Poecilochroa variana

Hoy voy a hablaros de un gnafósido del que hizo fotografías con el tlf de su madre, el pequeño de la casa de 12 años de edad, David.

Los Gnafósidos son un grupo de arañas, por lo que antes de nada, hablaré un poco de la clasificación de las arañas y de los grupos que en ella hacemos.

Las arañas se clasificaron durante mucho tiempo en familias que luego se agruparon en superfamilias, algunas de las cuales a su vez se colocaron en una serie de taxones superiores por debajo del nivel de infraorden. Cuando se aplicaron enfoques más rigurosos, como la cladística, a la clasificación de arañas, quedó claro que la mayoría de las principales agrupaciones utilizadas en el siglo XX no eran compatibles. En el nivel superior, la filogenia de las arañas se discute ahora con nombres informales de clados, como el "clado RTA", el clado "Calmistrum oval" o el clado "Divided Cribellum".Los nombres antiguos que se usaban formalmente anteriormente se usan como nombres de clado, como por ejemplo Entelegynae y Orbiculariae.

Ante todo recordemos que los Araneomorphae Smith, 1902 los dividíamos en dos infraordenes,

• Hypochilae (con solo la familia Hypochilidae)
• Neocribellatae.

Los Neocribellatae podrían dividirse en Austrochiloidea, y los dos clados Entelogynae y Haplogynae (este último no es un grupo monofilético), cada uno contando con sus respectivas superfamilias.

Los Entelegynae se caracterizan por la posesión de 8 ojos, aunque algunas especies tienen 6 ojos y otras no tienen ojos o los tienen de muy reducido tamaño. Es un clado de arañas que engloba arañas cribeladas y arañas sin cribelo.

En el año 2005 se publicó la siguiente clasificación de estas arañas:

Agelenidae Amaurobiidae Ammoxenidae Amphinectidae Anapidae Anyphaenidae Araneidae Archaeidae Chummidae Cithaeronidae Clubionidae Corinnidae Cryptothelidae Ctenidae Cyatholipidae Cybaeidae Cycloctenidae Deinopidae Desidae Dictynidae

Eresidae Gallieniellidae Gnaphosidae Hahniidae Halidae Hersiliidae Holarchaeidae Homalonychidae Huttoniidae Lamponidae Linyphiidae Liocranidae Lycosidae Malkaridae Mecysmaucheniidae Micropholcommatidae Mimetidae Miturgidae Mysmenidae Neolanidae

Nesticidae Nicodamidae Oecobiidae Oxyopidae Palpimanidae Pararchaeidae Philodromidae Phyxelididae Pimoidae Pisauridae Prodidomidae Psechridae Salticidae Selenopidae Senoculidae Sparassidae Stenochilidae Stiphidiidae Symphytognathidae Synaphridae

• Synotaxidae
• Tengellidae
• Tetragnathidae
• Theridiidae
• Theridiosomatidae
• Thomisidae
• Titanoecidae
• Trechaleidae
• Trochanteriidae
• Uloboridae
• Zodariidae
• Zoridae
• Zorocratidae (muchos de sus géneros ahora se incluyen en Udubidae)
• Zoropsidae

10 años despues, en 2015, Jonathan A. Coddington clasifica los Entelegynae en tres grandes grupos:

• Superfamilia Eresoidea C.L. Koch, 1850
• Superfamilia Palpimanoidea
• Clado "Canoe tapetum"

Aunque hay quien agrupa en un solo grupo Eresoidea y Palpimanoidea.

El nombre del clado "canoe tapetum" hace referencia a la forma del tapetum lucidum de los ojos secundarios de estas arañas, es decir, la capa de tejido situada en la retina que actúa como espejo para aumentar la luz que incide en los fotorreceptores y aumentar la visión en condicones de poca luz. Las capas del tapetúm de estas arañas forman un ángulo de 90-100º, dándole forma parecida a la de una canoa.

Tomado de Sensory Perception: Mind and Matter. Editado por Friedrich G. Barth, Patrizia Giampieri-Deutsch, Hans-Dieter Klein

Este clado lo subdividimos a su vez en otros tres grandes grupos

• Orbiculariae
• Familia Nicodamidae Simon, 1897
• Clado "divided cribellum"

El cribelo es un órgano de las arañas que se encuentra delante de las hileras y produce una seda que tiene una estructura similar a la lana, también llamada seda cribelar, la cual se crea a partir de sus fúsculas funcionales. El cribelo es una sinapomorfia del Infraorden Araneomorphae, donde apareció por primera vez como una placa ovalada (Platnick, 1977; Forster et al., 1987). Sin embargo, en algunos araneomorfos el cribelo está dividido medialmente. Es facilmente comprensible que la división del cribellum haya servido como elemento para la lasificación de las arañas.

El clado de arañas con cribelo dividido se subdivide a su vez en dos grupos:

• Titanoecoides
• Clado RTA

El clado RTA se caracteriza por la posesión de una apófisis tibial retrolateral, una proyección dirigida hacia atrás en la tibia del pedipalpo masculino. Este clado contiene más de 21,000 especies, casi la mitad del total actual de alrededor de las 46,000 especies de arañas conocidas. Los miembros de este clado son vagabundos y no construyen redes. Este clado lo subdividimos a su vez en

El Clado Dionycha se caracteriza por tener en el tarso dos garras con mechones de pelos (setas) para facilitar el trepado de la araña. Un análisis de 2014 dio como resultado la clasificación en este clado de unas 20 familias, incluyendo Salticidae, Thomisidae y Clubionidae. La mayoría de las especies de este clado cazan a sus presas en lugar de construir redes y son arañas acribeladas.

Hoy se piensa que la reducción de la tercera garra presente en las arañas ancestrales evolucionó de forma independiente en varios momentos de la historia por lo que no se considera la existencia de las dos garras un criterio que de forma aislada defina el clado.

En 2014, Martín J. Ramírez publicó un importante estudio sobre la filogenia de Dionycha e incluyó a las familias que se enumeran a continuación, donde * significa que la familia puede no ser monofilética o existe alguna otra razón por la cual la inclusión no es directa. Clasificó dos subclados el "clado OMT", caracterizado por la posesión de un tapetum oblicuo, y el "clado CTC", anidado dentro del clado OMT.

Anyphaenidae*

Clubionidae*

Corinnidae*

Eutichuridae

Miturgidae

Philodromidae

Salticidae

Selenopidae

Sparassidae

Thomisidae

OMT clade

Lamponidae

Liocranidae*

CTC clade

Ammoxenidae

Cithaeronidae

Gallieniellidae

Gnaphosidae

Phrurolithidae

Prodidomidae

Trachelidae

Trochanteriidae*

Con respecto a Gnaphosoidea, según las forma de las hileras se ha diferenciado a los Prodidomidae, Lamponidae y Gnaphosidae que han sido considerados "gnaphosoides superiores"de los "gnaphosoids inferiores", Ammoxenidae, Cithaeronidae, Gallieniellidae y Trochanteriidae.

Así pues, Gnaphosoidea se considera una superfamilia constituida por siete familias de arañas con ocho ojos:

• Ammoxenidae: 4 géneros, 18 especies
• Cithaeronidae: 2 géneros, 7 especies
• Gallieniellidae: 11 géneros, 57 especies
• Gnaphosidae: 117 géneros, 2128 especies
• Lamponidae: 23 géneros, 192 especies
• Prodidomidae: 30 géneros, 303 especies
• Trochanteriidae: 19 géneros, 152 especies

Un estudio de 2014 de las arañas pertenecientes al clado Dionycha no evidencia a Gnaphosoidea como un grupo monofilético, sino que lo subdivide en familias (Gnaphosidae, Prodidomidae, Liocranidae, Trachelidae y Phrurolithidae), para formar parte de un clado más grande.

Según Iberfauna que sigue otra clasificación no cladística, la familia Gnaphosidae se encuentra clasificada dentro de la Superfamilia Heteropodoidea Thorell, 1873, dentro de la cual podemos encontrar en la península Ibérica las siguientes familias más

• Familia Clubionidae
• Familia Corinnidae
• Familia Eutichuridae
• Familia Heteropodidae
• Familia Liocranidae
• Familia Miturgidae
• Familia Prodidomidae
• Familia Selenopidae
• Familia Sparassidae
• Familia Zodariidae
• Familia Zoridae
• Familia Zoropsidae

La familia Gnaphosidae Pocock, 1898

El término Gnaphosidae: deriva del griego “grapheys, -eo” que significa cardador, batanero.

Los gnafósidos son una familia de arañas araneomorfas de colores oscuros (pardos o ngeros) con hileras tubulares considerablemente largas. El prosoma de los gnafósidos suele ser ancho en su parte anterior, aunque hay excepciones. Los ojos se colocan formando dos líneas siendo los ojos anteriores oscuros y los posteriores nacarados; los jos medianos posteriores pueden ser ovalados, triangulares o estrechos y alargados. El caparazón es ancho en su parte anterior en la mayoría de los géneros, si bien puede ser puntiagudo en otros. El abdomen es estrechamente ovalado y bastante puntiagudo en su parte posterior. Puede estar uniformemente coloreado y de aspecto brillante o presentar un dibujo de manchas blancas. Las patas son de longitud media, bastante robustas en algunos géneros y con pocas espinas. A menudo presentan pubescencia y escópulas en los segmentos apicales. Las hileras anteriores son prominentes, tubulares y ampliamente separadas en su base.

Se diferencian de los a menudo semejantes Clubiónidos principalmente por las hileras cilíndricas, que en posición de reposo están dispuestas paralelamente o se abren oblicuamente como unos dedos. Por lo demás, a menudo los ojos centrales posteriores no son redondos sinó angulados u ovales. Entre nosotros se encuentran unas 100 especies, en muchos casos difíciles de distinguir.

La mayoría de las especies de esta familia son nocturnas y durante el día pueden encontrarse dentro de su nido de seda, debajo de piedras o entre detritos en lugares secos. Son casi todas adultas en los primeros meses del año. Los machos construyen sus nidos cerca de los de las hembras subadultas y se aparean con ellas inmediatamente después de que han mudado. Los encuentros subsiguientes de los dos sexos pueden dar por resultado la cópula con pocos signos visibles de cortejo, excepto un pequeño rozamiento de las patas. Una vez que ha culminado el apareamiento, los machos se alejan a cierta velocidad. Las hembras construyen sus puestas en verano; los huevos están contenidos en un saco de paredes gruesas que está ubicado en el nido. La madre permanece junto al saco hasta que eclosionan las crías.

Se reconocen los siguientes géneros dentro de esta familia:

Allomicythus Ono, 2009

Allozelotes Yin & Peng, 1998

Amazoromus Brescovit & Höfer, 1994

Amusia Tullgren, 1910

Anagraphis Simon, 1893

Aneplasa Tucker, 1923

Anzacia Dalmas, 1919

Aphantaulax Simon, 1878

Apodrassodes Vellard, 1924

Apodrassus Chamberlin, 1916

Apopyllus Platnick & Shadab, 1984

Aracus Thorell, 1887

Arauchemus Ott & Brescovit, 2012

Arboricaria Bosmans, 2000

Asemesthes Simon, 1887

Asiabadus Roewer, 1961

Australoechemus Schmidt & Piepho, 1994

Benoitodes Platnick, 1993

Berinda Roewer, 1928

Berlandina Dalmas, 1922

Cabanadrassus Mello-Leitão, 1941

Callilepis Westring, 1874

Camillina Berland, 1919

Canariognapha Wunderlich, 2011

Ceryerda Simon, 1909

Cesonia Simon, 1893

Chatzakia Lissner & Bosmans, 2016

Civizelotes Senglet, 2012

Cladothela Kishida, 1928

Coillina Yin & Peng, 1998

Coreodrassus Paik, 1984

Cryptodrassus Miller, 1943

Cubanopyllus Alayón & Platnick, 1993

Diaphractus Purcell, 1907

Drassodes Westring, 1851

Drassodex Murphy, 2007

Drassyllus Chamberlin, 1922

Echemella Strand, 1906

Echemographis Caporiacco, 1955

Echemoides Mello-Leitão, 1938

Echemus Simon, 1878

Eilica Keyserling, 1891

Encoptarthria Main, 1954

Epicharitus Rainbow, 1916

Fedotovia Charitonov, 1946

Gertschosa Platnick & Shadab, 1981

Gnaphosa Latreille, 1804

Haplodrassus Chamberlin, 1922

Hemicloea Thorell, 1870

Herpyllus Hentz, 1832

Heser Tuneva, 2004

Hitobia Kamura, 1992

Homoeothele Simon, 1908

Hongkongia Song & Zhu, 1998

Hypodrassodes Dalmas, 1919

Ibala Fitzpatrick, 2009

Intruda Forster, 1979

Kaitawa Forster, 1979

Kishidaia Yaginuma, 1960

Ladissa Simon, 1907

Laronius Platnick & Deeleman-Reinhold, 2001

Latonigena Simon, 1893

Leptodrassex Murphy, 2007

Leptodrassus Simon, 1878

Leptopilos Levy, 2009

Litopyllus Chamberlin, 1922

Macarophaeus Wunderlich, 2011

Matua Forster, 1979

Megamyrmaekion Reuss, 1834

Micaria Westring, 1851

Microdrassus Dalmas, 1919

Microsa Platnick & Shadab, 1977

Micythus Thorell, 1897

Minosia Dalmas, 1921

Minosiella Dalmas, 1921

Montebello Hogg, 1914

Nauhea Forster, 1979

Neodrassex Ott, 2012

Nodocion Chamberlin, 1922

Nomisia Dalmas, 1921

Nopyllus Ott, 2014

Notiodrassus Bryant, 1935

Odontodrassus Jézéquel, 1965

Orodrassus Chamberlin, 1922

Parabonna Mello-Leitão, 1947

Parasyrisca Schenkel, 1963

Phaeocedus Simon, 1893

Poecilochroa Westring, 1874

Pseudodrassus Caporiacco, 1935

Pterotricha Kulczyński, 1903

Pterotrichina Dalmas, 1921

Sanitubius Kamura, 2001

Scopoides Platnick, 1989

Scotocesonia Caporiacco, 1947

Scotognapha Dalmas, 1920

Scotophaeus Simon, 1893

Sergiolus Simon, 1892

Sernokorba Kamura, 1992  

Setaphis Simon, 1893

Shaitan Kovblyuk, Kastrygina & Marusik, 2013

Shiragaia Paik, 1992

Sidydrassus Esyunin & Tuneva, 2002

Smionia Dalmas, 1920

Sosticus Chamberlin, 1922

Symphanodes Rainbow, 1916

Synaphosus Platnick & Shadab, 1980

Talanites Simon, 1893

Talanitoides Levy, 2009

Titus O. Pickard-Cambridge, 1901

Trachyzelotes Lohmander, 1944

Trephopoda Tucker, 1923

Trichothyse Tucker, 1923 

Turkozelotes Kovblyuk & Seyyar, 2009

Urozelotes Mello-Leitão, 1938

Vectius Simon, 1897

Verita Ramírez & Grismado, 2016

Xenoplectus Schiapelli & Gerschman, 1958

Xerophaeus Purcell, 1907

Xizangia Song, Zhu & Zhang, 2004

Zelanda Özdikmen, 2009

Zelominor Snazell & Murphy, 1997

Zelotes Gistel, 1848

Zelotibia Russell-Smith & Murphy, 2005

Zelowan Murphy & Russell-Smith, 2010

Zimiromus Banks, 1914

 

Y los siguientes géneros extintos:

†Captrix Petrunkevitch, 1942

†Drassyllinus Wunderlich, 1988

†Eognaphosops Wunderlich, 2011

†Eomactator Petrunkevitch, 1958

†Palaeodrassus Petrunkevitch, 1922

†Zelotetis Wunderlich, 2011

Poecilochroa Westring, 1874

Desde el 2017 se reconocen las siguientes especies dentro de este género

 

Poecilochroa albomaculata (Lucas, 1846)

Poecilochroa alcala Barrion & Litsinger, 1995

Poecilochroa anomala (Hewitt, 1915)

Poecilochroa antineae Fage, 1929

Poecilochroa barmani Tikader, 1982

Poecilochroa behni Thorell, 1891

Poecilochroa bifasciata Banks, 1902

Poecilochroa capensis Strand, 1909

Poecilochroa carinata Caporiacco, 1947

Poecilochroa dayamibrookiana Barrion & Litsinger, 1995

Poecilochroa devendrai Gajbe & Rane, 1985

Poecilochroa faradjensis Lessert, 1929

Poecilochroa furcata Simon, 1914

Poecilochroa golan Levy, 1999

Poecilochroa haplostyla Simon, 1907

Poecilochroa incompta (Pavesi, 1880)

Poecilochroa insularis Kulczyński, 1911

Poecilochroa involuta Tucker, 1923

Poecilochroa joreungensis Paik, 1992

Poecilochroa latefasciata Simon, 1893

Poecilochroa loricata Kritscher, 1996

Poecilochroa malagassa Strand, 1907

Poecilochroa parangunifasciata Barrion & Litsinger, 1995

Poecilochroa patricia (Simon, 1878)

Poecilochroa pauciaculeis Caporiacco, 1947

Poecilochroa perversa Simon, 1914

Poecilochroa phyllobia (Thorell, 1871)

Poecilochroa pugnax (O. Pickard-Cambridge, 1874)

Poecilochroa rollini Berland, 1933

Poecilochroa sedula (Simon, 1897) 

Poecilochroa senilis (O. Pickard-Cambridge, 1872)

Poecilochroa senilis auspex (Simon, 1878)

Poecilochroa taborensis Levy, 1999

Poecilochroa taeguensis Paik, 1992

Poecilochroa tikaderi Patel, 1989

Poecilochroa tridotus Caleb & Mathai, 2013

Poecilochroa trifasciata Mello-Leitão, 1918

Poecilochroa variana (C. L. Koch, 1839)

Poecilochroa viduata (Pavesi, 1883)

Poecilochroa vittata Kulczyński, 1911

En la península Ibérica podemos ver solamente las siguientes: Poecilochroa albomaculata Poecilochroa conspicua Poecilochroa furcata Poecilochroa senilis Poecilochroa variana

Poecilochroa variana (C. L. Koch, 1839)

Son sinónimos de esta especie: Drassus nigrofemuratus, Drassus varianus, Gnaphosa variana, Melanophora variana y Pythonissa variana

 

Poecilochroa variana

Las hembras son un poco mas grandes que los machos (8 mm frente a 6 mm). El abdomen es de color negro, mate. En el dorso presenta algunas manchas de pelos blancos muy densos: una mancha anterior arqueada y dos transversales en la parte media que pueden ser interpretadas como una línea transversal interrumpida, y una mancha mas pequeña en la parte terminal. El caparazón es castaño rojizo oscuro con una banda central longitudinal de pelos blancos y alguna manchas en los márgenes. Las patas son de color castaño rojizo con los fémures de color negro y están cubiertas de pelos blancos mas numerosos en las patas posteriores.

Poecilochroa variana

* En esta imagen se aprecia como la araña tiene el abdomen y las hileras cubiertas con una capa de seda. Probablemente sea parte del nido en el que la araña se encontraba refugiada bajo alguna piedra o la tierra.

Mariposa de los muros

Ya hehablado en una ocasión de la mariposa de los muros (Parargeaegeria).

Como ha llegado la primavera, en el muro de enfrente de casa ya he podido observar a una de estas mariposas que típicamente habita en bosques aclarados, margenes forestales y huertos frutales, justo todo lo que tengo rodeando la casa.

En su día mostré como esta mariposa tiene el anverso de las alas de color marrón oscuro con manchas amarillentas claras y cada ala anterior tiene un ocelo con el núcleo blanco; las alas posteriores tienen otros tres o cuatro ocelos. El anverso de las alas posteriores tiene el margen violeta.



Pararge aegeria

Lo que no había conseguido hasta el otro día es fotografiarla de frente, reposando en una hoja.

Pararge aegeria (ampliación)

Posiblemente fuese un macho en un lugar de reposo.

Los machos de esta especie muestran un característico comportamiento territorial. Poseen lugares de reposo sobre hojas desde donde observan el entorno y emprenden breves batallas aéreas con los rivales que pasan, para finalmente regresar a su lugar de reposo Solo en contadas ocasiones puede observarse esta mariposa visitando flores, ya que con mayor frecuencia prefiern chupar la savia que emana de los árboles y lugares húmedos en el suelo, ocasionalmente también fruta muy madura. Se nutre de diversas gramíneas como el lastón (Brachypodium pinnatum), la molinia (Molinia caerulea), Calamagostris epigejos además de cipiráceas como Carex sylvatica.



Las mariquitas de España

Hace tiempo hablé de la Superfamilia Coccinelloidea Latreille, 1807, cuyo Género tipo es Coccinella Linnaeus, 1758.

En la península Ibérica tenemos las siguientes familias dentro de esta superfamilia:

• Familia Alexiidae
• Familia Anamorphidae
• Familia Bothrideridae
• Familia Cerylonidae
• Familia Coccinellidae
• Familia Corylophidae
• Familia Endomychidae
• Familia Euxestidae
• Familia Latridiidae
• Familia Mycetaeidae
• Familia Teredidae

Recordemos que la Familia Coccinellidae Latreille, 1807 se subdivide en las siguientes subfamilias

• Subfamilia Chilocorinae
• Subfamilia Coccidulinae
• Subfamilia Coccinellinae
• Subfamilia Epilachninae
• Subfamilia Ortaliinae
• Subfamilia Scymninae
• Subfamilia Sticholotidinae
  
  

de todas ellas podemos encontrar al menos un representante en nuestra península.

La Subfamilia Coccinellinae Latreille, 1807

En esta subfamilia se engloban especies que carecen de pilosidad en el protórax y los élitros, mostrando una superficie brillante y pulida, de diseños rojos, naranjas, amarillos, blancos y negros. Son las que todo el mundo reconoce en nuestro país como mariquitas o en Galicia Xoaniñas. Esta familia ha sido tradicionalmente un saco en el que se metían casi todas las especies de Coccinellidae y al principio solamente se reconocía a una subfamilia, Epilachininae. Poco a poco se fueron haciendo tribus, llegándose a las 20 y durante mas de un siglo y medio no hubo cambios en esta clasificación aunque a algunos entomólogos no les pareciese demasiado lógica. Hasta que en 1968 Hiroyuki Sasaji estableció la división actual de la familia Coccinellidae, y restringió el ámbito de la subfamilia Coccinellinae a las tribus Coccinellini (incluyendo Synonychini), Discotomini y Psylloborini (hoy Halyziini).

Coccinellinae es un término que deriva del griego “kokkos” que significa grano, semilla, o también “de color escarlata”.

Son característicos de esta Subfamilia:

• último segmento de los palpos maxilares con una forma claramente triangular (securiforme).

• Cuerpo de dos posibles formas diferenciadas (aunque existe una gran cantidad de formas intermedias):

1) ovalada y compacta, con los fémures casi completamente cubiertos por el cuerpo y la cabeza encajada bajo el protórax.

2) alargada, con la cabeza bien diferenciada del protórax y los fémures bien visibles.

• Carencia de pilosidad en el protórax y élitros, mostrando una superficie siempre brillante y pulida.
  

  
  
• Tamaño generalmente grande con diseños en rojo, naranja, amarillo, blanco y negro.

El resto de las características puede ser muy variable. Las antenas son habitualmente medianas, de un largo aproximado al ancho de la cabeza y de inserción variable. Las mandíbulas suelen ser bífidas o multidentadas. Las uñas pueden tener un diente basal o ser bífidas. Las líneas postcoxales pueden ser completas o no. En algunas especies están totalmente ausentes.

Las larvas tienen un tipo campodeiforme, y suelen ser muy activas y de patas bastante largas. Comparten el hábitat y el tipo de alimentación con los adultos.

La Subfamilia Coccinellinae podemos dividirla en tribus, clasificación que es bastante variable porque ha ido cambiando con el tiempo:

• Según Sasaji (1971): Coccinellini - Discotomini - Halyziini.
• Según Kovár (1996): Coccinellini - Tytthaspidini - Discotomini - Halyziini - Singhikalini.
• Según Ślipiński (2007): Coccidulini - Chilocorini - Coccinellini - Diomini - Epilachnini - Noviini - Scymnillini - Sticholotidini - Telsimiini.
• Según BioLib (2016): Azyini - Chilocorini - Coccidulini - Coccinellini - Cranophorini - Cynegetini - Epilachnini - Epivertini - Eremochilini - Monocorynini - Poriini - Telsimiini – Tetrabrachini

En la península ibérica tenemos las siguientes especies

• Tribus Coccinellini Latreille, 1807

• Género Adalia Mulsant, 1846

Subgénero Adalia (Adalia) Mulsant, 1846

Adalia (Adalia) bipunctata (Linnaeus, 1758)

Adalia (Adalia) decempunctata (Linnaeus, 1758)

Adalia (Adalia) fasciatopunctata Faldermann, 1835

• Género Anatis Mulsant, 1846

Anatis ocellata (Linnaeus, 1758)

• Género Anisocalvia Crotch, 1871

Anisocalvia quatuordecimguttata (Linnaeus, 1758)

Anisocalvia quindecimguttata (Fabricius, 1777)

• Género Bulaea Mulsant, 1850

Bulaea lichatschovi (Hummel, 1827)

• Género Calvia Mulsant, 1846

Subgénero Calvia (Calvia) Mulsant, 1846

Calvia (Calvia) decemguttata (Linnaeus, 1767)

• Género Chelonitis Weise, 1879

Chelonitis venusta Weise, 1879

• Género Coccinula Dobzhansky, 1925

Coccinula quatuordecimpustulata (Linnaeus, 1758)

Coccinula sinuatomarginata (Faldermann, 1837)

• Género Harmonia Mulsant, 1846

Harmonia quadripunctata (Pontoppidan, 1763)

• Género Metamyrrha Capra, 1945

Metamyrrha thurifera (Sicard, 1923)

• Género Myrrha Mulsant, 1846

Myrrha octodecimguttata (Linnaeus, 1758)

• Género Neomysia Casey, 1899

Neomysia oblongoguttata (Linnaeus, 1758)

• Género Oenopia Mulsant, 1850

Oenopia conglobata (Linnaeus, 1758)

    Subespecie Oenopia conglobata conglobata (Linnaeus, 1758)

Oenopia doublieri (Mulsant, 1846)

Oenopia lyncea (Olivier, 1808)

    SubespecieOenopia lyncea lyncea (Olivier, 1808)

• Género Propylea Mulsant, 1846

Propylea quatuordecimpunctata (Linnaeus, 1758)

• Género Sospita Mulsant, 1846

Sospita vigintiguttata

• Género Tytthaspis Crotch, 1874

SubgéneroTytthaspis (Tytthaspis) Crotch, 1874

Tytthaspis (Tytthaspis) phalerata (Costa, 1849)

Tytthaspis (Tytthaspis) sedecimpunctata (Linnaeus, 1758)

• Género Coccinella Linnaeus, 1758

Subgénero Coccinella (Coccinella) Linnaeus, 1758

Coccinella (Coccinella) hieroglyphica, (Linnaeus, 1758)

Coccinella (Coccinella) magnifica, Faldermann, 1837

Coccinella (Coccinella) quinquepunctata, Linnaeus, 1758

Coccinella (Coccinella) septempunctata, Linnaeus,1758

Subgénero Coccinella (Neococcinella) Savojskaja, 1969

Coccinella (Neococcinella) undecimpunctata

• Tribus Halyziini Mulsant, 1846

Género Halyzia Mulsant, 1846

Halyzia sedecimguttata (Linnaeus, 1758)

Género Thea Mulsant, 1846

Theavigintiduopunctata (Linnaeus, 1758)

Género Vibidia Mulsant, 1846

Vibidia duodecimguttata (Poda, 1761)

• Tribus Hippomiini Mulsant, 1846

Género Adonia Mulsant, 1846

Adonia variegata (Goeze, 1777)

Género Anisosticta Dejean, 1835

Anisosticta novemdecimpunctata (Linnaeus, 1758)

Género Aphideita Weise, 1893

Aphideita obliterata (Linnaeus, 1758)

Género Hippodamia Dejean, 1835

Subgénero Hippodamia (Hippodamia) Dejean, 1835

Hippodamia (Hippodamia) tredecimpunctata (Linnaeus, 1758)

Género Semiadalia Crotch, 1874

Semiadalia notata (Laicharting, 1781)

Semiadalia undecimnotata (Schneider, 1792)

Después de dicho esto, una nueva fotografía de la primera mariquita de 22 puntos que he visto esta primavera:



Thea vigintiduopunctata (Linnaeus, 1758)



Rhopalus rufus Schilling, 1829

Como he hablado bastantes veces de chinches, sabemos de sobra que dentro del Infraorden Pentatomomorpha tenemos las siguientes superfamilias:

• Superfamilia Aradoidea
• Superfamilia Coreoidea
• Superfamilia Lygaeoidea
• Superfamilia Pyrrhocoroidea
• Superfamilia Pentatomoidea

Hoy le toca a un especimen de la Superfamilia Coroidea.

La superfamilia Coreoidea la dividimos en:

• Familia Alydidae Dallas 1852
• Familia Coreidae Leach 1815
• Familia Hyocephalidae
• Familia Rhopalidae Amyot & Serville 1843
• Familia Stenocephalidae Dallas 1852

De todas ellas tenemos representantes en la península Ibérica excepto de Hyocephalinae

De la Familia Coreidae Leach 1815 hable cuando presenté a Coreus marginatus

Hoy hablaré de la Familia Rhopalidae Amyot & Serville 1843

Los Rhopalidae son los chinches más pequeños de la superfamilia Coreioidea, miden de 6 a 12 mm. Son fitófagos y comen principalmente semillas. Se dividen en dos subfamilias:

• Rhopalinae
• Serinethinae

Los Rhopalinae se dividen a su vez en varias tribus:

• Niethrini
• Rhopalini
• Harmostini
• Chorosomini
• Myrmini

En la península Ibérica solo tenemos representantes de las tribus Chorosomatini y Rhopalini

La tribu Rhopalini en la peninsula Ibérica tiene los siguientes géneros

Genero Brachycarenus

Genero Corizus

Genero Liorhyssus

Genero Maccevethus

Genero Rhopalus

Genero Stictopleurus

El género Rhopalus fue descrito por el entomólogo alemán Schilling en 18271 y se subdibide en los siguientes subgéneros y especies:

• Subgénero Rhopalus (Rhopalus) Schilling, 1827

Rhopalus conspersus (Fieber, 1837)

Rhopalus distinctus (Signoret, 1859)

Rhopalus lepidus Fieber, 1861

Rhopalus parumpunctatus Schilling, 1829

Rhopalus rufus Schilling, 1829

Rhopalus subrufus (Gmelin, 1790)

• Subgénero Rhopalus (Aeschyntelus) Stål, 18722
  
  

Sinónimos Rhopalus (Aeschynteles) Reuter, 1888. La especie tipo es Corizus maculatus Fieber

Rhopalus kerzhneri Göllner-Scheiding, 1984

Rhopalus latus (Jakovlev, 1883)

Rhopalus maculatus (Fieber, 1837)

Rhopalus nigricornis (Hsiao, 1965)

Rhopalus sapporensis (Matsumura, 1905)

Rhopalus tibetanus Liu & Zheng, 1989

En la península Ibérica del género Rhopalus del primer subgénero solamente tenemos a la especie Rhopalus (Aeschyntelus) maculatus, pero del segundo tenemos seis especies:

• Rhopalus (Rhopalus) conspersus
• Rhopalus (Rhopalus) distinctus
• Rhopalus (Rhopalus) lepidus
• Rhopalus (Rhopalus) parumpunctatus
• Rhopalus (Rhopalus) rufus
• Rhopalus (Rhopalus) subrufus

Rhopalus rufus Schilling, 1829

Especie de distribución paleártica occidental presente en toda España y Portugal según Moulet (1995), aunque citada de forma dispersa (Bolívar & Chicote, 1879; Oliveira, 1896; Seabra, 1925; Vázquez, 1985; Ribes et al., 2004). Antes de describirse en Galicia hubo citas previas de los distritos colindantes portugueses de Braga (Oliveira, 1896) y Viana do Castelo (Seabra, 1939b)

Como muchos de los insectos de los que hablo y muestro fotografía, esten lo observé en el muro de delante de casa (Tomeza, Pontevedra).

Hay que decir que una de las posibilidades para diferenciar algunos Rhopalus de otros es fijarse bien en el dorso del abdomen:

pero esto puede ser sumamente difícil sin una buena lupa o una muy buena fotografía de aproximación o en su caso un buen macro.



Tres fotografías nuevas de Mangora acalypha

Ya hablé de Mangora acalypha (Walckenaer, 1802) en una ocasión, no voy a decir hoy nada nuevo, así que el que quiera saber cosas de esta especie y su género bien puede consultar lo ya escrito. Ahora, simplemente voy a compartir tres imágenes de esta recién estrenada primavera.

Vista dorsal de Mangora acalypha

Vista lateral de Mangora acalypha 

Vista lateral de Mangora acalypha (un poco mas de aproximación)

 

Tychius schneideri

Volvamos de nuevo sobre los gorgojos.

Si hacemos memoria veremos que una las tribus que conté que están englobadas dentro de la Subfamilia Curculioninae, es la Tribus Tychiini Gistel, 1848.

Esta tribu se puede dividir a su vez en las siguientes subtribus:

• Subtribu Demimaeina
• Subtribu  Lignyodina
• Subtribu Ochyromerina
• Subtribu Tychiina

de las que solo se pueden encontrar especies representantes en la península Ibérica de Lignyodina o de Tychiina.

Dentro de esta última subtribu tenemos al género Tychius Germar, 1817 que engloba a unas 630 especies repartidas en dos subgéneros (Apeltarius y Tychius)

Se han descrito especies de gorgojos asignadas al género Tychius Gennar, 1817 en Norteamérica y Sudamérica, Europa, África, Asia y Australia. La mayoría delas especies se encuentran en la región mediterránea. Todas ellas infestan las vainas de las plantas leguminosas.

En la península Ibérica podemos encontrar las siguientes especies :

• Tychius (Tychius) argentatus
• Tychius (Tychius) aureolus
• Tychius (Tychius) aurichalceus
• Tychius (Tychius) bicolor
• Tychius (Tychius) breviusculus
• Tychius (Tychius) brisouti
• Tychius (Tychius) capucinus
• Tychius (Tychius) chevrolati
• Tychius (Tychius) cinnamomeus
• Tychius (Tychius) consputus
• Tychius (Tychius) cretaceus
• Tychius (Tychius) cuprifer
• Tychius (Tychius) cuprinus
• Tychius (Tychius) curvirostris
• Tychius (Tychius) cylindricollis
• Tychius (Tychius) decretus
• Tychius (Tychius) elegantulus
• Tychius (Tychius) farinosus
• Tychius (Tychius) funicularis
• Tychius (Tychius) fuscipes
• Tychius (Tychius) grandicollis
• Tychius (Tychius) grenieri
• Tychius (Tychius) hispanus
• Tychius (Tychius) hoffmanni
• Tychius (Tychius) immaculicollis
• Tychius (Tychius) junceus
• Tychius (Tychius) laticollis
• Tychius (Tychius) longicollis
• Tychius (Tychius) lopezi
• Tychius (Tychius) medicaginis
• Tychius (Tychius) meliloti
• Tychius (Tychius) minor
• Tychius (Tychius) oedemerus
• Tychius (Tychius) parallelus
• Tychius (Tychius) picirostris
• Tychius (Tychius) polylineatus
• Tychius (Tychius) pusillus
• Tychius (Tychius) pyrenaeus
• Tychius (Tychius) quinquepunctatus
• Tychius (Tychius) rufipennis
• Tychius (Tychius) rufipes
• Tychius (Tychius) similaris
• Tychius (Tychius) squamulatus
• Tychius (Tychius) stephensi
• Tychius (Tychius) striatulus
• Tychius (Tychius) tessellatus
• Tychius (Tychius) tibialis

Veamos imágenes de un especimen de una de ellas

Tychius schneideri (Herbst J.F.W., 1795)



Tychius schneideri

Plantas asociadas: Anthyllis vulneraria subsp. Alpestris. La larva se alimenta dentro de la vaina en las semillas en desarrollo lo que puede causar algo de irritación de las vainas. La pupación se hace en el suelo.

Tychius schneideri



Apareamiento de Tychus schneideri





Fracturas costales

Hoy me dejaron a un paciente varón de 77 años de edad que se había caido accidentalmente hacia 4 dias y se había pegado una buena costalada golpeando la parrilla costal izquierda. Vino a urgencias por dolor torácico y abdominal izquierdo.

Entre sus antecedentes médicos figuraban:

HTA

Dislipemia.

Cardiopatía isquémica. Stent sobre DA, Cx distal y primiera OM en 2006Portador de marcapasos DDDR por BAV de 2º grado Mobitz II en 2009.

Adenocarcinoma de próstata tratado con radioterapia en 2006.

Asma bronquial persistente. A seguimiento en Neumología-CHOP. PFR: normal

Herida con motosierra en mano izquierda en 2014.

Radiculopatia L5-S1 severa.

Se le hizo un estudio radiológico que mostró varias fracturas costales y un derrame pleural ipsilateral a las fracturas con una atelectasia del lóbulo inferior izquierdo pulmonar como complicaciones. Es de suponer que el derrame es un hemotórax.

Aprovecho el caso para hablar de los traumatismo torácicos y las fracturas costales y los estudios radiológicos de las mismas y sus posibles complicaciones. Después os mostraré las imágenes del caso.

Los traumatismos torácicos son una causa importante de morbimortalidad, siendo la mayoría de ellos cerrados, es decir, no hay una solución de continuidad en la pared del tórax a causa del traumatismo. Llegan a tener una mortalidad del 10% en muchos casos con el paciente ya ingresado en el Hospital.

Son variados los mecanismos por los que se puede producir un traumatismo torácico: contusión directa en la pared del tórax, fuerzas de desaceleración bruscas con cizallamiento o aumento de la presión dentro del tórax.

El traumatismo por contusión costal directa es uno de ellos y el que nos ocupa en el caso de hoy.

Las fracturas costales son la lesión esquelética mas frecuente tras un traumatismo torácico, estando presentes en un 35-45% de las ocasiones. Las fracturas costales simples no suelen tener mayor importancia pues el tratamiento se reduce a reposo y nalgesia, eso sí evitando toda aquella medida que pueda suponer una disminución de la mobilidad de la pared torácica y lleve al paciente a excursiones respiratorias breves que puedan complicar el caso con una atelectasia pulmonar. Precisamente por esto es por lo que es tan importante la buena analgesia y hay que avisar al paciente de que no se ponga una faja en el tórax, que aunque le ayude a controlar el dolor, es mas perjiudicial que beneficiosa.

Sin embargo, el número de fracturas costales es un buen indicador de la gravedad del traumatismo y predictor de complicaciones. Cuando se afectan mas de tres arcos costales consideramos ya el caso grave y especialmente grave si se presenta además con respiración paradójica.A partir de tres FC, las lesiones extratorácicas asociadas, la tasa de complicaciones y la mortalidad aumentan de manera significativa, por lo que se ha considerado este número como indicador

de ingreso.

Que arcos costales se encuentran fracturados, también es de importancia clinica, pues la fractura de los tres primeros arcos costales es indicativa de que el traumatismo fue de alta energía y con posibilidad de lesiones mediastínicas, neurológicas, vasculares y extratorácicas asociadas, ello obliga a descartar las lesiones vasculares o del plexo braquial como complicaciones. Si los fracturados son los tres ultimos costales, entonces hay que pensar en la posibilidad de lesiones esplénicas, hepáticas y/o renales.

Gracias a Dios, la mayoría de las fracturas costales en un traumatismo costal afectan a los arcos costales entre el 3º y el 9º.

Yo siempre digo que en el traumatismo costal lo primero que hay que recordar es la regla de las tres costilaas: tres o mas costillas rotas o las tres primeras o las tres ultimas costillas ¡Mucho ojo! la cosa ya puede ser mas sería de lo que parece.

Lo siguiente que hay que mirar cuando tienes tres o mas costillas rotas es si existe mobimiento respiratorio paradójico, pues si éste está presente nos está avisando de que estamos frente a un Vollet costal, algo que puede ser muy serio porque muchos de estos pacientes acaban precisando ventilación mecánica y desarrollan con mas frecuencia sindrme de distrés respiratorio del adulto (SDRA)

Otra cosa en la que hay que pensar rápidamente es en la posibilidad de otras lesiones óseas de la pared asociadas a las fracturas costales y que fundamentalmente van a depender del tipo de traumatismo torácico, por ejemplo las fracturas asociadas de esternón o de escápula o las fracturas vertebrales. Las fracturas esternales son típicas de los accidentes de tráfico en los que el paciente lleva puesto el cinturón de seguridad y pueden asociarse a hematoma retroesternal, neumotórax, neumomediastino o contusión miocárdica,. Las fractiuras escapulares las vemos también en impactos de alta energia y hasta un 43% de llas pasan desapercibidas en la radiografía simple estando ademadas asociadas a complicaciones graves como neumotórax, hemotórax o lesiones vertebrales hasta en un 40%

El primer estudio de imagen que ha de hacerse ante un traumatismo torácico cerrado en el que sospechemos fracturas costales simple es una Rx de tórax.

Aquí siempre recuerdo que hasta un 20% de las fracturas costales puede pasar desapercibidas en el estudio radiológico habitual con dos proyecciones, anteroposterior y lateral, por lo que se debe incluir una radiografía de parrilla costal o de las dos parrillas si consideramos que las fracturas pueden ser bilaterales. Aún así, con la parrilla costal se pnos pueden pasar por delante hasta un 2% de las fracturas costales no desplazadas.

De todas formas, la Rx de tórax aporta mucha mas información que la de la integridad o no de los arcos costales, pero no voy a hablar de ello porque en esta ocasión hablamos solamente de las fracturas costales.

La siguiente prueba de imagen es el TAC, utili cuando tenemos fractura de mas de tres arcos costales para despistar otras lesiones acompañantes a las fracturas costales y complicaciones. Ademas el TAC de tórax nos permite reconstrucciones tridimensionales en las que podemos objetivar muchísimo mejor las líneas de fracturas.

Ahora ha llegado ya el momento de que ponga las imágenes del caso clínico de la guardia de hoy.

Rx AP de tórax:

La imagen muestra un aumento de tamaño de la silueta cardiopericardica con un marcapasos con los cables íntegros y correctamente situados, derrame pleural izquierdo, atelectasia subsegmentaria del LII y se intuyen fracturas costales.

Rx lateral de tórax

La imagen lateral no añade mucha mas información que la de la localizazión de las lesiones en el hemitórax izquierdo y permitir ver mejor una aorta desenrrollada y en el espacio retrocardiaco con su derrame pleural. Muestra ademas una marcada cifosis por acuñamientos vertebrales de aspecto remoto.

Parrilla costal izquierda:

La parrilla costal muestra mas imágenes de fracturas costales y deja ya mas que en evidencia la necesidad del TAC torácico.

Reconstrucción 3D del TAC de tórax:

Reconstrucción tres D que objetiva mucho mejor las fracturas costales (*)