Cacyreus marshalli (segunda parte)

Originalmente los geranios ornamentales (Pelargonium peltatum, Pelargonium grandiflorum y especialmente los híbridos P.hortorum o geranio zonal y P. Peltatun o geranio de hoja de hiedra) que compramos en las tiendas de jardinería, proceden de Sudáfrica y fueron traídos libres de las plagas y parásitos.  Los geranios son plantas de exterior con flores de atractivos y vivos colores. Florecen durante el verano. Rápidamente se popularizaron debido a su resistencia. Incluso podía maltratarseles sin regarlos y tenerlos en balcones de ciudades con bastante polución, que el puñetero geranio resistía lo que echasen, lo único que podía indefectiblemente con él era el frio (menos de 10º o heladas),la oscuridad o si los ponías en interior tenerlos cerca de la calefación.  Hasta que llegó Cacyreus marshalli.

Ya sabemos que Cacyreus marshalli es una especie originaria de Sudáfrica, descrita originariamente por el entomólogo inglés Butler en 1898, de la antigua colonia Inglesa de Natal. Pero aprendamos más de la historia de como se introdujo en Europa.

Antes de la publicación de la descripción de Butler, en Noviembre de 1978 en Cheshunt y Hertfordshire (Inglaterra) ya se decetctaron dos orugas que habian sido introducidas inadvertidamente en geranios importados (Pelargonioum fever cascade). Esas larvas fueron confiscadas y se completó su desarrollo en los laboratorios del Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación (MAFF) británicos situados en Harpenden, Hertfordshire. Todo un admirable ejemplo de buen trabajo de control de plagas o de buena fortuna, según se quiera ver. Yo solamente puedo decir que en mi pueblo “al saber hacer, le llaman suerte” y al que le pique, que se rasque.

El caso es que entre el 15 y el 20 de Noviembre de 1989 en la localidad de Paguera en el sur de Mallorca, unos entomólogos alemanes, Eitschberger y Stamer, capturaron 13 ejemplares de Cacyreus marshalli (5 machos y ocho hembras), desconocidas hasta entonces en la isla y aseguraron que pertenecían "a una especie que ha sido introducida con su planta nutricia natural (geranio) y ha conseguido criar en la isla". No creían que fuese una migración natural y aportaban pruebas razonadas de ello.

En Septiembre de 1990, dos semanas antes de que apareciese la publicación de Eitschberger y Stamer, Edward M. Raynor, un entomólogo inglés, publicó una nota en la revista británica Entomologyst's Record en la que aportaba fotografías de lo que fue identificado en el momento como un posible ejemplar de Cacyreus Ethiopicus y contaba además como había visto mas ejemplares iguales en Magalluf. Suponía que la mariposa estaba criando en Mallorca y había sido introducida con geranios. Raynor vió los ejemplares por primera vez en Abril de 1990 cuando estaba en el jardín de unos amigos en cabo Falcó, al sur de Magalluf y poco mas tarde en la misma Magalluf.

Al año siguiente de la descripción de Eitschberger y Stamer, dos científicos catalanes, Sarto i Monteys y Masó, confirmaron el asentamiento definitivo de la especie en toda la isla de Mallorca y advertían que se trataba de una plaga que fácilmente podría llegar a la península en caso de que las autoridades competentes no tomasen las medidas preventivas pertinentes.

Ya nos podemos imaginar la historia que sigue a continuación. España no es Inglaterra, el gobierno Español no era el Inglés y las instituciones Españolas tampoco eran las Inglesas. Además el  comportamiento de muchos Españoles ya sabemos como era, como es y probablemente como seguirá siendo, por los siglos de los siglos, Amen.

En definitiva, que se hizo entonces una campaña preventiva en puertos y aeropuertos con posters del Servicio de Protección de los Vegetales del Departamento de Agricultura, Ganadería y Pesca de la Generalitat de Cataluña. Pero curiosamente los posters, que avisaban que no se llevasen esquejes de geranio procedentes de Mallorca a otros lugares, no fueron colocados en el aeropuerto de Valencia, el mas cercano a las islas. Y la plaga alcanzó las otras islas balcares (excepto Formentera) y en abril de 1992 se detectó por primera vez en la península, cerca de Castellón de la Plana y en Logroño. Ese mismo año se confirmó que Cacyreus marshalli ya estaba muy asentada en Menorca e Ibiza.
En 1993 la plaga salta definitivamente al continente Europeo.

En abril de ese año se documenta una puesta de 8 huevos en Denia (Alicante) por un ejemplar hembra que se supone se introdujo en barco desde Ibiza.

En Julio de 1993 se detecta en Valencia, Logroño, Zaragoza y Granada, siendo ya una verdadera plaga en estas localidades en 1994.

En el verano de 1998 ya estaba en Bruselas.

Nadie suele decirlo aunque creo que es un secreto a voces, que en esta diseminación pudieron tener bastante responsabilidad las empresas implicadas en la reproducción y venta de esquejes. Por aquel entonces había cuatro grandes empresas que lideraban la venta de esquejes y que producían conjuntamente unos 10 millones de esquejes anuales que eran suministrados a unos 500 viveristas de todo el Estado y que movían una vez llegado al consumidor un total aproximado de 3 millones de pesetas. Los geranios representaban un 13% de los beneficios totales en jardinería y en Mallorca las ventas de esquejes se redujeron de 1992 a 1993 en un 23% (datos aportados por Cultíus Roig, uno de los cuatro grandes productores peninsulares que dijo que en esa campaña pasaron de 78.582 esquejes a 60.471), así que estamos hablando de bastante dinero. Y ya sabemos que ¡Poderoso caballero es Don dinero!

Eliseo Fernández Vidal un Gallego experto en Lepidópteros publicó en en el Boletín de la Sociedad Entomológica Aragonesa en el 2008:

"A esta especie, originaria de Sudáfrica, introducida incidentalmente en Europa vía isla de Mallorca en 1989 y plaga de los geranios, la hemos visto por primera vez en pleno centro urbano de A Coruña el 2 de noviembre del 2008 [...]. Desde entonces no es raro avistar ejemplares por toda la ciudad, sobre todo entre septiembre y noviembre".

«Hemos comprobado que ya habita en todo el municipio de A Coruña y los adyacentes y que, efectivamente, también aquí se ha convertido en una verdadera plaga que está arruinando plantaciones de Geranium y Pelargonium . No obstante, parece no ser tan abundante como en otras localidades de Galicia donde la hemos visto: dentro de la provincia de Lugo, en Quiroga, Rairos, Samos y Sarria, y dentro de la de Ourense, en O Barco y Verín, enclave este último donde era muy abundante en septiembre del año 2009».

Desde entonces ya han pasado 9 años mas, Cacyreus está plenamente asentado en la península y Europa, veo posarse a la mariposa con toda tranquilidad en las flores de los alrededores de casa en Tomeza, Pontevedra, y taladra los geranios que mi amiga Julia cuida con esmero en Villagarcía.

Si hay algo que nos debe de quedar claro con toda esta historia, es que indefectiblemente en nuestro país, el dinero de unos pocos acabará siendo la plaga de muchos.

Zonitis flava (Fabricius, 1775)/ Rhagonycha fulva (Scopoli, 1763)

El Suborden Polyphaga, el más amplio y diverso de los coleópteros con mas de 300.000 especies y del que ya hemos visto unos cuantos representantes, se divide en cinco infraordenes:

• Bostrichiformia
• Scarabaeiformia
• Staphyliniformia
• Elateriformia
• Cucujiformia

Elateriformia y cucujiformia tienen dos especies que son prácticamente indistinguibles, por eso hablaré de las dos, una a continuación de otra.

CUCUJIFORMIA

Como sabemos el infraorden Cucujiformia se subdivide en

• superfamilia Chrysomeloidea (con 4 familias)
• superfamilia Cleroidea (con 8 familias),
• superfamilia Cucujoidea (con 31 familias)
• Superfamilia Curculionoidea (con 8 familias)
• Superfamilia Lymexyloidea (con 1 familia)
• Superfamilia Tenebrionoidea (con 30 familias)

A nosotros nos interesa ahora la última superfamilia, la Tenebroidea.

Ya he hablado en alguna ocasión de los tenebrionoideos y dije que son una superfamilia de coleópteros polífagos que se distribuyen por todo mundo adelante y suelen tener cinco artejos en los tarsos anteriores y medios, y cuatro en los posteriores (fórmula tarsal 5-5-4). La superfamilia Tenebrionoidea incluye las siguientes familias:

Aderidae Winkler, 1927

Anthicidae Latreille, 1819

Archeocrypticidae Kaszab, 1964

Boridae C. G. Thomson, 1859

Chalcodryidae Watt, 1974

Ciidae Leach, 1819

Colydiidae Erichson, 1842

Melandryidae Leach, 1815

Meloidae Gyllenhal, 1810

Monommatidae Blanchard, 1845

Mordellidae Latreille, 1802

Mycetophagidae Leach, 1815

Mycteridae Blanchard, 1845

Oedemeridae Latreille, 1810

Perimylopidae St. George, 1939

Prostomidae C. G. Thomson, 1859

Pterogeniidae Crowson, 1953

Pyrochroidae Latreille, 1807

Pythidae Solier, 1834

Ripiphoridae Gemminger and Harold, 1870

Salpingidae Leach, 1815

Scraptiidae Mulsant, 1856

Stenotrachelidae C. G. Thomson, 1859

Synchroidae Lacordaire, 1859

Tenebrionidae Latreille, 1802

Tetratomidae Billberg, 1820

Trachelostenidae Lacordaire, 1859

Trictenotomidae Blanchard, 1845

Ulodidae Pascoe, 1869

Zopheridae Solier, 1834

De estas familias nos quedamos ahora con los meloidos.

La Comisión Internacional de Nomenclatura Zoológica (ICZN, 1999) otorgó prioridad para esta familia al nombre Meloidae Gyllenhal, 1810, sobre Horiidae Latreille, 1802.

Son una familia con unas 2.500 especies en todo el mundo. La familia Meloidae Gyllenhal, 1810 comprende en la actualidad 64 especies en la península Ibérica y Baleares, agrupadas en 18 géneros pertenecientes a las dos subfamilias —Meloinae Gyllenhal, 1810 y Nemognathinae Cockerell, 1910— representadas en la región paleártica.

Varios aspectos hacen de los meloidos un grupo peculiar e interesante:

1.- Producen cantaridina, un veneno del que ya he hablado cuando comenté cosas sobre Lytta vesicatoria. Una curiosidad que no dije entonces y aprovecho para comentar ahora es que en ocasiones estos insectos muertos contaminan la alfalfa almacenada con cantaridina e intoxican al ganado.

2.- Los meloidos sufren hipermetamorfosis. Su primer estadio larval es llamado planidio y es más activo que los estadios subsiguientes, generalmente con ojos y patas que pierden en estadios posteriores. Las larvas atacan principalmente a las abejas, pero también parasitan huevos de saltamontes. Si bien algunas veces son considerados parásitos, no lo son realmente puesto que aun cuando se alimentan de su huésped y de las provisiones de este, son capaces de sobrevivir con solo las provisiones del mismo. Es más apropiado llamarlos cleptoparásitos.

Los adultos en cambio se alimentan de flores y hojas, entre otras familias: Amaranthaceae, Asteraceae, Fabaceae y Solanaceae.

La familia Meloidae se divide en cuatro subfamilias: Eleticinae, Meloinae, Nemognathinae y Tetraonycinae. En la Península Ibérica tenemos representantes de solo dos subfamilias: Meloinae y Nemonagnathinae. El especimen que nos atañe es de la subfamilia Nemognathinae y dentro de esta se encuentra en la tribu Nemognathini.

En el área Ibero-Balear podemos encontrar especies de los siguientes géneros de la tribu Nemognathini Laporte, 1840

Género Apalus Fabricius, 1775

Género Euzonitis Semenov, 1893

Género Leptopalpus Guérin–Méneville, 1834

Género Nemognatha Illiger, 1807

Género Sitaris Latreille, 1802

Género Sitarobrachys Reitter, 1883

Género Stenoria Mulsant, 1857

Género Zonitis Fabricius, 1775

El género Género Zonitis (Fabricius, 1775) incluye muchísimas especies, entre ellas

Zonitis flava Fabricius, 1775

Si atendemos a los sinónimos que ha tenido esta especie, nos daremos rápidamente cuenta que los meloideos ofrecen un verdadero problema taxonómico. Podemos encontrar referencias a esta especie con la siguiente laraga lista de sinónimos: Mylabris testacea (Fabricius, 1781), Apalus testaceus (Fabricius, 1781), Zonitis praeusta (Fabricius, 1792), Zonitis nigripennis (Fabricius, 1798), Zonitis thoracica (Laporte, 1840), Zonitis scutellata (Motschulsky, 1872), Zonitis nigripes (Motschulsky, 1872), Zonitis impressicollis (Motschulsky, 1872), Zonitis analis (Abeille de Perrin, 1880), Zonitis praeusta ancoroides (Escherich, 1892), Zonitis praeusta fusciventris (Rey, 1892), Zonitis praeusta unicolor (Ragusa, 1898), Zonitis analis hipponensis (Pic, 1900), Zonitis analis signatithorax (Pic, 1900), Zonitis praeusta flaviventris (Müller, 1902), Zonitis praeusta nigripes (Müller, 1902), Zonitis praeusta nigrithorax (Pic, 1904), Zonitis praeusta sophiensis (Nedelkov, 1905), Zonitis flava obscuriceps (Pic, 1907), Zonitis praeusta melanopus (Wellman, 1910), Zonitis flava atripes (Reitter, 1911), Zonitis praeusta inscutellaris (Pic, 1922), Zonitis praeusta moltonii (Schatzmayr, 1941), Zonitis praeusta semiobscura (Schatzmayr, 1941), Zonitis praeusta atriventris (Pic, 1951), Zonitis praeusta latenigra (Pic, 1951), Zonitis praeusta metasternalis (Csiki, 1953), Zonitis praeusta gaditana (Pardo Alcaide, 1956), Zonitis praeusta nigriceps (Pardo Alcaide, 1956), Zonitis praeusta ramirezi (Pardo Alcaide, 1956), Zonitis praeusta metasternaloides (Kaszab, 1958) y Zonitis praeusta reitteri (Kaszab, 1958).

Esta especie se extiende por el extremo noroccidental de África, sur de Europa, Rusia meridional, Asia Menor, Cáucaso y Asia central (Bologna, 1991, 2008).

Repartida por buena parte del territorio ibero–balear, ocupando la práctica totalidad de la mitad este peninsular. Señalada en la mayoría de citas y registros antiguos como Z. praeusta Fabricius o Z. nigripennis Fabricius.

Para nuestro fastidio, hay otro género llamado directamente Nemognatha, también con muchísimas especies, del que son muy difíciles de diferenciar estos Zonitis, a no ser que se observe el aedeagus o edeago, que es el órgano copulador de los insectos machos a través del cual secretan el esperma desde los testículos durante la cópula con la hembra.

Por cierto y ya que estamos con el tema, es interesante resaltar que el esperma de los artrópodos pasa a la hembra en forma de cápsulas denominadas espermatóforos que encierran los espermatozoides. Además de los espermatóforos, en algunas especies el aedeagus también descarga spermatophylax, una bola de secreciones nutrientes para ayudar a la hembra a alimentar a la descendencia.

Pues bien, volviendo a nuestro Zonitis flavus, diremos que este coleóptero meloideo es de pequeño tamaño, con cabeza y tórax de color naranja. Precisamente de ahí le viene lo de “flava” pues este término deriva del latín "flavus, -a, -um" que significa amarillo o rubio.

Sus élitros pueden ser anaranjados o pardos, con el ápice oscuro. En ocasiones son totalmente oscuros, con pubescencia dorada. Las tibias son oscuras en su parte distal, con dos espinas metatibiales, siendo la frontal plana.

Curiosamente y aunque en su estado adulto son vegetarianas, en su estados iniciales de larva, crecen y se alimentan dentro de huevos de otras especies, abejas o saltamontes por ejemplo.

ELATERIFORMIA

El infraorden Elaterioformia tiene las siguientes subfamilias

Superfamilia Buprestoidea

Superfamilia Byrrhoidea

Superfamilia Dascilloidea

Superfamilia Scirtoidea

Superfamilia Elateroidea

Y la Subfamilia Elateroidea, engloba las siguientes familias:

Artematopodidae (Lacordaire, 1857)

Brachypsectridae (Leconte & Horn, 1883)

Cantharidae (Imhoff, 1856)

Cerophytidae (Latreille, 1834

Drilidae (Blanchard, 1845)

Elateridae (Leach, 181

Lampyridae (Rafinesque, 1815)

Lycidae (Laporte de Castelnau, 1836)

Melasidae (Leach, 1817)

Omalisidae (Lacordaire, 1857)

Omethidae (LeConte, 1861)

Phengodidae (LeConte 1861)

Plastoceridae (Crowson, 1972)

Rhagophthalmidae (E. Olivier, 1907)

Rhinorhipidae (Lawrence, 1988)

Throscidae (Laporte, 1840)

Telegeusidae (Leng, 1920)

†Praelateriidae (Dolin, 1973)

†Berendtimiridae (Winkler, 1987)

Es precisamente Cantharidae (Imhoff, 1856) la que contiene la Subfamilia Cantarinae que contiene los siguientes géneros repartidos en dos tribus:

Tribus Cantharini

Ancistronycha

Armidia

Atalantycha

Athemus

Boveycantharis

Cantharis

Cantharomorphus

Cordicantharis

Cratosilis

Cultellunguis

Cyrtomoptera

Metacantharis

Occathemus

Pakabsidia

Podistra

Rhagonycha

Rhaxonycha

Sinometa

Themus

Tribu Podabrini

Asiopodabrus

Dichelotarsus

Hatchiana

Micropodabrus

Podabrus

Además tenemos dos géneros incertae sedis ya extintos: †Hoffeinsensia - †Sucinocantharis

Se estima que el número de especies de cantáridos en la Península Ibérica es de más de 130

El Género Rhagonycha, Eschscholtz, 1830 es el que tiene la especie que es igualita que Zonitis flavus.

Rhagonycha fulva (Scopoli, 1763)

Esta especie fue descrita por el entomólogo italiano Giovanni Antonio Scopoli en 1763. Nosotros la conocemos como coracero rojo, nombre adoptado del ámbito militar, donde significa “soldado, especialmente de caballeria, armado con coraza”.

El término Rhagonycha deriva del griego”rhagos, ou” que significa racimo, uva y de “onyx, onykos” que significa uña. Fulva deriva del latín “fulvus, -a, -um” que significa dorado, amarillo.

Sinónimos: Cantharis fulva, Telephorus bimaculatus DeGeer, 1774, Cicindela maculata Fourcroy, 1785, Telephorus melanurus Olivier, 1790, Rhagonycha terminalis Redtenbacher, 1849, Rhagonycha cailloli Chobaut, 1914, Rhagonycha curtithorax Pic, 1920

Se distribuyen por las regiones templadas de Europa y Asia (Anatolia), y ha sido introducido en América del Norte.

Los adultos se dejan ver entre mayo y agosto, omnipresente en los prados y en los márgenes de los caminos. Lo encontrámos básicamente en las flores de umbelíferas, acompañado por mariposas y abejas. Solo está activo durante el día y vuela como una mosca de flor en flor, en busca de polen y completando a menudo su régimen con un pulgón si se le presenta la ocasión.

Se trata de un escarabajo de 7-10 mm de longitud, con el cuerpo plano y alargado, y una coloración ocre rojiza, con una tonalidad débilmente negruzca en la punta de los élitros y tarsos. Los élitros son suaves y poco queratinizados. Las antenas son filiformes y relativamente largas. La hembra se reconoce por su abdomen, mucho mas voluminoso que el del macho. El apareamiento tiene lugar sobre las flores. De hecho,sobre las umbelíferas se pueden formar múltiples parejas al mismo tiempo.

La hembra fecundada pone sus huevos en el suelo. La larva, parda marronácea, de aspecto aterciopelado, permanece durante todo el invierno sobre las piedras o en cuevas y se transforma en adulto en la primavera siguiente. Pueden verse al salir incuso encima de la nieve, lo que les valió el nombre de gusanos de nieve. Antiguamente se consideraba la presencia de estos gusanos en la nieve como presagio de mal agüero.

Una curiosidad es que debido a que poseen un tegumento blando, al morir, sus élitros tienden a retorcerse por efecto de la desecación. Por ello, los estudiosos de los coleópteros durante mucho tiempo han dejado de lado a este insecto debido a su tendencia a “quedar mal” en las colecciones.

Subespecies:

Rhagonycha fulva var. delahoni Schilsky, 1908

Rhagonycha fulva var. inapicalis Fiori, 1914

Rhagonycha fulva var. usta (Gemminger, 1870)

Los asílidos: moscas bravas

Ya sabemos que los braquíceros (Brachycera) son uno de los subórdenes clásicos de dípteros y que es típico de ellos la reducción de la segmentación de las antenas. Los dípteros pertenecientes a este suborden presentan el aspecto de lo que vulgarmente llamamos moscas.

Hasta no hace mucho los clasificábamos en 6 Infraórdenes:

• Asilomorpha
• Muscomorpha
• Stratiomyomorpha
• Tabanomorpha
• Vermileonomorpha
• Xylophagomorpha

La clasificación actual de Pape et al de 2011 del Suborden Brachycera Macquart, 1834 es mucho mas complicada y no voy a abordarla de lleno ahora. Dentro de esta clasificación tenemos una Superfamilia denominada Superfamilia Asiloidea Latreille, 1802, que comprende las siguientes familias:

    Familia Bombyliidae Latreille, 1802
    Familia Asilidae Latreille, 1802
    Familia Mydidae Latreille, 1809
    Familia Apioceridae Bigot, 1857
    Familia Evocoidae Yeates, Irwin & Wiegmann, 2006
    Familia Apsilocephalidae Nagatomi, Saigusa, Nagatomi & Lyneborg, 1991
    Familia Scenopinidae Burmeister, 1835
    Familia Therevidae Newman, 1834
    Familia Cratomyiidae Mazzarolo & Amorim, 2000 (extinto)
    Familia Protapioceridae Ren, 1998 (extinto)
    Familia Protomphralidae Rohdendorf, 1957 (extinto)
       
Los Asilidae, junto con Bombyliidae y Therevidae, son las familias más representativas de la superfamilia de Asiloidea y forman uno de los grupos más característicos de la Brachycera inferior.

Hoy contaré algo de los asílidos, unas curiosas moscas bravas de esta familia Asilidae.

La familia Asilidae es una de las más diversas en el orden Diptera. Latreille es la autoridad que estableció la existencia de esta familia de dípteros en el 1802. En el presente, Asilidae incluye 7.500 especies descritas en aproximadamente 556 géneros. Contiene catorce subfamilias aceptadas de momento, pero a día de hoy la clasificación en Asilidae de los taxones superiores (subfamilias, tribus, géneros) es poco conocida.

Nuestro conocimiento de los asílidos es claramente insuficiente y el número de nuevas especies descritas aumenta rápidamente.

Subfamilia Asilinae

    Aneomochtherus flavicornis (Ruthe, 1831)
    Antipalus varipes (Meigen, 1820)
    Antiphrisson trifarius (Loew, 1849)
    Asilus crabroniformis Linnaeus, 1758
    Didysmachus picipes (Meigen, 1820)
    Dysmachus fuscipennis (Meigen, 1820)
    Dysmachus praemorsus (Loew, 1854)
    Dysmachus trigonus (Meigen, 1804)
    Echthistus rufinervis (Meigen, 1820)
    Erax barbatus Scopoli, 1763
    Eutolmus rufibarbis (Meigen, 1820)
    Machimus arthriticus (Zeller, 1840)
    Machimus chrysitis (Meigen, 1820)
    Machimus cyanopus (Loew, 1849)
    Machimus gonatistes (Zeller, 1840)
    Machimus rusticus (Meigen, 1820)
    Machimus setibarbus (Loew, 1849)
    Neoepitriptus setosulus (Zeller, 1840)   
    Neoitamus cothurnatus (Meigen, 1820)
    Neoitamus cyanurus (Loew, 1849)
    Neoitamus socius (Loew, 1871)
    Neomochtherus geniculatus (Meigen, 1820)
    Neomochtherus pallipes (Meigen, 1820)
    Pamponerus germanicus (Linnaeus, 1758)
    Philonicus albiceps (Meigen, 1820)
    Rhadiurgus variabilis (Zetterstedt, [1838])
    Stilpnogaster aemula (Meigen, 1820)
    Tolmerus atricapillus (Fallén, 1814)
    Tolmerus atripes Loew, 1854
    Tolmerus cingulatus (Fabricius, 1781)
    Tolmerus cowini (Hobby, 1946)
    Tolmerus micans (Meigen, 1820)
    Tolmerus poecilogaster (Loew, 1849) [*1]
    Tolmerus pyragra (Zeller, 1840)
    Tolmerus strandi (Duda, 1940)

Subfamilia Bathypogoninae
Subfamilia Brachyrhopalinae
Subfamilia Dasypogoninae

    Dasypogon diadema (Fabricius, 1781)
    Leptarthrus brevirostris (Meigen, 1804)   
    Leptarthrus vitripennis (Meigen, 1820)
    Molobratia teutonus (Linné, 1767)

Subfamilia Dioctriinae
Subfamilia Laphriinae
   
    Andrenosoma albibarbe (Meigen, 1820)
    Andrenosoma atrum (Linnaeus, 1758)
    Choerades castellanii (HradskÝ, 1962)
    Choerades dioctriaeformis (Meigen, 1820)
    Choerades femorata (Meigen, 1804)
    Choerades fimbriata (Meigen, 1820)
    Choerades fuliginosa (Panzer, [1798])
    Choerades fulva (Meigen, 1804)   
    Choerades gilva (Linnaeus, 1758)
    Choerades ignea (Meigen, 1820)
    Choerades marginata (Linnaeus, 1758)
    Choerades rufipes (Fallén, 1814)
    Laphria ephippium (Fabricius, 1781)
    Laphria flava (Linnaeus, 1761)
    Laphria gibbosa (Linnaeus, 1758)
    Laphria vulpina Meigen, 1820

Subfamilia Leptogastrinae

    Leptogaster cylindrica (De Geer, 1776)
    Leptogaster guttiventris Zetterstedt, 1842   
    Leptogaster pubicornis Loew, 1847
    Leptogaster subtilis Loew, 1847

Subfamilia Ommatiinae
Subfamilia Phellinae
Subfamilia Stenopogoninae

    Cyrtopogon lateralis (Fallén, 1814)
    Cyrtopogon maculipennis (Macquart, 1834)
    Cyrtopogon ruficornis (Fabricius, 1794)
    Dioctria atricapilla Meigen, 1804
    Dioctria bicincta Meigen, 1820
    Dioctria cothurnata Meigen, 1820
    Dioctria flavipennis Meigen, 1820
    Dioctria harcyniae Loew, 1844
    Dioctria humeralis Zeller, 1840
    Dioctria hyalipennis (Fabricius, 1794)   
    Dioctria lateralis Meigen, 1804
    Dioctria linearis (Fabricius, 1787)
    Dioctria longicornis Meigen, 1820
    Dioctria oelandica (Linnaeus, 1758)
    Dioctria rufipes (De Geer, 1776)
    Dioctria rufithorax Loew, 1853
    Dioctria sudetica Duda, 1940
    Holopogon fumipennis (Meigen, 1820)
    Holopogon nigripennis (Meigen, 1820)

Subfamilia Stichopogoninae

    Lasiopogon cinctus (Fabricius, 1781)
    Stichopogon albofasciatus (Meigen, 1820)   
    Stichopogon elegantulus (Wiedemann, 1820)
    Stichopogon schineri Koch, 1872

Subfamilia Tillobromatinae
Subfamilia Trigonomiminae
Subfamilia Willistonininae

Para la determinación correcta y segura de género y especie dentro de los asílidos, es necesario tener ambos sexos. El ovipositor puede ayudar a identificar el género correcto.  Los genitales del macho ayudan para la identificación de la especie.

La existencia de estas moscas ya es muy antigua pues la prueba fósil más antigua que tenemos de esta familia de dípteros es del Jurásico Superior.

Estas moscas, conocidas con el nombre vulgar de moscas asesinas (y para los anglosajones Robber fly o moscas ladronas), habitan todas las regiones del mundo excepto las regiones árticas. La mayor variedad la encontramos en las regiones subtropicales y tropicales. Parece ser que prefieren las áreas abiertas. En algunos desiertos están entre los depredadores dominantes.

Hay variaciones en su distribución según la subfamilia, por ejemplo, mientras que las Ommatiinae se concentran en las regiones oriental, afrotropical y australiana, las Stichopogoninae se ven más en la región Palaeartica y las Apocleinae en los Neotrópicos. La diversidad es bastante mayor en el sur de Europa, alrededor del Mediterráneo. En los últimos 30 años el mayor número de taxones nuevos descritos se encuentra en el sur de África, Rusia oriental y Chile.

Los asílidos se alimentan de otras moscas, diversas abejas y avispas, libélulas, saltamontes y también de arañas. Esperan agazapadas en cualquier rincón soleado, camufladas y atentas a los movimientos que hay a su alrededor. Cuando cualquier cosa se mueve en su perímetro de caza comienza inmediatamente una persecución endiablada por el aire. Una vez fijado el objetivo será difícil que la mosca falle,l a víctima será alcanzada en sólo 2 o 3 segundos y capturada en pleno vuelo. Agarran firmemente a la presa con sus patas e inmediatamente la apuñalan con su trompa sin piedad, paralizándola rápidamente al  inyectar las toxinas de sus jugos digestivos. Seguidamente se posan en cualquier sitio y absorben sus fluidos.

Estas moscas asesinas son de muy variado tamaño, estando las más grandes de nuestro entorno en torno a los 3 cm.

Los asílidos adultos o imagos tienen el tegumento cubierto de pelo grueso, especialmente en la cabeza y el tórax y las libreas son a menudo llamativos, con colores que van de marrón a negro a gris, a veces en contraste con otros colores como el rojo y el amarillo, imitando la librea de himenópteros.

La cabeza es libre y móvil y dicóptica en ambos sexos con tres ocelos en una depresión entre los dos grandes ojos compuestos que son una característica de los asílidos. La región occipital tiene una o más hileras de cerdas alineadas detrás del margen posterior del ojo (cerdas occipitales).

La región facial tiene un perfil convexo con un haz denso y característico de cerdas, un verdadero bigote de setas densas: el mystax (término derivado del mystakos griego que significa "bigote" o "labio superior"). Del que se ha sugerido que sirve para proporcionar  protección para la cabeza y la cara de una presa que se defiende.

Las antenas son del tipo aristante, compuestas típicamente de 5 segmentos pero a veces de 3-4, dependiendo de la estructura del estilete. El escapo y pedicelo suelen ser relativamente cortos y peludos; El tercer segmento (o primer flagelomero) tiene forma oval u oblonga, es generalmente más largo que los dos segmentos basales y lleva un estilete compuesto generalmente de dos segmentos, de los cuales el basal es muy corto. En algunos asilidos, el estilete puede ser monoarticulado o estar ausente.

Las piezas bucales son cortas y modificadas para la perforación-succión. Consisten en una probóscide muy esclerotizada que incluye el labio y los maxilares que forman un canal alimentario, el labrum y un órgano perforante, la hipofaringe. Esta probóscide es redondeada en su sección transversal pero lateralmente (dorsoventralmente) aplastada; generalmente es robusta, recta y capaz de penetrar a través del duro tegumento de algunos Coleópteros. Con ella inyecta una saliva con enzimas neurotóxicas y proteolíticas a sus presas para paralizarlas y prepararlas para la digestión. Después absorben el alimento licuado.

Las alas están bien desarrolladas, a menudo relativamente estrechas para un vuelo rápido. Los detalles de la venación del ala determinan subfamilias y taxones inferiores. Las alas son más hialinas, pero a veces de color ahumado u oscuro, o parcialmente infuscadas en muchos géneros o completamente oscurecidas.

El tórax es robusto y compacto. Posee cerdas largas (macrochaeta) útiles como caracteres taxonómicos. Las cerdas de este tipo están siempre presentes en el notopleuron (cerdas no pleurales) y, en dos series, en el mesonotum (dorsocentral, supralar y postalar). También hay cerdas en el metanotum (cerdas dorsocentral en el episternum ventral y en el ápice del mesoscutellum).

El abdomen consta de 6-8 segmentos visibles que preceden a los genitales en los machos, pero el octavo segmento que precede al ovopositor está a veces total o parcialmente oculto. Es largo y estrecho de forma cónica en la mayoría de las especies pero en ocasiones por ejemplo en Laphria, ancho, dorsoventralmente aplastado y corto imitando a una abeja o abejorro. En Leptogastrinae el abdomen es extremadamente largo y delgado. En algunas tribus, el macho sufre una torsión axial de 180 grados.

Respecto al ciclo vital de los asílidos, el verano es su época de apogeo y durante el otoño se aparean. Las hembras fecundadas depositan sus huevos en una variedad de sustratos.  El huevo es hialino o pigmentado y de forma variable de esférica a ovalada . Mide hasta 2 mm de longitud y su superficie es lisa o con un patrón microscópico poligonal (visible sólo en el microscopio electrónico).

Las larvas se encuentran a menudo en la materia orgánica en descomposición, en estiércol o en madera medio podrida como así también en el suelo. La larva no tiene patas, es cilíndrica y alargada, más o menos aplanada dorso-ventralmente y afilada en los extremos cefálico y caudal. Son de color blanco o amarillento, con una cabeza pequeña, rugosa, oscuramente pigmentada y hipognática. El abdomen está compuesto de 8 uritos aparentes, con los dos últimos a menudo fundidos y más o menos reducidos. El sistema respiratorio es anfineustico, con dos pares de espiráculos, uno torácico y otro abdominal. También hay estigmas rudimentarios y no funcionales en otros segmentos abdominales.

El desarrollo postembrionario consiste en cuatro etapas larvales (instars) y una pupa. Las larvas del primer instar difieren de las de las otras etapas tanto en la etología como en el régimen trófico. Las larvas de la mayoría de los asilidos conocidos viven en el suelo o en el caso de algunos grupos taxonómicos, en material orgánico podrido, generalmente madera y corteza de árboles muertos. En la mayoría de las especies las larvas son omnívoras y suelen comer los huevos y larvas de otros insectos. Con respecto al comportamiento alimentario, la mayor parte de la literatura da a las larvas de Asilidae como entomófagas, pero puede configurarse como intermedio entre la depredación y el ectoparasitismo. La pupa está desnuda y es capaz de moverse.

Para la identificación de este asílido se ha utilizado una clave dicotómica para Asilinae desarrollada por Fritz Geller-Grimm, Jefe del Departamento de Historia Natural Museo de Wiesbaden desde Diciembre del 2009 y basada en las publicaciones de ENGEL (1930) y WEINBERG & BÄCHLI (1995).

1 a.     Longitud del metatarso de la pata media algo reducida y en ocasiones  ancho algo aumentado…… Echthistus rufinervis (Meigen, 1820)
1 b.     Metatarso de la pata media de longitud normal…... 2
2 a.     Cara con una mancha brillante en el centro y sólo los bordes de los ojos cubiertos con una capa densa de pelo corto, enmarañado y lanoso…… Rhadiurgus variabilis (Zetterstedt, [1838])
2 b.     Cara completamente cubierta con pubescencia o sólo con una franja longitudinal muy estrecha y brillante…... 3
3 a.     No existen cerdas marginales laterales en los tergitos (cerdas discales)…… 4
3 b.     Hay cerdas marginales laterales en los tergitos (cerdas discales) bien desarrolladas…… 6
4 a.     Base de ala blanca lechosa en machos; Margen superior de la gibosidad facial claramente angular…… Pamponerus germanicus (Linnaeus, 1758)
4 b.     Base de ala del mismo color que el resto del ala; Margen superior de la gibosidad facial de la forma habitual, más redondeado…… 5
5 a.     Tergitos posteriores amarillos; Mystax de color amarillo…… Asilus crabroniformis Linnaeus, 1758
5 b.     Todos los tergitos negros; Mystax de color blanco en parte superior y negro en la inferior…… Antiphrisson trifarius (Loew, 1849)
6 a.     Tergitos y esternitos negros y brillantes, a excepción de algunos márgenes traseros de cada segmento que estan cubiertos por una densa capa de pelo corto…… Stilpnogaster aemula (Meigen, 1820)
6 b.     Tergitos cubiertos por una densa capa de pelo corto…… 7
7 a.     Cerdas postoculares (cerdas occipitales) largas y agudas, dobladas anteriormente en ángulo recto en la zona medial; Al menos los dos últimos segmentos anteriores al ovipositor de color negro brillante…… Neoitamus
7 b.     Cerdas postoculares (cerdas occipitales) muy poco dobladas o rectas; Dos últimos segmentos anteriores al ovipositor cubiertos por una densa capa de pelo corto…… 8
8 a.     Cerdas dorsocentales y acrosticales (las dos hileras de pelos ocerdas se extiende una a cada lado de la línea mediadel tórax) débilmente desarrolladas o inexistentes en la sutura transversa anterior; Gibosidad facial restringida al tercio inferior de la cara…… 9
8 b.     Cerdas dorsocentales y acrosticales bien desarrolladas en la sutura transversa anterior (como mínimo ocupando la mitad inferior de la cara)…… 11
9 a.     Patas completamente negras; Ovipositor terminando con espinas erectas…… Philonicus albiceps (Meigen, 1820)
9 b.     Tibias de las patas amarillentas o rojas; ovipositor sin espinas erectas terminales…… 10
10 a.     Esternitos brillantes…… Neomochtherus
10 b.     Esternitos cubiertos por una fina capa de pequeños pelos…… Aneomochtherus flavicornis (Ruthe, 1831)
11 a.     Área alrededor de las venas cruzadas del ala de tono mas oscuro; Postpedicelo (tercer segmento de la antena) alargado…… Erax barbatus Scopoli, 1763
11 b.     Área alrededor de las venas cruzadas del ala sin estar especialmente oscurecida; postpedicelo del tamaño y forma habitual…… 12
12 a.     Ovipositor ancho y corto (más ancho que largo), densamente poblado en su zona ventral de pelo amarillo…… Antipalus varipes (Meigen, 1820)
12 b.     Ovipositor aplastado lateralmente (mas largo que ancho)…… 13
13 a. Cerci (los apéndices pares que nacen de la punta del abdomen) del ovipositor ocultos por el último tergito…… Dysmachus-group [Didysmachus, Dysmachus, Eutomlus]
13 b.     Cerci libres, sin cubrir por el último tergito…...Machimus-group [Machimus, Neoepitriptus, Tolmerus]

*Puede tenerse acceso a mas claves dicotómicas para ayuda en la clasificación de los asílidos en https://asiloidflies.si.edu/content/online-identification-keys?field_familyasiloid_value=Asilidae

Género Machimus

Las especies del género Machimus se encuentran por todo el mundo excepto Australia y Nueva Zelanda. Muchas especies son nativas de la ecozona paleártica y del sur de Asia.

Son moscas salteadoras de medianas a grandes. Tienen una longitud entre 16 y 25 mm.  Poseen largas patas con muchas espinas. El abdomen es esbelto y el de la hembra se prolonga en un ovopositor agudo. Hay bastantes especies difíiles de distinguir, habiéndose descrito hasta el 2013 188 especies. En la Peninsula ibérica tenemos las siguientes especies:

Machimus aberrans
Machimus achterbergi
Machimus albifacies
Machimus arthriticus
Machimus blascoi
Machimus caliginosus
Machimus chrysitis
Machimus concinnus
Machimus debilis
Machimus elegans
Machimus fimbriatus
Machimus fortis
Machimus gonatistes
Machimus ibizensis
Machimus javieri
Machimus lacinulatus
Machimus linearis
Machimus lucentinus
Machimus margaretae
Machimus nevadensis
Machimus pilipes
Machimus pyrenaicus
Machimus rusticus
Machimus setibarbis
Machimus subdolus

Se las puede ver de Julio a septiembre y habitan en lindes de bosques y en terrenos secos y abiertos.
La mosca se abalanza desde un puesto de vigilancia sobre los insectos que pasan volando y los atarapa con las patas de largas espinas para despues succionarlos en su puesto de vigilancia. No es raro que domine a presas que casi alcanzan su mismo tamaño. La larva se desarrolla en el suelo y prece que se alimenta a si mismo de otros insectos.

Machimus rusticus (Meigen, 1820)

Es de distribución paleártica, encontrándose en  Albania, Asia, Belgica, Bulgaria, Alemania, Reino UNido, Francia, Grecia, Italia, Yugoslavia, Holanda, Norte de Africa, Austria, Europa del este, Polonia, Rumania, Suiza, ESpaña, República checa, Slovaquia y Turquía.

Este asílido mide entre 15 y 25 mm. Todos sus fémures son negros, las tibias son rojas en la base.
En Europa, la especie vive en hábitats abiertos, cálidos y secos, especialmente en praderas secas con cubierta vegetal cerrada. El periodo de vuelo es de mayo a agosto. El espectro de presas es, como en la mayoría de los asilidos, muy amplio. Puede apresar a otros dípteros, pero también a escarabajos, himenópteros, mariposas y libélulas. La hembra ovipone sobre las flores. El desarrollo larvario incluye siete estadios larvales y dura uno o dos años. Las larvas viven en el suelo y también se alimentan de las larvas de algunos Scarabaeidae.