reportado casos de picadura a humanos en Francia (Emerit y Bonaric 1995 citados en Griswold y Ubick 2001). Pero no adelantemos información.

En el momento de recogerla me preguntaron como podía haber llegado a entrar ese centollo dentro de su domicilio, y la explicación inmediata fue que como el caso de Tegenaria, que tiene una especie doméstica, hay mas arañas con ese comportamiento y a buen seguro esta era una de ellas o bien podría ser un macho errante en busca de hembra con la que aparearse.

En este caso estamos hablando de una araña doméstica que además de tener origen en el Mediterraneo  es la única especie de su género que ya se encuentra en América del Norte porque se introdujo accidentalmente en el centro de California, habiéndose registrado por primera vez en la región de la Bahía de San Francisco en el otoño de 1992 (Griswold y Ubick 2001, Bradley 2013).

Si hacemos memoria, dentro de la Superfamilia Heteropodoidea Thorell, 1873, podemos encontrar en la península Ibérica las siguientes familias
  • Familia Clubionidae
  • Familia Corinnidae
  • Familia Eutichuridae
  • Familia Gnaphosidae
  • Familia Heteropodidae
  • Familia Liocranidae
  • Familia Miturgidae
  • Familia Prodidomidae
  • Familia Selenopidae
  • Familia Sparassidae
  • Familia Zodariidae
  • Familia Zoridae
  • Familia Zoropsidae

La araña en cuestión pertenece a la Familia Zoropsidae Bertkau, 1882 por lo que podemos decir que es un Zorópsido.

Zoropsidae es una palabra que deriva del griego "zoros, -os, -on" que significa puro + "opsis" que significa aspecto.

Los Zorópsidos son las únicas arañas cribeladas que no construyen telas sino que suelen cazar a sus presas. Sus ocho ojos se disponen en dos filas transversales, pero la trasera está tan arqueada que se podría hablar también de tres filas. Por su aspecto recuerdan mucho a los Licósidos lo que hace que vulgarmente se las conozca como falsas arañas lobo. En el área mediterránea aparecen cuatro especies, una últimamente también al norte de los Alpes. Son arañas que se encuentran en casi todo el mundo, excepto las partes septentrionales de Eurasia y Norteamerica.

Se reconocen los siguientes géneros dentro de esta familia:
  • Akamasia Bosselaers, 2002 — Chipre
  • Anachemmis Chamberlin, 1919 — USA, México
  • Austrotengella Raven, 2012 — Australia
  • Birrana Raven & Stumkat, 2005 — Australia
  • Cauquenia Piacentini, Ramírez & Silva, 2013 – Chile
  • Ciniflella Mello-Leitão, 1921 — Brasil
  • Devendra Lehtinen, 1967 — Sri Lanka
  • Griswoldia Dippenaar-Schoeman & Jocqué, 1997 — Sudáfrica
  • Hoedillus Simon, 1898 — Guatemala
  • Huntia Gray & Thompson, 2001 — Australia
  • Itatiaya Mello-Leitão, 1915 — Brasil
  • Kilyana Raven & Stumkat, 2005 — Australia
  • Krukt Raven & Stumkat, 2005 — Australia
  • Lauricius Simon, 1888 — USA, México
  • Liocranoides Keyserling, 1881 — USA
  • Megateg Raven & Stumkat, 2005 — Australia
  • Phanotea Simon, 1896 — Sudáfrica
  • Pseudoctenus Caporiacco, 1949 - Kenia, Malaui
  • Socalchemmis Platnick & Ubick, 2001 — USA, México
  • Takeoa Lehtinen, 1967 — China, Corea, Japón
  • Tengella Dahl, 1901 — México a PanamáTitiotus Simon, 1897 — USA
  • Uliodon L. Koch, 1873 — Nueva Zelanda, Australia
  • Wiltona Koçak & Kemal, 2008 — Nueva Zelanda
  • Zorocrates Simon, 1888 - América central y septentrional (estados meridionales de USA)
  • Zoropsis Simon, 1878 — Mediterráneo, Ucrania, Corea

Dentro de estos géneros incluimos 87 especies descritas (Platnick 2014) aunque es probable que este número casi se duplique cuando termine el estudio de revisión de los zoropsidos de Madagascar que están haciendo Charles Griswold y sus colaboradores).

El género que vamos a tratar es Zoropsis Simon, 1878 del que en la Península ibérica tenemos tres especies:
  • Zoropsis bilineata
  • Zoropsis media
  • Zoropsis spinimana

Zoropsis spinimana


Esta es una especie mediterránea (hasta Bretaña en el norte), África del Norte y Rusia. Se introdujo en los Estados Unidos, principalmente en la Bahía de San Francisco desde al menos 1995. En 2005 se encontró por primera vez en Alemania; desde entonces se han multiplicado las citas en la zona del Rin Superior y en Renania del Norte-Westfalia. Todos los hallazgos por encima de los Alpes han sido en casas.


Habita en los bosques, pero también en zonas oscuras de los hogares.

Esta araña mide 10 - 13 mm el macho, 10 - 19 mm la hembra. Generalmente es de color marrón amarillento a marrón grisáceo. El cefalotórax tiene dos bandas longitudinales oscuras, casi tan anchas como los espacios libres medial y lateral que las unen. El espacio central está dividido por una línea oscura. La disposición de los pelos blancos sobre un fondo marrón es característica y evoca una "cabeza de Nosferatu". En el abdomen tiene una banda meda oscura que, a partir de la mitad de la longitud, se transforma en una línea ramificada, estando el extremo de dichas ramas marcado con puntos claros. Las patas son largas y robustas y de color rojizo con manchas negras.


El macho es similar a la hembra pero es más pequeño y usualmente con un abdomen más pequeño.


Durante el día permanece escondida bajo la corteza de los árboles o alguna piedra, pero de noche sale a cazar. Tiene un comportamiento agresivo con otras especies de araña puede capturar otras arañas como Tegenaria atrica.

Bradley (2013) señala que esta araña a veces asume una postura defensiva cuando se la molesta, levantando las patas delanteras y extendiendo sus colmillos, pero huirá si se le da la oportunidad (Griswold y Ubick 2001 informan que los especímenes cautivos no eran agresivos).


Los adultos aparecen de otoño a primavera.

En primavera, La hembra teje y cuida un capullo blanco y plano, bajo una corteza pelada y lo cubre con una seda azul brillante.


Esta especie se puede confundir con algunos Lycosidae, pero la disposición de los ojos es diferente: en ambas familias, los ocho ojos se dividen en tres filas (4-2-2) y los ojos posteriores centrales y laterales son ligeramente más grandes que los cuatro ojos delanteros pequeños. Pero en Zoropsis, sus cuatro ojos pequeños están más dispersos a lo largo del primer tercio del cefalotórax. El dibujo de su cefalotórax es menos definido, sus patas delanteras son de un solo color marrón moteado y sus quelíceros son negros.


jueves, 14 de junio de 2018

Pisaura mirabilis (2)

Ya he hablado en una ocasión de Pisaura mirabilis y conocemos su clasificación taxonómica:

    Filo: Arthropoda
    Subfilo: Chelicerata
    Clase: Arachnida
    Orden: Araneae
    Suborden: Araneomorphae
    Superfamilia: Lycosoidea
    Familia: Pisauridae
    Género: Pisaura
    Especie: Pisaura mirabilis (Clerck, 1757)

Lo que creo que no conté en su día es que Eugène Simon tomó el nombre de esta especie del latín "Pisaurum" que es el río Pesaro situado en Italia. El término mirabilis también procede del latín "mirabilis, -e" que significa maravilloso.
 
 
Pisaura mirabilis
 
A esta araña se la denomina vulgarmente “Araña lobo”, aunque como sabemos ya, no pertenece a la familia Lycosidae, que es la que engloba a las arañas realmente conocidas como “Arañas lobo”. 
 
 
 Pisaura mirabilis
 
Pisaura mirabilis es de distribución paleártica, se puede encontrar por toda Europa, Norte de África, Macaronesia, la parte asiática de Rusia y China. Habita en zonas abiertas o algo umbrías, especialmente en márgenes de bosques y de caminos, ya que prefiere los ambientes húmedos, como herbazales o pantanos, aunque también se la puede encontrar en dunas, márgenes de bosques, setos, matorrales, etc. Habita en todos los estratos, desde el suelo hasta la cima de los árboles, pero no bajo rocas o en cuevas. En el centro de Europa, casi en todas partes frecuente. En los Alpes, hasta los 1000 m de altura. Es la unica especie del género presente en la península ibérica por lo que no tenemos problemas en España para distinguirla.
 
 
Pisaura mirabilis
 
La Nueva guía de campo de Aráqnidos de Europa de Heiko Bellmann la describe de la siguiente manera:

Con una longitud corporal de 11-15 mm en la hembra y 10-12 m en el mcho, es la especie mas pequeña de la familia. Relativamente esbelta y de patas largas, recuerda algo a los Agelénidos.

Color pardo grisáceo claro o pardo amarillento a pardo oscuro, en el macho por lo general perceptiblemente mas oscuro que en la hembra. 

En el dorso del prosoma, una banda longitudinal oscura de contornos indefinidos con una lista clara en medio. 

Opistoma con manchas angulares oscuras, en general no muy nítidas, en el dorso, y en los costados una línea ondulada oscura. 

En la región cefálica, una mancha triangular oscura que desde la base de los quelíceros llega hasta los ojos mediotraseros. 

Adultos en mayo y junio, las hembras aún en julio.
 
 
Pisaura mirabilis
 
 
Pisaura mirabilis
 

Pisaura mirabilis 


 
 Pisaura mirabilis

martes, 12 de junio de 2018

Sphaerophoria rueppelli

En esta ocasión vamos a conocer más cosas de un sírfido por lo que de momento podemos decir de la clasificación taxónomica del animalillo lo siguiente:

Filo Arthropoda
Subfilo Hexapoda
Clase Insecta
Orden Diptera
Suborden Brachycera
Familia Syrphidae

Como ya sabemos la familia Syrphidae se clasifica de la siguiente manera:
  • Subfamilia Eristalinae
  • Subfamilia Syrphinae
  • Subfamilia Microdontinae.
En la Península ibérica podemos encontrar representantes de los siguientes géneros de cada una de estas subfamilias:

Eristalinae 
  • Género Arctophila
  • Género Blera
  • Género Brachyopa
  • Género Brachypalpoides
  • Género Brachypalpus
  • Género Caliprobola
  • Género Callicera
  • Género Ceriana
  • Género Chalcosyrphus
  • Género Chamaesyrphus
  • Género Cheilosia
  • Género Chrysogaster
  • Género Criorhina
  • Género Eristalinus
  • Género Eristalis
  • Género Eumerus
  • Género Ferdinandea
  • Género Helophilus
  • Género Lejogaster
  • Género Mallota
  • Género Melanogaster
  • Género Merodon
  • Género Milesia
  • Género Myathropa
  • Género Myolepta
  • Género Neoascia
  • Género Orthonevra
  • Género Parhelophilus
  • Género Pelecocera
  • Género Platynochaetus
  • Género Portevinia
  • Género Psilota
  • Género Rhingia
  • Género Riponnensia
  • Género Sericomyia
  • Género Sphegina
  • Género Sphiximorpha
  • Género Spilomyia
  • Género Syritta
  • Género Temnostoma
  • Género Tropidia
  • Género Volucella
  • Género Xylota

Syrphinae
  • Género Baccha
  • Género Chrysotoxum
  • Género Dasysyrphus
  • Género Didea
  • Género Doros
  • Género Epistrophe
  • Género Epistrophella
  • Género Episyrphus
  • Género Eupeodes
  • Género Heringia
  • Género Ischiodon
  • Género Leucozona
  • Género Melangyna
  • Género Melanostoma
  • Género Meligramma
  • Género Meliscaeva
  • Género Paragus
  • Género Parasyrphus
  • Género Pipiza
  • Género Pipizella
  • Género Platycheirus
  • Género Scaeva
  • Género Sphaerophoria
  • Género Syrphus
  • Género Trichopsomyia
  • Género Xanthandrus
  • Género Xanthogramma
Microdontinae
  • Género Microdon


En cuanto a los adultos de la subfamilia syrphinae sabemos que hay géneros que tienen la cara toda negra mientras que algunos tienen zonas de la misma de color amarillo, que los mismo puede pasar con su tórax, que algunos tienen forma mas aplastada que otros, que tienen diferentes tamaños según los géneros, que algunos son glabros y otros tienen algo de pelo y que no tienen pelos en los húmeros.

La subfamilia Syrphinae comprende a su vez cuatro tribus: Bacchini, Paragini, Syrphini y Toxomerini.

La mayoría de las larvas de los individuos pertenecientes a la tribu Syrphini se alimentan de pulgones o áfidos y otros insectos similares. Los géneros incluidos en  la tribu Syrphini son muchos (puedes consultarlos en lo que dije cuando hable por primera vez de los sírfidos)

En esta ocasión nos interesa de nuevo el género Sphaerophoria Lepeletier & Serville, 1828 que en la península ibérica presenta las siguientes especies:
  • Sphaerophoria interrupta (Fabricius, 1805)
  • Sphaerophoria laurae Goeldlin, 1989
  • Sphaerophoria rueppelli (Wiedemann, 1830)
  • Sphaerophoria scripta (Linnaeus, 1758)
  • Sphaerophoria taeniata (Meigen, 1822)
  • Sphaerophoria virgata Goeldlin de Tiefenau, 1974

De Sphaerophoria scripta (Linnaeus, 1758) ya he hablado en una ocasión,  ahora le toca a Sphaerophoria rueppellii.

Sphaerophoria rueppellii (Wiedemann, 1820)

Son sínonimos del nombre taxonómico de esta especie los siguientes: Syrphus rueppellii Wiedemann, 1820; Sphaerophoria flavicauda Zetterstedt, 1843 y Sphaerophoria nitidicollis Zetterstedt, 1849.

Sphaerophoria rueppellii es autóctona del área Mediterránea.  Se distingue con relativa facilidad de las otras especies de Sphaerophoria que se pueden encontrar en la península por su dibujo de franjas amarillas en el abdomen. Los sexos se diferencias porque los machos tienen el final del abdomen redondeado y rojo mientras que las hembras tienen el abdomen terminado en punta. 


Las hembras depositan los huevos cerca de colonias de pulgón pues las larvas se alimentan fundamentalmente de áfidos, aunque también pueden alimentarse de otras especies plaga como mosca blanca, trips y araña roja. En ausencia de pulgón, las hembras pueden poner huevos en colonias de mosca blanca.  
 

Las larvas llegan a depredar 40 especies de pulgones diferentes con una media de 200 pulgones por larva durante toda la fase larvaria, que a temperaturas medias de 25ºC dura unos nueve días y se compone de 3 estadíos, tras las cuales pasan a una fase de pupa, en la que dejan de alimentarse y adquieren forma de lágrima. Las pupas pueden encontrarse tanto en el sustrato como en las hojas del cultivo. De las pupas emergen los adultos, que tras madurar sexualmente y copular, pondrán huevos cerca de las colonias de pulgón, cerrando el ciclo. El desarrollo desde huevo a adulto reproductor dura unos 21 días. Cada hembra puede poner hasta 400 huevos a lo largo de su vida. 


Este sírfido se utiliza como control biológico de las plagas de pulgones y por ser una especie propia de los ecosistemas mediterráneos, su uso en el control biológico no lleva asociados los principales problemas que se derivan de la liberación de especies alóctonas como son: la ineficacia en el control de la plaga, la competencia con otros enemigos naturales y la posible conversión en especie invasora con el resurgimiento de nuevos desequilibrios ecológicos. Además la especie Sphaerophoria rueppellii está adaptada a las condiciones extremas de temperatura y humedad presentes en cultivos del área Mediterránea, incluidos los de invernadero, y su eficacia en dichos medios está probada.




Graphosoma lineatum (segunda parte)

Hace ya tiempo hablé y mostré fotografías de Graphosoma lineatum, la chinche rayada que casi todos hemos visto en alguna ocasión. Aproveche aquella ocasión para hacer una introducción de los pentatómidos, pero a partir de la Supefamilia Pentatomoidea no profundicé demasiado.

Creo llegado el momento de hacerlo con la excusa de mostrar algunas fotografías más que hice de esta chinche esta primavera pasada y para contar lo que nos podemos encontrar en España en cuanto a  la Familia Pentatomoidea.

De entrada recordemos pues lo siguiente:

Filo Arthropoda von Siebold, 1845
Subfilo Hexapoda Latreille, 1825
Clase Insecta Linnaeus, 1758
Orden Hemiptera Linnaeus, 1758
Suborden Heteroptera Latreille, 1810
Infraorden Pentatomomorpha Leston, Pendergrast & Southwood, 1954

Fue Henry (1997) quien en un análisis filogenético de este infraorden demostró la existencia de 6 superfamilias:
  • Superfamilia Aradoidea
  • Superfamilia Coreoidea
  • Superfamilia Idiostoloidea
  • Superfamilia Lygaeoidea
  • Superfamilia Pentatomoidea
  • Superfamilia Pyrrhocoroidea

La Superfamilia Pentatomoidea Leach, 1815
apareció muy pronto en la línea evolutiva de este infraorden con inumerables sinapomorfias que son la base de la monofilia de este grupo: huevos en forma de barril con una lñinea de ruptura circular, tricobótrios pares laterales y càpsula genital especializada  con abertura caudal. Hoy reconocemos las siguientes familias dentro de esta superfamilia:
  • Familia Urostylididae
  • Familia Saileriolidae
  • Familia Acanthosomatidae Stal 1865
  • Familia Tessaratomatidae
  • Familia Dinidoridae
  • Familia Cydnidae Billberg
  • Familia Thaumastellidae
  • Familia Corimelaenidae
  • Familia Lestoniidae
  • Familia Phloeidae
  • Familia:Scutelleridae Leach 1815
  • Familia Plataspididae Dallas
  • Familia Pentatomidae Leach 1815
  • Familia Canopidae
  • Familia Megarididae

En la Península ibérica solamente encontraremos ejemplos de las seis siguientes:
  • Familia Acanthosomatidae
  • Familia Cydnidae
  • Familia Pentatomidae
  • Familia Plataspidae
  • Familia Scutelleridae
  • Familia Thyreocoridae

La família Pentatomidae Leach, 1815 constituye un grupo monofilético que engloba a siete subfamilias:
  • Subfamilia Discocephalinae
  • Subfamilia Edessinae
  • Subfamilia Stirotarsinae
  • Subfamilia Cyrtocoridae
  • Subfamilia Asopinae
  • Subfamilia Pentatominae
  • Subfamilia Podopinae

Las tres primeras (Discocephainae, Edessinae y Stirotarsinae)  se distribuyen exclusivamente en los neotrópicos, la cuarta  (Cyrtocoridae) adquirió el estatus de Familia con Packauskas & Schaefer (1998) y las tres últimas, son de las que tenemos representantes la Península ibérica. A estas 6 subfamilias se han añadido 3  más:
  • Subfamilia Aphylinae
  • Subfamilia Phyllocephalinae
  • Subfamilia Serbaninae.

La Subfamilia Podopinae Amyot & Serville, 1843 se clasifica de la siguiente manera:
  • Tribu Brachycerocorini
  • Tribu Deroploini
  • Tribu Graphosomatini
  • Tribu Podopini
  • Tribu Tarisini
  • Incertae sedis

pudiendo verse en la Península ibérica solamente ejemplares de las tribus Graphosomatini, Podopini y Tarisini.

La Tribu Graphosomatini Mulsant & Rey, 1865  muestra los siguientes géneros en Europa:

  • Ancyrosoma Amyot & Serville 1843
  • Asaroticus Jakovlev 1884
  • Crypsinus Dohrn 1860
  • Derula Mulsant & Rey 1856
  • Graphosoma Laporte de Castelnau 1833
  • Leprosoma Baerensprung 1859
  • Putonia Stål 1872
  • Sternodontus Mulsant & Rey 1856
  • Tholagmus Stål 1860
  • Ventocoris Hahn 1834
  • Vilpianus Stål 1860

pero en la Península ibérica no encontraremos Asaroticus, Crypsinus ni Sternodontus.

El Género Graphosoma Laporte, 1832 muestra las siguientes especies en Europa:
  • Graphosoma lineatum
  • Graphosoma interruptum
  • Graphosoma italicum
  • Graphosoma semipunctatum (sinónimo: Graphosoma creticum)

pero en la Península ibérica solamente tenemos dos, que forman parte del Subgénero Graphosoma (Graphosoma) Laporte, 1832 :
  • Graphosoma (Graphosoma) lineatum (Linnaeus, 1758)
  • Graphosoma (Graphosoma) semipunctatum (Fabricius, 1775)

Mostraré a continuación imágenes de Graphosoma lineatum, que es la inconfundible chinche rayada de color rojo.


Graphosoma lineatum, vista dorsal


Graphosoma lineatum, vista ventral
 
 
 Cópula de Graphosoma lineatum

lunes, 11 de junio de 2018

Criboleptura strangulata

En esta ocasión vamos a ver a un escarabajo de antenas largas muy Español y mucho Español; sobretodo Gallego. Por lo tanto de entrada sabemos de su clasificación taxonómica por lo ya dicho:

Filo Arthropoda
Subfilo Hexapoda
Clase Insecta
Orden Coleoptera
Suborden Polyphaga
Infraorden Cucujiformia
Superfamilia Chrysomeloidea
Familia Cerambycidae (Latreille, 1802)
                                                
Si hacemos un poco de memoria recordaremos que las subfamilias en las que dividimos los cerambícidos son:
  • Subfamilia Anoplodermatinae
  • Subfamilia Apatophyseinae
  • Subfamilia Cerambycinae
  • Subfamilia Disteniinae
  • Subfamilia Dorcasominae
  • Subfamilia Lamiinae
  • Subfamilia Necydalinae
  • Subfamilia Oxypeltinae
  • Subfamilia Parandrinae
  • Subfamilia Philinae
  • Subfamilia Prioninae
  • Subfamilia Spondylidinae
  • Subfamilia Vesperinae
  • Subfamilia Lepturinae

Nuestro cerambícido pertenece a la subfamilia Lepturinae que como sabemos se divide en las siguientes tribus:
  • Tribu Desmocerini Blanchard, 1845
  • Tribu Encyclopini LeConte, 1873
  • Tribu Oxymirini Danilevsky, 1997
  • Tribu Rhagiini Kirby, 1837
  • Tribu Rhamnusiini Sama, 2009
  • Tribu Teledapini Pascoe, 1871
  • Tribu Sachalinobiini Danilevsky, 2010
  • Tribu Xylosteini Reitter, 1913
  • Tribu Lepturini Latreille, 1802

En la Península Ibérica tenemos solo representantes de las tribus Lepturini Latreille, 1802, Rhagiini Kirby, 1837 y Toxotini Mulsant, 1839.

Y de la Tribu Lepturini podemos encontrar los siguientes géneros:
  • Alosterna
  • Anastrangalia
  • Anoplodera
  • Aredolpona
  • Cortodera
  • Cribroleptura
  • Judolia
  • Leptura
  • Lepturobosca
  • Melanoleptura
  • Nustera
  • Pachytodes
  • Paracorymbia
  • Pedostrangalia
  • Pseudovadonia
  • Rutpela
  • Stenurella
  • Strangalia
  • Vadonia

Nuestro escarabajo pertenece al género Criboleptura Vives 2000, aunque en tiempos se clasificó en el género Paracorymbia Miroshnikov, 1998, del que en la actualidad solo tenemos tres especies en la península Ibérica: Paracorymbia fulva, Paracorymbia hybrida y Paracorymbia maculicornis.

El término Paracorymbia deriva del grigo "para" que significa, al lado de +"korymbias, -ou" que significa hiedra con racimos.

Del género Cribroleptura Vives 2000 tenemos actualmente en la península dos especies
  • Cribroleptura otini
  • Cribroleptura stragulata

Vamos a ver a esta última, no sin antes mencionar que el género Criboleptura tiene varios sinónimos, siendo uno de ellos Stictoleptura Casey, 1924. Este término, Stictoleptura deriva del griego "stiktos" que significa manchado + "eptos" que significa delgado + "oura" que significa cola.

Cribroleptura stragulata (Germar, 1824)

En lo que respecta al nombre, este cerambícido longicornio tiene varios sinónimos siendo los mas frecuentes:
   
  • Paracorymbia stragulata (Germar, 1824)
  • Brachyleptura stragulata (Germar, 1824)
  • Leptura stragulata Germar, 1824
  • Stictoleptura strangulata Casey, 1924

Esta es una especie de escarabajo endémica en la Península ibérica, aunque también se localiza en la región pirenaica francesa. Falta en Andalucía ya que en el sudeste de España es reemplazada por Criboleptura otini. Se ha descrito en Marruecos (Sama 2002). Vive en toda Galicia.


La longitud del imago es de 10-15 mm. Cabeza y pronoto negros. Antenas negras con algunos artejos amarillos o testáceos. Élitros de color amarillo testáceo o rojizo con dibujos variables de color negro, o a veces enteramente negros. Los élitros son largos, truncados en el ápice, que es levemente dentado en su ángulo externo, en su parte anterior son de color cobrizo y en la punta negros, aunque la extensión relativa de uno y otro color varía. La punta del abdomen sobresale ligeramente por debajo de los élitros. 


Los machos son algo más esbeltos, lo que resulta habitual entre los escarabajos de la familia cerambícidos. 


Esta especie se encuentra en los bosques mediterráneos de pinos y abetos. La larva fue descrita por Švácha y Danilevsky (1989) e Iglesias et al. (1990). Los árboles hospederos son Pinus pinaster (de Viedma et al., 1985), P. sylvestris (Notario et al., 1993), P. nigra (Iglesias et al., 1990), Abies (Villiers, 1978) y Quercus (Iglesias et al., 1990).) 


Las larvas son xilófagas, alimentándose de madera de coníferas en descomposición, especialmente Pinus. Los huevos se ponen en árboles moribundos o recién muertos. Su ciclo vital es de dos años. Los adultos aparecen  de marzo a agosto sobre troncos secos o bien sobre diversas flores de las que se alimentan, principalmente umbelíferas, compuestas y rosáceas. A veces es vista como una plaga para la silvicultura ya que se afirma que puede acelerar la muerte de los árboles debilitados. La destrucción de los pinares representa su mayor amenaza.

sábado, 9 de junio de 2018

La Doncella del cardo y la Doncella ibérica


Hace tiempo ya que hablé de la Doncella del cardo (Melitaea phoebe) y hoy volveré a hacerlo para explicar como diferenciarla de otra especie del género Melitaea Fabricius, 1807 que voy a presentar.

De entrada podemos hacer el siguiente resumen de la clasificación taxonómica hasta el género:

Reino Animalia
Filo Arthropoda
Subfilo Hexapoda
Clase Insecta
Orden Lepidoptera
Superfamilia Papilionoidea
Familia Nymphalidae
Subfamilia Nymphalinae
Tribu Melitaeini
Subtribu Melitaeina
Género Melitaea Fabricius, 1807

La palabra Melitaea deriva del griego antiguo y significa "dedicado a Melita", que era la hija de Nereo y Doris en la mitología clásica griega.

Durante mucho tiempo, se creyó que Mellicta era un sinónimo objetivo menor de Melitaea, compartiendo la misma especie tipo (M. cinxia). Sin embargo hoy en día se acepta esto como un error y se considera que la especie tipo de Mellicta es en realidad M. athalia, lo que hace que los dos taxones sean sinónimos subjetivos menores y por lo tanto se les separa de nuevo, considerándose a Mellicta un subgénero de Melitaea. El razonamiento es que, aunque Melitaeina puede no ser monotípica, tampoco parecen consistir en solo dos géneros (Melitaea y Mellicta), por lo que el reconocimiento de Mellicta nos hace considerar a Melitaea parafiletica; en consecuencia, otros linajes también necesitarían elevación a un estatus de género distinto. Mientras no se conozca completamente qué grupos de especies y / o subgéneros merecen reconocimiento como géneros completos, todos se conservan en el presente género.

En sensu lato, Melitaea contiene casi noventa especies de las cuales la mayoría se pueden asignar a uno de los cinco grupos / subgéneros que se listan a continuación:

Grupo didyma/Didymaeformis

    Melitaea abyssinica Oberthür, 1909
    Melitaea acraeina (Staudinger, 1886)
    Melitaea agar Oberthür, 1888
    Melitaea ala Staudinger, 1881
    Melitaea alraschid Higgins, 1941
    Melitaea ambrisia Higgins, 1935
    Melitaea arduinna (Esper, 1783)
    Melitaea athene Staudinger, 1881
    Melitaea avinovi Sheljuzhko, 1914
    Melitaea casta (Kollar, [1848])
    Melitaea chitralensis Moore, 1901
    Melitaea deserticola Oberthür, 1909
    Melitaea didyma (Esper, 1778)
    Melitaea didymina Staudinger, 1895
    Melitaea didymoides Eversmann, 1847
    Melitaea enarea Fruhstorfer, 1917
    Melitaea fergana Staudinger, 1882
    Melitaea infernalis Grum-Grshimailo, 1891
    Melitaea interrupta Kolenati, 1846
    Melitaea jitka Weiss & Major, 2000
    Melitaea kotshubeji Sheljuzhko, 1929
    Melitaea latonigena Eversmann, 1847
    Melitaea lunulata Staudinger, 1901
    Melitaea lutko Evans, 1932
    Melitaea meherparvari Carbonell, 2007
    Melitaea mimetica Higgins, 1940
    Melitaea mixta Evans, 1912
    Melitaea ninae Sheljuzhko, 1935
    Melitaea persea Kollar, [1850]
    Melitaea pseudoala Sheljuzhko, 1928
    Melitaea robertsi Butler, 1880
    Melitaea romanovi Grum-Grshimailo, 1891
    Melitaea sarvistana Wiltshire, 1941
    Melitaea saxatilis Christoff, 1876
    Melitaea shandura Evans, 1924
    Melitaea sutschana Staudinger, 1892
    Melitaea trivia Denis & Schiffermüller, 1775
    Melitaea yuenty Oberthür, 1888

Grupo cinxia/Melitaea sensu stricto

    Melitaea amoenula C. & R.Felder, [1867]
    Melitaea arcesia Bremer, 1861
    Melitaea balbita Moore, 1874
    Melitaea bellona Leech, [1892]
    Melitaea cinxia (Linnaeus, 1758)
    Melitaea diamina (Lang, 1789)
    Melitaea jezabel Oberthür, 1888
    Melitaea protomedia Ménétriés, 1859
    Melitaea sindura Moore, 1865

Grupo minerva

    Melitaea asteroidea Staudinger, 1881
    Melitaea balba Evans, 1912
    Melitaea elisabethae Avinoff, 1910
    Melitaea ludmilla Churkin, Kolesnichenko & Tuzov, 2000
    Melitaea minerva Staudinger, 1881
    Melitaea pallas Staudinger, 1886
    Melitaea solona Alphéraky, 1881
    Melitaea sultanensis Staudinger, 1886
    Melitaea turanica Erschoff, 1874

Grupo phoebe/Cinclidia

    Melitaea aetherie (Hübner, 1826)
    Melitaea collina Lederer, 1861
    Melitaea consulis Wiltshire, 1941
    Melitaea gina Higgins, 1941
    Melitaea kuchi Wyatt, 1961
    Melitaea phoebe Denis & Schiffermüller, 1775
    Melitaea pseudosibina Alberti, 1969
    Melitaea punica Oberthür, 1876
    Melitaea scotosia Butler, 1878
    Melitaea sibina Alphéraky, 1881
    Melitaea telona Christoph, 1893
    Melitaea turkmanica Higgins, 1940

Grupo Mellicta

    Melitaea alatauica Staudinger, 1881
    Melitaea ambigua Ménétriés in Schrenck, 1859
    Melitaea asteria (Freyer, 1828)
    Melitaea athalia (Rottemburg, 1775)
    Melitaea aurelia Nickerl, 1850
    Melitaea britomartis Assmann, 1847
    Melitaea centralasiae (Wnukowsky, 1929)
    Melitaea caucasogenita Verity, 1930
    Melitaea deione Geyer, 1832
    Melitaea menetriesi Caradja, 1895
    Melitaea nevadensis Oberthür, 1904
    Melitaea parthenoides Keferstein, 1851
    Melitaea plotina Bremer, 1861
    Melitaea rebeli Wnukowsky, 1929
    Melitaea varia (Meyer-Dür, 1851)
    Melitaea westsibirica (Dubatolov, 1998)

quedándonos en Incertae sedis Melitaea kunlunensis Kudrna & Mracek, 1994; Melitaea oorschoti Eckweiler, 2008; Melitaea paludani Clench & Shoumatoff, 1956; Melitaea tangigharuensis de Freina, 1980 y Melitaea wiltshirei Higgins, 1941

Según Fauna Europaea las especies Europeas del género Melitaea son:

  • Melitaea aetherie
  • Melitaea arduinna
  • Melitaea asteria
  • Melitaea athalia
  • Melitaea aurelia
  • Melitaea britomartis
  • Melitaea cinxia
  • Melitaea deione
  • Melitaea diamina
  • Melitaea didyma
  • Melitaea parthenoides
  • Melitaea phoebe
  • Melitaea punica
  • Melitaea telona
  • Melitaea trivia
  • Melitaea varia

a lo que hay que añadir los taxones recientemente elevados a rango de especie Melitaea ignasiti (Melitaea Catalana) y Melitaea ornata (Melitaea Siciliana).


En la Peninsula ibérica podemos encontrar las siguientes especies:

  • Melitaea aetherie
  • Melitaea celadussa
  • Melitaea cinxia
  • Melitaea deione
  • Melitaea diamina
  • Melitaea didyma
  • Melitaea ornata
  • Melitaea parthenoides
  • Melitaea phoebe
  • Melitaea trivia

Estas mariposas tienen un dibujo en las alas en forma de damero, como muchas otras especies y como expliqué en su día podemos diferenciarlas entre otras cosas, mediante un rasgo identificativo relativamente sencillo: lo que solemos llamar la gran mancha en e3, que hace que en el margen marrón de la celda en la 3ª columna cercana al margen del ala anterior se aprecie como un escalón.

Además, en Melitaea phoebe esta mancha alcanza el límite superior de la segunda banda de manchas anaranjadas de la zona submarginal, cosa que no ocurre en prácticamente con ninguna otra de las Melitaea que vuelan por La Península Ibérica y archipiélagos.



Hablemos pues ahora de otra especie de Melitaea a la que vulgarmente denominamos Doncella Ibérica.


Melitaea deione Geyer, 1832


La palabra deione deriva del griego “deioneys, deione”, que era el nombre de la madre de Mileto.
Esta mariposa se distribuye por el sureste de Europa en Portugal, gran parte de España (sureste de España, centro de España, Sierra de Gredos y más hacia el este, noreste de España, los Pirineos y el Cantábrico), en el sureste de Francia, en los Alpes italianos y localmente en Suiza. También se encuentra en Marruecos y Argelia. Se la puede ver desde los 150 a los1,900 m sobre el nivel del mar. El área de distribución global de la especie se encuentra tanto dentro como fuera de la región mediterránea.

Habita en prados abiertos con flores, márgenes de bosques, zonas de hierbas con flores y zonas arbustivas, desde zonas medias-bajas hasta la alta montaña.

Es una mariposa bivoltina, con dos generaciones al año: la primera entre medios de mayo y junio y la segunda entre medios de agosto y comienzos de septiembre. Vuela de 200 a 1600 metros. Hiberna como oruga, las larvas se alimentan e hibernan en grupo.

La morfología  del imago es variable, con una envergadura alar entre los 32 y los 42 mm. El macho tiene el anverso de color amarillo anaranjado claro con fino dibujo reticulado negro, con un dibujo negro en la zona discal del ala anterior con forma de pesas de gimnasia, no siempre presente. El reverso del ala anterior es leonado con puntos negros poco visibles, y el del ala posterior de color de fondo amarillento con bandas anaranjadas. La hembra presenta un anverso más contrastado. Los palpos son anaranjados. Los ejemplares de la segunda generación son más pequeños.


Melitaea deione

La mancha en e3 no alcanza el limite superior de la segunda banda submarginal aunque sí suele rebasar el límite inferior. Cerrada es difícil de diferenciar de Melitaea Parthenoides, pero suele ser de un blanco más puro, especialmente en las bandas que cruzan a la mediación del ala.  El carácter que define la especie es la coloración amarillenta del espacio postdiscal en S6, en el reverso de las alas anteriores, que en Melitaea athalia y Melitaea deione es de color anaranjado. Abierta, la principal diferencia con M. parthenoideses la mancha a la mediación del borde interno del ala delantera, que no es oblícua, sino perpendicular y a menudo muy grande, al poder estar unida a una superior; da la sensación de menos naranja que M. parthenoides, pues todos los dibujos marrones son más anchos, tanto el de mitad del ala delantera como especialmente el de mitad del ala trasera, que en M. parthenoides es vestigial o está ausente.


Melitaea deione

No es fácil distinguir esta mariposa de otras de su género, ya que hay que fijarse en pequeñas particularidades del dibujo de las alas, como la presencia de una marca negra en forma de campanilla cercana al borde anterior del ala delantera, o la presencia de un triangulito naranja en una de las celdas; en algunos casos presentan lúnulas negras en los márgenes posteriores de la cara inferior de las alas posteriores. 

La puesta de huevos se realiza en grupos en el envés de las hojas. Las orugas se alimentan de plantas nutricias se han citado  La pupación tiene lugar en las proximidades de la planta nutricia.

Las orugas son gregarias, de color negro moteado de blanco y con espinas de color ocre y se alimenta de Anthirrinum sempervirens, Anthirrinum hispanicum, Plantago, Chaenorrhinum, Linaria vulgaris y Cymbalaria muralis.

La crisálida es ocre con mezcla de blanco, pardo y negro.


 Melitaea deione


Melitaea deione


Melitaea deione

Melitaea deione



martes, 5 de junio de 2018

Maniola jurtina (2)

Ya he hablado de la Loba en una ocasión, un lepidóptero ninfálido cuyo nombre científico es Maniola jurtina, y explicaba su clasificación taxonómica y algunas diferencias entre hembra y macho. Así que en esta ocasión un simple recuerdo:

Filo Arthropoda
Subfilo Hexapoda
Clase Insecta
Orden Lepidoptera
Superfamilia Papilionoidea
Familia Nymphalidae
Subfamilia Satyrinae
Tribu Satyrini
Subtribu Maniolina
Género Maniola
Especie jurtina

Maniola jurtina jurtina (Linnaeus, 1758)
es la subespecie que podemos encontrarnos en la Península ibérica y su posible sinonimia es la siguiente: 
   
  • Papilio jurtina Linnaeus, 1758
  • Papilio janira Linnaeus, 1758
  • Maniola janira (Linnaeus, 1758)
  • Epinephila jurtina (Linnaeus, 1758)
  • Epinephele janira (Linnaeus, 1758)
  • Epinephile jurtina (Linnaeus, 1758)
  • Erebia janira (Linnaeus, 1758)
  • Satyrus janira (Linnaeus, 1758)
  • Papilio monoculus Goeze, 1779
  • Papilio erymanthea Esper, 1784
  • Papilio brigitta Ljungh, 1799
  • Maniola lemur Schrank, 1801
  • Papilio hispulla Esper, 1805
  • Maniola erymanthea (Esper, 1805)
  • Epinephele cinerea Cosmovici, 1892
  • Epinephile jurtina hispulla ab. violacea Wheeler, 1903
  • Epinephile janira occidentalis Pionneau, 1924
  • Epinephile janira meridionalis Pionneau, 1924
  • Epinephele jurtina cantabrica Agenjo, 1934
  • Maniola jurtina miscens Verity, 1953
  • Maniola jurtina portopoioensis Rodríguez-Gracia, 1986
  • Maniola jurtina portopoiensis Rodríguez-Gracia, 1989


 Maniola jurtina jurtina

La guía de las Maiposas de Europa de Neiko Bellaman, nos dice lo siguiente de Maniola jurtina:

Mariposa. El anverso de las alas es marrón oscuro. El macho presenta las alas anteriores con una mancha negra cubierta de escamas androconiales y un ocelo bastante pequeño con los bordes claros. La hembra luce una mancha de color anaranjado marrón y el ocelo visiblemente con el núcleo blanco. El anverso de las alas posteriores es marrón grisáceo con una banda transversal de color mas claro con límites imprecisos.


Maniola jurtina jurtina

 Oruga. Mide hasta 25 mm, es de color verde claro con una fina línea clara subespicular y está cubierta de pelos blancos bastante largos hacia detrá en la punta.

Plantas nutricias. Se nutre de Bromus erectus, la barcea (Festuca ovina), la poa de los prados (Poa pratensis), el copín lanudo (Holcus lanatus) y otras gramíneas.

Habitat y distribución. Puede observarse mayoritariamente en zonas abiertas desde secas a semihúmedas, por ejemplo,lindes de bosques, praderas secas y linderos de turberas, siendo bastante frecuente en casi todas las zonas. SE trata de uno de los miembros de la Subfamilia Satyrinae mas abundantes y a la vez uno de los pocos representantes de dicha familia que también aparece regularmente en jardines.

Generalidades. A pesar de su largo periodo de vuelo esta especie solo desarrolla una generación al año. Los primeros machos emergen siempre considerablemente antes que las hembras. Durante las semanas mas calurosas de verano, los imagos suelen hacer un descanso pra permanecer posados e inmóviles en un lugar sombreado, a veces incluso durante varios días. La hembra deposita los huevos de forma individual cerca del suelo en hiervas verdes o ya secas. La larva juvenil se alimenta por el día e inverna. Tras este periodo de invernación alcanza el penúltimo o último estadio, adoptando entonces hábitos nocturnos y manteniéndose oculta durante el día. La pupación suele realizarse muy próxima al suelo en un tallo seco.


lunes, 4 de junio de 2018

Zygaena trifolii (2)



Zygaena trifolii

Como dije en su día el genero Zygaena Fabricius, 1775 está representado en la Península Ibérica (excepto islas baleares y canarias) por 22 especies, agrupadas en 3 subgéneros.

Para diferenciar unas especies de Zygaena de otras nos debemos fijar en lo siguiente:
  • Los puntos o bandas de color de las alas. Todas las zygaenas se caracterizan por tener un dibujo de 6 ó 5 puntos que se han numerado desde la base del ala al ápex para facilitar la descripción de la especie y poder utilizarlos en claves dicotómicas para la identificación de las especies.
  • Cingulum: anillo abdominal de algunas especies, sobre todo en las consideradas más arcaicas.
  • Patagia : estrecho collar situado en la parte dorso-anterior y lateral del tórax, que, en algunas especies, puede ser de diferente coloración.
  • Tegulae: zona torácica superior situada junto a la base del ala anterior que  puede estar coloreada con distinto tono.
  • Genitalia: en el macho, destaca la forma del uncus y del tegumen, así como las espinas de la lamina dorsalis, en el tercio final del aedeagus y en la hembra la forma y tamaño de la bursa y el ductus bursae, así como la presencia o ausencia de signa.

F. Fernández-Rubio publicó en el año 2006 en la Revista Graellsia, en concreto en el n.º 62(1): 3-12 una “CLAVE PARA DETERMINAR LAS ESPECIES ESPAÑOLAS DEL GÉNERO ZYGAENA FABRICIUS, 1775 (INSECTA, LEPIDOPTERA, ZYGAENIDAE)” de la que he sacado la siguiente Clave dicotómica para las especies de Zygaena que tienen 5 puntos en sus alas basándose solamente en su morfología externa y dejando de lado la genitalia:

1. Reverso ala anterior con fuerte subfusión roja que ocupa casi toda el ala …...................................................................................................... Z. Transalpina

* No cumple esta condición ...........................................................................…… 2

2. Reverso del ala anterior con un débil, pero constante salpicado de escamas rojas ………………...…...………………….. Z. filipendulae ssp. Gemina  Burgeff, 1914

* No cumple esta condición ...........................................………………...…………… 3

3. Reverso del ala anterior sin salpicado de escamas rojas. En su anverso los puntos rojos no se unen nunca. Reborde negro del ala posterior estrecho ................………………………...........................................................….. Z. Lonicerae

* Reverso del ala anterior sin salpicado de escamas rojas. En su anverso los puntos rojos pueden presentar tendencia a unirse. Reborde negro del ala posterior relativamente …….………... Z. trifolii

Utilizando esta clave es en lo que me basé en su día para clasificar la especie que había fotografiado como Zygaena trifolii.

Haciéndo una descripción escrita podemos decir respecto a las alas de estas Zygaenas que:
  • Zygaena lonicerae tiene en el ala anterior cinco puntos, de los cuales el 3 es menor que el 4. Es relativamente grande y sus puntos no tienden nunca a confluir (diferencia con trifolii). Carece de subfusión rojiza en el reverso del ala anterior (diferencia con filipendulae y transalpina). El reborde negro del ala posterior es bastante estrecho (diferencia con trifolii).
  • Zygaena trifolii presenta también cinco puntos, pero es más pequeña, con ápex más redondeado. y el reborde negro del anverso del ala posterior es más ancho (diferencias con lonicerae). Los puntos 3 y 4 del anverso del ala anterior pueden unirse (diferencia con lonicerae y filipendulae) . Carece de subfusión rojiza en el reverso del ala anterior (diferencia con filipendulae). Ocasionalmente todas las manchas pueden estar fusionadas.
  • Zygaena filipendulae tiene seis puntos en casi toda su área de vuelo, pero en España sólo ocurre así en la banda norteña. En el centro y sur de la Península tiene cinco puntos (ssp. gemina), y entre ambas zonas hay poblaciones híbridas con ejemplares de cinco y seis puntos. Son los ejemplares de cinco puntos los que pueden prestarse a confusión, aunque ambos “morphos” presentan un débil, pero constante, salpicado de escamas rojas en el reverso del ala anterior  (diferencia con trifolii y lonicerae, que carecen de ellas y con transalpina, donde existe una amplia subfusión rojiza).
  • Zygaena transalpina se diferencia bien de las especies anteriores por la fuerte subfusión roja del reverso del ala anterior. 
 
   
Zygaena trifolii
 

 Zygaena trifolii


 Zygaena trifolii


Zygaena trifolii 
 

  Zygaena trifolii
 

 Zygaena trifolii


sábado, 2 de junio de 2018

Synaema globosum (mas imágenes)


Cuando explicaba sus características morfológicas contaba que los machos suelen ser mas pequeños y oscuros que las hembras y que el prosoma de esta araña cangrejo es de color pardo oscuro a negro, presentando alrededor de los ojos un Prosoma pardo oscuro a negro, alrededor de los ojos con un anillo blanco. En el opistoma, sobre un fondo blanco, amarillo o rojo luminoso, un dibujo negro bastante variable que se compone de un cono truncado ensanchado hacia atrás y de una lista transversal a menudo algo arqueada detrás, conectados entre sí por una línea longitudinal negra. pequeño anillo blanco.El dibujo del opistoma, que nos recuerda  un "Napoleón con su sombrero" es igual en ambos sexos.

Pues bien, esta mañana tuve la oportunidad de fotografiar de nuevo a esta araña, pero esta vez con mi cámara reflex y tomé unas imágenes en las que se pudiese mostrar bien todo esto.

Las fotografías a continuación:


Synaema globosum

Posiblemente una hembra por su color amarillento claro del opistoma en el que muestra muy bien el folium en forma de Napoleón con su sombrero. Se aprecia bien el fino halo blanco rodeando los ojos.


En esta otra, la pillamos de culo y nos enseña las hileras. 


Synaema globosum

Posiblemente un ejemplar macho. Se puede observar bien su color anaranjado y mas oscuro del opistoma y el folium en forma de Napoleón con su sobrero.

ESte macho estaba cazando, con lo cual aproveché la oportunidad para fotografiarlo mas de cerca y mostrar su banquete:




Finalmente, a los postres apareció un coleóptero (Oxirithrea funesta) a molestar :)


jueves, 31 de mayo de 2018

El Síndrome de Boerhaave

Hoy voy a hablar de una entidad muy grave y relativamente poco frecuente y a mostrar imágenes radiológicas de un caso del que tuve conocimiento hace aún bien poco y que tuve que llevar urgente en una ambulancia a los cirujanos.

Para ponernos en situación debo recordaros primero que el esófago es el único órgano digestivo situado en la cavidad torácica y que desde el punto de vista topográfico lo podemos dividir en cuatro porciones:
  1. una porción superior o cervical, que se extiende desde el cartílago cricoides hasta un plano horizontal formado por la horquilla esterna
  2. una porción media o torácica, que continuando a la porción anterior se prolonga hasta el diafragma,
  3. una porción diafragmática, que corresponde al anillo esofágico del diafragma,
  4. una porción inferior o abdominal, comprendida entre el diafragma y el estómago.
En el tórax el esófago se sitúa detrás de la tráquea, en el mediastino posterior, y está en contacto, de arriba abajo, con la aorta, el bronquio principal izquierdo y la aurícula izquierda.

La longitud media en el adulto es de unos 22-25cm, siendo la porción tóracica la mas larga, midiendo unos 16-18 cm.


Presenta cuatro estrechamientos, siendo el primero comenzando desde arriba la unión faringoesofágica, a nivel de la sexta vértebra cervical. Los otros tres estrechamientos se encuentran en la porción torácica:
  • el estrechamiento aórtico a nivel de la cuarta vértebra torácica, relacionado con la huella del cayado aórtico sobre la pared lateral izquierda del esófago
  • el estrechamiento bronquial, a la altura de la sexta vértebra torácica, determinado por la huella del bronquio principal izquierdo
  • el estrechamiento diafragmático a nivel de la décima vértebra torácica.


La pared esofágica está constituida estructuralmente por mucosa, submucosa y muscular. A diferencia del resto del tracto gastrointestinal, carece de serosa. La túnica muscular tiene la peculiaridad de estar constituida por 2 capas entre las que se sitúa el plexo mientérico de Auerbach, una es circular e interna y la otra longitudinal y externa. La musculatura que las compone es tanto estriada como lisa, siendo los 2-6 cm primeros del esófago exclusivamente de musculatura estriada y los 2/3 distales exclusivamente de músculo liso.

En el 2006 KJorn O, Oñate JC y Lopez R publican un estudio en la Revista Surgery 2007 Feb; 14 (2): 222-8 Epub 2006 Sep 25, realizado sobre cadáveres que muestra como el esófago distal en la zona de unión con el estómago proximal en la curvadura mayor además de carecer de serosa tiene un área mas débil correspondiendo con la zona de contacto entre las fibras musculares transversales y semicirculares con las fibras musculares oblicuas cortas y largas. Esto es importante para lo que voy a mostraros a continuación.

No voy a entrar ahora a recordar nada de la irrigación venosa ni arterial del esófago ni tampoco voy a hablar sobre la inervación y la fisiología del esófago, porque para lo que vamos a ver a continuación no nos importa demasiado.

Así que vayamos al meollo de la cuestión:

Hace un par de días un compañero recibió en el Servicio de Urgencias a un paciente de 47 años de edad que el día previo se había pegado un homenaje pantagruélico. Por la noche había comenzado con diarrea y por la mañana del día siguiente con intensos vómitos seguidos de un dolor torácico intenso y continuo que se le irradiaba a ambos lados del abdomen y la espalda.

La médico que lo atiende se encuentra a un paciente con mal aspecto general, sin fiebre pero pálido, frio y sudoroso. Muestra restos de vómitos hemáticos en la ropa. Está consciente y orientado pero con una respiración superficial y mucho dolor. El abdomen muestra un vientre en tabla, con dolor localizado en hipocondrio izquierdo y epigastrio, sin masas ni megalias y con ruidos abolidos. El resto de la exploración es mas o menos anodino excepto algo de dolor lumbar.

El ECG muestra un ritmo sinusal normal a 109 lpm. La coagulación el hemograma y la fórmula mostraban todos los parámetros dentro de rangos de la normalidad. La bioquímica aportó los siguientes datos:

UREA 105 mg/dL (17-43),
GLICOSA 158 mg/dL (74-109),
CREATININA 1.15 mg/dL (0.4-1.2)
BILIRRUBINA TOTAL 0.4 mg/dL (0.1-1.2)
SODIO 142 mmol/L (135-145)
POTASIO 4.7 mmol/L (3.5-5)
GPT 21 U/L (10-41)
GOT 13 U/L (10-40)
AMILASA 34 U/L (28-100)
Proteína C Reactiva 1.8 mg/L (0-5)
Troponina T Cardíaca Alta Sensibilidade 14 ng/L (0-14)

Y una gasometría arterial que mostraba:

pH 7.390 (7.35-7.45)
p CO2 34.0 mmHg (35-45)
HC03 ACTUAL 20.6 mmol/L (-)
EB -3.7 mmol/L (-)
pO2 77.0 mmHg (80-100)
Sat O2: 95.0 % (-)

y ahora llegamos a lo interesante, inicialmente se realiza como pruebas complementarias de imagen un TAC abdomino-pélvico sin contraste iv que inmediatamente se completa con toraco-abdomino-pélvico con contraste siendo los hallazgos los siguientes:

Extenso neumomediastino y mala delimitación de la pared del esófago desde aproximadamente la carina en aparente relación con alteración de la grasa periesofágica, compatible con mediastinitis.


En tercio distal del esófago en su pared posterolateral izquierda, a aproximadamente unos 3 cm del diafragma 


 se observa una discontinuidad de su pared (de casi 2 cm) 


con contenido hipodenso que se extiende desde su luz hacia el mediastino posterolateral izquierdo adyacente (extensión cráneo-caudal de unos 6'6 cm) contorneado por neumomediastino y condicionando ensanchamiento mediastínico significativo a ese nivel.


También se aprecia un derrame pleural bilateral de mayor cuantía izquierdo e infiltrado y opacidades en vidrio deslustrado en LII.

¡Una perforación esofágica! y justo en el punto que hemos visto anteriormente que la pared del esófago es más débil

No es muy frecuente que se perfore alguna parte del tubo digestivo, aunque en los Hospitales estamos habituados a ver cosas de este tipo, sobre todo en los Servicios de Urgencias, pero si hay alguna perforación del tracto digestivo que nos de miedo, esa es sin duda la perforación del esófago, puesto que es la mas peligrosa y letal, teniendo una mortalidad entre el 15-24% en los casos que son tratados antes de la primeras 24 horas y aumentando hasta un 40-50% si el diagnóstico y tratamiento se demora mas.

La etiología de la perforación esofágica es variada: tras una endoscopia (ya sea para diagnóstico o para tratamiento) 59%, ingesta de cuerpos extraños 12%, traumatismos 9%, lesiones operatorias 2%, perforaciones tumorales 1% y otras causas muy infrecuentes como las intubaciones endotraqueañles, minitraqueostomía o la ingesta de caústicos. Como caso especial tenemos además los casos como el que hoy presento y que conocemos como roturas esofágicas espontáneas, y a los que los médicos llamamos Síndrome de Boerhaave; representan un 15%

El Síndrome de Boerhaave se debe a un aumento brusco de la presión abdominal con la glotis cerrada que conlleva un elevado gradiente de presión intraesofágico al haber una presión negativa intratorácica que hace que el esófago rompa por su punto mas débil. La maniobra que mas frecuentemente produce esto es el vómito (75% de los casos), aunque se ha descrito también durante el parto, convulsiones, tos o risa prolongada, levantamiento de pesas o estatus asmático.

El nombre de este síndrome se debe al Dr Herman Boerhaave médico, botánico y humanista neerlandés nacido el 31 de diciembre de 1668 cerca de Leiden.

En 1701 fue nombrado profesor de medicina en la universidad, fue nombrado catedrático de medicina y botánica de Leiden en 1709, y en 1714 catedrático de medicina clínica, cargo que ocupa hasta su muerte el 23 de septiembre de 1738.

Dr Boerhaave


Una noche el Dr Boerhaave fue llamado para atender urgente al comandante de la flota holandesa, el Barón JanGerrit van Wassenaeer heer van Rosenberg, el cual tras una comilona bien regada con alcohol intento aliviar su estómago induciéndose el vómito con un derivado de la Ipecacuana, notando súbitamente un intenso dolor torácico y que algo se rompía por encima de su estómago. El paciente falleció, Boerhaave hizo su autopsia y encontró la rotura de la parte distal del esófago y contenido gástrico en la cavidad pleural izquierda. Describió el caso en su revisión "Atrocis, nec descripti prius, morbi historia". Desde entonces este cuadro clínico lleva su nombre.

La perforación esofágica en el Sindrome de Boerhaave suele producirse en la zona de debilidad de la pared esofágica descrita con anterioridad, es decir lado izquierdo del esófago distal, a 3-6 cm del diafragma, y suele ser de forma longitudinal y entre 2-6 cm de larga.

Si volvemos a ver las imagenes del TAC de nuestro paciente, el caso parece el del mismísimo Dr Boerhaave en el 1800.

El cuadro clínico en estos casos es en ocasiones característico, presentándose un varón adulto de entre 40-60 años con dolor torácico punzante, grave e intenso localizado en la zona subesternal, epigástrico o en hemitórax izquierdo que puede irradiar a cuello, hombro, espalda o hipocondrio izquierdo y que va precedido de episodios violentos de vómito asociado a una ingesta previa importante de alimentos y bebidas. Asociado a todo esto puede verse disnea como resultado del dolor por la irritación pleural que produce el paso de contenido gástrico al espacio pleural y mediastínico y/o por el trastorno de la ventilación secundario al hidroneumotórax asociado.

Otros síntomas que pueden paracer son fiebre, enfisema subcutáneo o colapso cardiovascular. Conocemos como tétrada de Goth: enfisema sc cervical, dolor torácico, disnea y postración; y como tríada de Mackler, enfisema sc, dolor torácico y vómito

Entre los signos que podemos encontrar en la exploración física tenemos que en un 20% de las ocasiones nos encontramos con el signo de Hamman que consiste en la auscultación de burbujeo crepitante sincrónico al latido cardiaco.

Este cuadro clínico tiene una gran mortalidad sobreviviendo el primer día un 35% de los pacientes, pero solamente un 11% el segundo día si no se interviene quirúrgicamente. Esta mortalidad tan elevada se debe a una respuesta inflamatoria mediastínica fulminante debido al paso de contenido gástrico con enzimas salivares, gástricas y biliares además de bacterias al mediastino, favorecido por la presión negativa intratorácica, lo que lleva a hipovolemia, hipoperfusión, inflamación sistémica, sépsis y fallo multiorgánico, normalmente iniciándose este en el aparto respiratorio.

Los principales factores pronósticos son el tamaño y localización de la perforación, la demora en el diagnóstico (con la consiguiente contaminación de pleura y mediastino) y la existencia de comorbilidad y condiciones físicas previas del paciente.

El diagnóstico se hace fundamentalmente por la sospecha clínica que ha de dirigir las pruebas complementarias para hacer el diagnóstico lo mas rápidamente posible.

Ha de hacerse un diagnóstico diferencial con pancreatitis, apendicitis, IAM, disección de aórta, TEP, neumonía por aspiración, úlcera péptica perforada, pericarditis aguda, neumotórax espontáneo a tensión y hernia diafragmática incarcerada, esofagitis, absceso pulmomnar, litiasis ureteral, pielonefritis, rotura de absceso subfrénico y sangrado esplénico.

Las alteraciones radiológicas secundarias a la perforación solo están presentes en un 80% de los casos y suelen parecer horas o incluso días después del inicio de la clínica, La Rx de tórax con el paciente en bipedestación suele mostrar un derrame pleural, neumotórax, enfisema sc cervical y/o torácico y neumomediastino, aunque puede ser normal hasta en un 12% de loas ocasiones.
El TAC torácico puede mostrar colecciones líquidas o niveles hidroaéreos periesofágicos sugestivos de perforación pero no suele precisar la localización y el tamaño de la perforación, para lo cual suele utilizarse el esofagograma con gastrografín.

No esta indicada la esofagoscopia que puede aumentar el tamaño la rotura y pasar aire al mediastino.

El análisis del liquido pleural obtenido mediante toracocentesis puede mostrar la amilasa salivar y un PH ácido. La citología del liquido puede mostrar restos de alimentos no digeridos como células vegetales y musculares no humanas.

El tratamiento de esta entidad si el diagnóstico es temprano o hay signos de sépsis, ha de ser quirurgico y lo mas precozmente posible buscando el drenaje del mediastino infectado y la interrupción de la fuga, pero no hay unanimidad en la técnica quirúrgica ni cuando, por lo que hace unos 10 años un grupo de cirujanos propuso un algoritmo para la cirugía de estos pacientes y estandarizar el manejo (de Schipper JP, Pull ter Gunne AF, Oostvogel HJM, van Laarhoven CJHM: Spontaneus Rupture of Oesophagus: Boerhaave´s Syndrome in 2008. Dig. Surg 2009; 26:1-6.)

Nuestro paciente en cuestión fue inmediatamente a quirófano donde se realizó bajo anestesia general una laparoscopia exploradora con gastrotomía de 1-5 cm en cara anterior-curvatura menor de cuerpo gástrico para aspirado y vaciado de estómago y sutura de la perforación esofágica + funduplicatura Nissen 360 cubriendo y realizando plastia sobre perforación, Lavados profusos de mediastino y cavidad abdominal y drenajes. Además se colocó un drenaje torácico izquierdo para el hidroneumotórax izquierdo.

Como es fácil imaginar tras ello el paciente sale intubado de quirófano y se le forra a antibiótico sistémico.