Leptinotarsa decemlineata (Say,1824): el escarabajo de la patata

Veamos a otro coleóptero polífago del Infraorden Cucujiformia

Como sabemos el infraorden Cucujiformia lo subdividimos en:

• Superfamilia Chrysomeloidea
• Superfamilia Cleroidea
• Superfamilia Cucujoide
• Superfamilia Curculionoidea
• Superfamilia Lymexyloidea
• Superfamilia Tenebrionoidea

La Superfamilia Chrysomeloidea la subdividimos a su vez en:

• Familia Oxypeltidae Lacordaire, 1868
• Familia Vesperidae Mulsant, 1839
• Familia Disteniidae Thomson, 1861
• Familia Cerambycidae Latreille, 1802
• Familia Megalopodidae Latreille, 1802
• Familia Orsodacnidae Thomson, 1859
• Familia Chrysomelidae Latreille, 1802

La familia Chrysomelidae es uno de los grupos con mayor riqueza específica dentro del orden Coleoptera, con más de 35,000 especies descritas a nivel mundial, principalmente de hábitos fitófagos. Muchos crisomélidos son de importancia económica, ya que se convierten en plagas de plantas cultivadas, mientras que otras especies pueden emplearse como controladores biológicos; en el ámbito ecológico, los crisomélidos forman un eslabón importante de las redes tróficas. Además, la gran riqueza específica en esta familia y su rol como grupo funcional fitófago, los convierten en un potencial indicador de la biodiversidad de una región, la calidad ambiental, y como un taxón para el control de cambios en áreas naturales. Esta Familia la clasificamos de la siguiente manera:

• Subfamilia Sagrinae Leach, 1815
• Subfamilia Bruchinae Latreille, 1802
• Subfamilia Donaciinae Kirby, 1837
• Subfamilia Criocerinae Latreille, 1804
• Subfamilia Chrysomelinae Latreille, 1802
• Subfamilia Galerucinae Latreille, 1802
• Subfamilia Lamprosomatinae Lacordaire, 1848
• Subfamilia Cryptocephalinae Gyllenhal, 1813
• Subfamilia Eumolpinae Hope, 1840
• Subfamilia Spilopyrinae Chapuis, 1874
• Subfamilia Synetinae LeConte and Horn, 1883
• Subfamilia Protoscelidinae† Medvedev, 1968

La Subfamilia Chrysomelinae está formada por individuos con una longitud total entre 3 y 22 mm. Coloraciones variadas que van de amarillo claro a negro incluyendo tonos metálicos. Forma alargada a convexa. Cabeza regularmente prognata, superficie punteada irregularmente en la mayoría; ojos débilmente emarginados; antenas clavadas o capitadas; inserción antenal ampliamente separada; clípeo ovalado, trapezoidal o triangular; labro rectangular; mandíbulas bidentadas, tridentadas y tetradentadas, de forma triangular o rectangular. Protórax usualmente ancho, en ocasiones convexo; prosterno plano, proyectado o hendido; proceso prosternal en algunos surcado, ápice de formas variadas; procoxas transversas, ampliamente separadas; escutelo triangular, semitriangular u ojival; élitros convexos cubriendo el abdomen, lisos o con puntuaciones distribuidos irregularmente, con bandas longitudinales o manchas; epipleura de grosor variado en la parte anterior. Uñas conadas, parcialmente divergentes o completamente divergentes. Abdomen de coloración variada, de amarillo claro a tonalidades negras o metálicas; la mayoría con puntos distribuidos irregularmente. Se asemejan a Eumolpinae, pero se distinguen por las coxas transversas, el lóbulo ventral del tarsomero iv generalmente entera o débilmente emarginado en el ápice, en los eumolpinos el lóbulo es bilobado (Arnett, 2000).

Distinguimos dentro de esta Subfamilia las siguientes tribus

• Tribu Chrysomelini
• Tribu Gonioctenini
• Tribu Phyllocharitini
• Tribu Timarchini

Dentro de la Tribu Chrysomelini englobamos los siguientes géneros:

• Género Cadiz Andrews & Gilbert, 1992
• Género Calligrapha Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Chrysolina Motschulsky, 1860
• Género Chrysomela Linnaeus, 1758
• Género Entomoscelis Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Gastrophysa Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Gonioctena Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Labidomera Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Leptinotarsa Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Microtheca Stål, 1860
• Género Paropsisterna
• Género Phaedon Megerle von Mühlfeld in Dahl, 1823
• Género Phratora Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Plagiodera Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Prasocuris Latreille, 1802

El género Leptinotarsa Chevrolat, 1836 se compone de individuos con una longitud entre 8 y 13 mm, de forma ovalada y convexa. Cabeza con antenas clavadas; clípeo trapezoidal; mandíbulas conadas, bidentadas; dientes redondos, con puntos distribuidos irregularmente, en las partes laterales externas; cara interna con puntos distribuidos irregularmente, superficiales. Pronoto rectangular, transverso, con los lados en el tercio apical, ángulo apical proyectado hacia delante, superficie con puntos distribuidos irregularmente, generalmente de color amarillo, verde o azul metálico. Escutelo ojival a triangular; superficie con escasos puntos distribuidos irregularmente. Élitros de 3-4.5 mm de ancho, convexos, generalmente de color amarillo claro, anaranjado, verde y azul metálicos, algunos con tonos crema claro u obscuro, superficie con puntuaciones en el margen de los diferentes patrones de manchas, generalmente de color azul metálico y negras. Epipleura más ancha en la parte anterior, de 7 a 8 veces más angosta que el ancho del élitro, margen interno más ancho que el externo. Prosterno plano, transversal, liso, punteado finamente, algunos con el margen posterior bilobado, glabro a pubescente. Proceso prosternal generalmente no surcado, ápice bilobado, punteado finamente; presencia de sedas largas en la cara interna, ápice recto, punteados finamente, presencia de escasas sedas, algunas especies con puntuaciones profundas, ápice redondo con sedas en el margen posterior. Uñas divergentes, generalmente de color marrón obscuro a rojizas.
Algunas de las especies de este género son:

• Leptinotarsa behrensi Harold, 1877
• Leptinotarsa collinsi Wilcox, 1972
• Leptinotarsa decemlineata Say, 1824
• Leptinotarsa defecta Stål, 1859
• Leptinotarsa haldemani Rogers, 1856
• Leptinotarsa heydeni
• Leptinotarsa juncta Germar, 1824
• ptinotarsa lineolata Stål, 1863
• Leptinotarsa peninsularis Horn, 1894
• Leptinotarsa rubiginosa Rogers, 1856
• Leptinotarsa texana
• Leptinotarsa tlascalana Stål, 1858
• Leptinotarsa tumamoca Tower, 1918
• Leptinotarsa typographica
• Leptinotarsa undecimlineata

Leptinotarsa decemlineata (Say,1824)

Sinónimos: Chrysomela decemlineata, Doryphora decemlineata, Polygramma decemlineata

La palabra Leptinotarsa deriva del griego “leptos” que significa, delgado y “tarsos” que significa planta del pie. Decemlineata deriva del latín “decem” que significa diez y “linea, ae” que significa, línea o raya.

Este escarabajo fue descrito en 1824 por Thomas Say a partir de especímenes recogidos en plantas de Solanum rostratum en las Montañas Rocosas (Colorado y México). En 1785 fue introducida en Francia, después se extendió con rapidez por toda Europa. En 1877, el escarabajo de la patata llegó a Alemania, pero fue erradicado. Se ha detectado en Austria (1941), Bélgica (1935), Bulgaria, Checoslovaquia, Francia, Alemania (1914), Hungría (1947), Italia, Polonia (1946), Portugal (1943), Rumania, ex-Unión Soviética (1949), España (1935), Suiza (1937) y ex-Yugoeslavia; localmente establecida en Grecia (1963), Luxemburgo (1936), Holanda (1937), Dinamarca, Finlandia, Gran Bretaña (1939), Noruega (1948), Suecia y el Reino Unido (en setiembre de 1976, se encontró una colonia en reproducción en el Reino Unido, la primera desde 1941-1952 en que fuera erradicado).

Durante la Segunda Guerra Mundial el régimen nazi alemán y los de varios estados satélites de la Unión Soviética usaron este insecto en sus campañas de propaganda, asegurando que estos escarabajos habían sido lanzados por aviones del ejército estadounidense. Después de la guerra también se acusaba a los estadounidenses cuando en 1950 la zona de Alemania ocupada por los rusos, casi la mitad de las plantaciones de patata fueron infectadas por este insecto. En la Unión Europea actualmente existen periodos de cuarentena para este insecto en el Reino Unido, Irlanda, Islas Baleares, Chipre, Malta y las zonas meridionales de Suecia y Finlandia.

En África se ha encontrado en Libia.

Este escarabajo fue un verdadero azote para los cultivos de patata (Solanum tuberosum)  y también berenjena (Solanum melongena), tomate (Lycopersicon esculentum), coles (Brassica oleracea), tabaco y belladona.

Los adultos miden unos de 10 x 6 mm, tiene un cuerpo robusto, ovalado, fuertemente convexo y endurecido. Se distingue fácilmente por su color pardo amarillento sobre el que destacan 5 bandas longitudinales negruzcas en cada élitro; tiene además una docena de pequeñas manchas negras en la parte superior de la cabeza y tórax y otras pardo oscuras o negras en los extremos de las patas.

El ciclo anual del escarabajo de la patata comienza en primavera o principios de verano, cuando emergen del suelo  de froma masiva y en 1-2 días, los escarabajos que pasaron el invierno enterrados en diapausia. El escarabajo realiza entonces un vuelo hasta su alimento. 

Tras la copulación la hembra pone entre 10 y 30 huevos en varias filas ordenadas en la superficie inferior de las hojas; son amarillos o anaranjados pálidos, ovalados, alargados, de 1.2 mm. La ovoposición dura hasta varias semanas, finalizando a mediados de verano (hay hembras muy prolíferas que pueden poner hasta 2000 huevos). Con temperaturas superiores a 12 ºC, los huevos eclosionan entre 4 y 12 días.

Las larvas tienen el abdomen grande y el cuerpo arqueado; sólo dejan de comer para mudar, cuatro veces en 2 o 3 semanas. El primer estadío tiene el abdomen rojo cereza, con las patas y la cabeza de color negro brillante; en el último ya toma un color rojo anaranjado y luego anaranjado pálido, con una línea de varios puntos pequeños negros a cada lado del cuerpo, marcando los espiráculos por donde respira. 

Las larvas originadas en el mismo grupo de huevos permanecen juntas en la misma hoja hasta la primera muda, para luego migrar a las yemas terminales de la planta; en el cuarto estadío, atacan peciolos y tallos, más duros que las hojas. Al madurar caen al suelo y excavan, según las condiciones, más o menos centímetros en el suelo. La pupación se realiza en celdas bien alineadas y tiene una duración de 10 a 20 días, tras los cuales emerge la primera generación de escarabajos.

En las zonas nórdicas de la región mediterránea, estos escarabajos se alimentan y luego se entierran unos 25 - 40 cm para hibernar. En áreas más cálidas, la primera generación de escarabajos comienza la oviposición, pero la fecundidad de las generaciones subsiguientes es menor que la de las primeras o la de los emergentes en primavera y, el número de huevos, también decrece abruptamente un 25 % por mes durante el verano. El número de generaciones está relacionado con la temperatura, variando en alrededor de 4 en las áreas más cálidas de su hábitat (el ciclo se completa en 30 días) y una generación completa y una parcial cerca de los extremos más fríos. Hay algunas áreas frías con sólo 1 generación parcial, donde el escarabajo no puede realmente establecerse en forma permanente.

En general, con clima soleado y una temperatura media diurna de 17-20º C se produce una dispersión masiva y desarrollo, pero si la temperatura no excede los 11 - 14º C y la humedad es alta, ésto no ocurre y la población puede realmente decrecer. El medio principal de dispersión del escarabajo en grandes áreas es el viento, particularmente de la generación de primavera.

Fue eliminado por la implantación masiva de tratamientos pesticidas, resultando hoy en día una curiosidad para los entomólogos.

Megischina rosinae

Vuelvo hoy de nuevo con otro coleóptero polifago del infraorden Cucujiformia y de la Superfamilia Tenebrionoidea.

Ya sabemos que los escarabajos pertenecientes a esta Superfamilia se distribuyen por todo mundo adelante y suelen tener cinco artejos en los tarsos anteriores y medios, y cuatro en los posteriores (fórmula tarsal 5-5-4).

La superfamilia Tenebrionoidea incluye las siguientes familias:

• Aderidae Winkler, 1927
• Anthicidae Latreille, 1819
• Archeocrypticidae Kaszab, 1964
• Boridae C. G. Thomson, 1859
• Chalcodryidae Watt, 1974
• Ciidae Leach, 1819
• Colydiidae Erichson, 1842
• Melandryidae Leach, 1815
• Meloidae Gyllenhal, 1810
• Monommatidae Blanchard, 1845
• Mordellidae Latreille, 1802
• Mycetophagidae Leach, 1815
• Mycteridae Blanchard, 1845
• Oedemeridae Latreille, 1810
• Perimylopidae St. George, 1939
• Prostomidae C. G. Thomson, 1859
• Pterogeniidae Crowson, 1953
• Pyrochroidae Latreille, 1807
• Pythidae Solier, 1834
• Ripiphoridae Gemminger and Harold, 1870
• Salpingidae Leach, 1815
• Scraptiidae Mulsant, 1856
• Stenotrachelidae C. G. Thomson, 1859
• Synchroidae Lacordaire, 1859
• Tenebrionidae Latreille, 1802
• Tetratomidae Billberg, 1820
• Trachelostenidae Lacordaire, 1859
• Trictenotomidae Blanchard, 1845
• Ulodidae Pascoe, 1869
• Zopheridae Solier, 1834

El escarabajo del que hablare hoy pertenece a la Familia  Tenebrionidae Latreille, 1802 que como conocemos se divide en las siguientes Subfamilias

• Subfamilia Lagriinae
• Subfamilia Phrenapatinae
• Subfamilia Zolodininae
• Subfamilia Pimeliinae
• Subfamilia Tenebrioninae
• Subfamilia Alleculinae
• Subfamilia Diaperinae
• Subfamilia Coelometopinae
• Subfamilia Cossyphodinae

La Subfamilia que nos concierne es la Subfamilia Alleculinae Laporte de Castelnau, 1840
Los escarabajos pertenecientes a esta Subfamilia se caracterizan por un cuerpo ovalado, antenas filiformes, patas relativamente largas y tarsos bastante alargados. Sin embargo, su característica más llamativa son los clavos peinados de los tarsos traseros, que muestran dientes finos.

De los 34 géneros que se conocen de esta Subfamilia en Europa tenemos:
 

• Tribu Alleculini Laporte de Castelnau 1840

    Genero Allecula Fabricius 1801
    Genero Hymenalia Mulsant 1856
    Genero Hymenorus Mulsant 1852
    Genero Prionychus Solier 1835

• Tribu Gonoderini Seidlitz 1896

    Genero Gonodera Mulsant 1856
    Genero Isomira Mulsant 1856
    Genero Pseudocistela Crotch 1873

• Tribu Mycetocharini Mulsant 1856

    Genero Gerandryus Rottenberg
    Genero Mycetochara Berthold 1827

• Tribu Omophlini Mulsant 1856

    Genero Cteniopus Solier 1835
    Genero Heliotaurus Mulsant 1856
    Genero Megischia Reitter
    Genero Megischina Solier
    Genero Omophlus Solier 1835
    Genero Podonta Mulsant 1856
    Genero Proctenius Reitter
    Genero Cteniopinus
    Genero Gastrhaema
    Genero Copistethus

En la Península ibérica tenemos 5 especies de tres géneros  de esta ultima tribu, muy difíciles de distinguir entre si, a saber

• Genero Megischia Solier, 1835

    Megischia curvipes (Brullé, 1832)

• Genero Megischina Reitter, 1906

    Megischina rosinae (Seidlitz, 1896)

• Genero Omophlus

    Subgénero Omophlus (Omophlus) Dejean, 1834

        Omophlus (Omophlus) lepturoides (Fabricius, 1787)

    Subgénero Omophlus (Paromophlus) Iablokoff-Khnzorian, 1983

        Omophlus (Paromophlus) picipes (Fabricius, 1792)
        Omophlus (Paromophlus) pubescens (Linnaeus, 1767)

Clave dicotomica para distinguir entre estas especies

(1) Pronoto y elitros  totalmente glabros. Intervalos de las estriaciones convexos y con una puntuación casi imperceptible; epilpleuras visibles casi hasta la cúspide de los elitros; patas anteriores completamente testaceas, tibias y tarsos posteriores y medios testaceos, antenas amarillentas hasta el quinto artejo; tamaño de 11-14 mm .................................... Megischina rosinae (Seidlitz)

(2) Pronoto con una fina vellosidad dorada o grisácea; elitros cubiertos de una fina pilosidad dorada. Intervalos de planos a subplanos, punteado fino pero muy visible; epipleuras con una retracción brusca a nivel de las coxas medias o poco después; todos los fémures de color negro,antenas completamente negras

    (2a) tamaño mediano de 11-14 mm ; proyección proesternal en forma de espolón, especialmente en los machos; tibias medias muy curvadas en el macho; patas completamente negras .....................................Megischia curvipes (Brullé)

    (2b) tamaño mas peque;o 9-11,5 mm; proyección proesternal en forma de punta roma; tibias intermedias sin curvatura en el macho tibias; todos los fémures de color negro y y tibias anteriores y medias de color amarillento...................Omophlus picipes (Fabricius)

El género Megischina Reitter, 1906 es similar en apariencia y morfología a género Omophlus Solier, 1835 del que se distingue por las epipleuras que son regulares y por el adelgazamiento progresivo del ápice de los elitros en contraste con el acortamiento abrupto a la altura de los primeros segmentos abdominales del genero Omophlus. Al igual que otros Omophlini, Megischina rosinae es diurna, fotófila y termo-xerófila, alimentándose de polen de gramíneas y flores de arbustos.

Probable Megischina rosinae (Seidlitz)

Eristalis jugorum

El género Eristalis Latreille, 1804, del que ya he hablado en varias ocasiones, está ampliamente distribuido en las regiones paleártica, neártica y oriental. 

• Kanervo (1938) distinguió varios grupos de especies basándose en la estructura de la terminalia masculina y otros caracteres morfológicos.

• Peck (1988) enumeró 46 especies de Eristalis en el Palaearctico, 22 de ellas como europeas. y Telford (1970) contó 25 para la región Neártica.

• Holinka (1999) revisó el grupo de especies de Eristalis rupium para las Repúblicas Checa y Eslovaca y dio una clave para las especies centroeuropeas.

• Hippa y colaboradores en 2001 hacen revisión completa de las especies de Eristalis paleárticas occidentales en la que discuten sobre la identidad de 20 especies y sus caracteres diagnósticos, mostrando que dos especies, E.stackelbergi Dolezil y Rozkosny y E.vitripennis Strobl, son sinónimos menores de otras especies europeas y reduciendo así el número de especies europeas a 20. También dan una nueva clave y establecen nuevos sinónimos y designan varios lectotipos y neotipos.

• La descripción de Eristalis tecta (Vujic et al, 2004) ha elevado posteriormente el total a 21.

Como ya he comentado en mas de una ocasión con anterioridad, en la Península ibérica podemos encontrarnos unicamente con 11 especies de Eristalis, pero eso no hace que sea fácil a los aficionados Naturalistas determinar la especie de un individuo del genero Eristalis, y mucho menos simplemente viendo fotografiás.

Aunque no lo exprese cada vez que escribo sobre una especie de Insecto y muestre fotografiás, la clasificación que hago es siempre una aproximación, pues me baso unicamente en el análisis de las fotografiás y nunca dispongo del ejemplar para analizarlo y mucho menos disecarlo. En ocasiones he cometido grandes errores de clasificación que otros aficionados me han ayudado a corregir. Otras veces me he dado cuenta yo mismo del error, al ir cada vez analizando mas especies. Así, poco a poco, uno va aprendiendo e incluso haciéndose sus tablas dicotómicas de andar por casa para ayudarse en el análisis de las fotografías.

Precisamente eso es lo que os muestro hoy, una tabla dicotómica de andar por casa con la que pretendo ayudarme cada vez que fotografío una especie del genero EristalisTabla  dicotómica para las especies del Género Eristalis de la Península ibérica


1a. Ojos con dos bandas bien diferenciadas de pelos..……………….....… E. Tenax
1b. Ojos con menos de dos bandas de pelo.......…………………………….................2

2a.  Tórax y tergitos abdominales 3-4 (machos) o 4 (hembras) densamente cubiertos de pelo grueso que es casi tan largo como la longitud media del escutelo (simula un abejorro). Machos con abdomen completamente marrón. Hembras con el último tergito con pelos blancos.............................E. intricarius
2b. Tórax y tergitos abdominales con pelos cortos o sin pelo.…….…….…............3

3a. Rostro sin ninguna banda vertical negra (o esta es muy clara y estrecha en los individuos de mayor edad). Arista plumosa.....………………..…. E.arbustorum
3b.  Rostro con banda vertical negra bien definida...……………………….......…....4

4a.  Cabeza alargada hacia abajo y adelante y rostro con amplia linea facial negra....……………..................................................................................................5
4b.  Cabeza no alargada hacia abajo y adelante y linea facial negra mas fina.....…………….........................................................................................…….....6

5a.  Tercer fémur negro en su base. Franja posterolateral de pelos (generalmente negro en los machos, pero a veces parcialmente, o predominantemente amarillento en las hembras) en el fémur delantero notablemente más densa que la franja posterolateral en el fémur posterior. Tarsómeros 4 + 5 de todas las patas de pelo pálido dorsalmente. ..………………………………...........................................................……....E. jugorum
5b. Base del tercer fémur pálida. Tarsómeros 4 + 5 pueden ser predominantemente de pelo claro o predominantemente de pelo negro, dorsalmente....……………....................................……………………..…. E. horticola

6a. Tercer fémur engrosado, más del doble de grueso que el primer y segundo fémur en dos tercios de su longitud. Tercer metatarso pálido…….…... E. alpinus
6b. Tercer fémur no engrosado.....................................…………………………….....7

7a. Tercera tibia completamente naranja..…………………......……... E. cryptarum
7b.  Tercera tibia negra.....……………………………………….............................…....8

8a. Todos los tarsos de las patas delanteras y medias completamente amarillas/anaranjadas……………………………...........................…..……E. pertinax
8b. Tarsos oscuros.……………………………………………….............................…......9

9a.  Alas hialinas con un pterostigma cuadrado (incluidas las venas circundantes que son más cortas que anchas).....…………............. E. interruptus
9b. Pteroestigma del ala mas largo que ancho..……………….....................…......10

10a. Pterostigma 2-3 veces más largo que ancho (medido con las venas limítrofes); subcostal a menudo parduzca-negruzca en la mitad superior.................................................................................................. E. rupium
10b.  Pterostigma 4-6 veces más largo que ancho, amarillo (hembras) o gris claro (machos) con borde oscuro....………………………………….............. E. similis


Otras características, ademas de las utilizadas en la tabla dicotomica, que pueden ser útiles para diferenciar estas especies entre si sin llegar a analizar los genitales son las siguientes

• Eristalis tenax. El tercer artejo de la antena es de color marrón oscuro o negro. El segundo tergito tiene marcas laterales amarillas, anaranjadas o rojizas. No posee pelos en los lados. Todos los tarsos son de color negro. 

• Eristalis arbustorum.  Alas hialinas y que presentan la arista plumosa, al menos en la mitad basal. Fémures de las patas de color negro, mientras que la base de las tibias es rojiza. Segunda tibia con el cuarto superior de color negro. 

• Eristalis jugorum.  Pterostigma negro, cuadrado; ala con marcas negras débiles.

• Eristalis horticola. Márgenes posteriores de los tergitos amarillos ligeramente anaranjados, menos que jugorum pero más que otros eristalis. Segundo tergito abdominal completamente opaco; tercer y cuarto tergitos con pelo claro o con un pequeño parche de pelos negros en el margen posterior. Pteroestigma ligeramente más largo que profundo y ala con marcas oscuras.

• Eristalis alpinus. Parte posterior del tórax con la mitad frontal fuertemente (hembras) o algo (machos) pruinosa, creando un contraste con la mitad posterior. Hembra: marca cuadrada oscura en el ala; abdomen oscuro, a lo sumo segundo tergito con marca amarilla, tergitos opacos solo en la parte posterior. Macho: ala casi hialina.

• Eristalis cryptarum.  tercer segmento de las antenas pálido. El rostro, bajo los ojos con pelo negro o blanco y negro. pleura torácica y coxas de todas las patas casi completamente negras, con abundantes pelos negros y algunos pelos pálidos. Arista del ala desnuda.

• Eristalis pertinax. Ala con una banda oscurecida difusamente en la parte media. Machos con el abdomen triangular.

• Eristalis interruptus. Rostro con pruinosidad densa, franja negra bien marcada y relativamente estrecha. Arista plumosa mitad basal. El cuerpo es de pelo amarillo. Los pelos del cuerpo son cortos. El fémur es negro en el macho. Los metatarsos traseros están oscurecidos. Todos los tarsos son extensamente negros. 

• Eristalis intricarius. El tórax y el abdomen están cubiertos de pelos largos; tergitos abdominales 3-4 (machos) o 4 (hembras) densamente cubiertos de pelo grueso que es casi tan largo como la longitud media del escutelo (simula un abejorro). Squamulae de color gris-negro. Callo postalar con pelos negros. Machos con abdomen completamente marrón. Hembras con el último tergito con pelos blancos.

• Eristalis rupium. Tórax con denso pelaje anaranjado-rojizo.  Tergitos tercero y cuarto completamente brillantes, con pelos erectos negros; el resto de su superficie negro mate; tergito 2 intensamente brillante en toda su superficie.

• Eristalis similis. Macho con el abdomen cuadrado y bastante oscuro. Las hembras se parecen mucho a E. pertinax.

En esta ocasión intente utilizar esta tabla para aproximarme a la especie Eristalis jugorum, aunque ya sabéis que no es difícil que me confunda.

Eristalis jugorum Egger, 1858

Eristalis jugorum hembra

Esta especie se extiende desde Polonia al sur de los Pirineos y el norte de España; desde Bélgica (Ardennes) hacia el este a través de el sur de Europa (norte de Italia, la antigua Yugoslavia, Grecia) en partes europeas de Rusia y hasta el Cáucaso, Turquía e Irán.

Su ambiente preferido son las corrientes de agua dulce / bosque; arroyos dentro del bosque Fagus / Picea, por lo que es frecuente encontrarla al lado de arroyos, senderos y claros cerca del agua; usualmente vuela a 3 m del suelo; los machos con frecuencia patrullan los rodales de las plantas en flor junto al agua. Flores visitadas: umbelíferas blancas; Chrysanthemum leucanthemum, Knautia, Polygonum, Rubus idaeus, Scabiosa, Sorbus aucuparia, Succisa.

Período de vuelo: mayo / julio (y agosto a altitudes más altas). 

Eristalis jugorum hembra

Los machos de E.jugorum pueden distinguirse de los de todas las especies relacionadas por la franja extremadamente densa de pelos gruesos (por lo general completamente negros) que cubren por completo la superficie posterolateral de la fémur anterior. Esta franja es notablemente más gruesa que la franja en la superficie dorsal de la fémur posterior. En las otras especies, estas dos franjas de pelo son de densidad equivalente y los pelos son de grosor normal. Además, en estas otras especies (excepto E.rupium), la franja de la superficie posterolateral del fémur delantero rara vez es predominantemente de color negro. 

Eristalis jugorum hembra

La hembra de E.jugorum se puede distinguir por el hecho de que la parte inferior de su cara se prolonga en una extensión inusual, de modo que, en vista lateral, la línea más corta entre el ojo y el medio del borde superior de la boca es más corta que la línea más corta entre el ojo y la punta anterior del borde lateral de la boca. En las hembras de especies relacionadas, estas dos líneas tienen la misma longitud, o entre el ojo y el medio del borde de la boca superior es la más larga.

Eristalis jugorum hembra

Eristalis arbustorum

La primera vez que hablé de los sírfidos comenté que había tres Subfamilias 

Eristalinae
Syrphinae
Microdontinae.

y de la Subfamilia Syrphinae comenté cosas de los Géneros Syrphus, episyrphus y Scaeva y mostré representantes de cada uno de ellos. 

 

De la Subfamilia Eristalinae hablé del Género Eristalis (Lineo 1758) y presenté a Eristalis Tenax. Pero en la Península ibérica hay representantes de muchos mas géneros de esta Subfamilia, en concreto:

• Género Arctophila
• Género Blera
• Género Brachyopa
• Género Brachypalpoides
• Género Brachypalpus
• Género Caliprobola
• Género Callicera
• Género Ceriana
• Género Chalcosyrphus
• Género Chamaesyrphus
• Género Cheilosia
• Género Chrysogaster
• Género Criorhina
• Género Eristalinus
• Género Eristalis
• Género Eumerus
• Género Ferdinandea
• Género Helophilus
• Género Lejogaster
• Género Mallota
• Género Melanogaster
• Género Merodon
• Género Milesia
• Género Myathropa
• Género Myolepta
• Género Neoascia
• Género Orthonevra
• Género Parhelophilus
• Género Pelecocera
• Género Platynochaetus
• Género Portevinia
• Género Psilota
• Género Rhingia
• Género Riponnensia
• Género Sericomyia
• Género Sphegina
• Género Sphiximorpha
• Género Spilomyia
• Género Syritta
• Género Temnostoma
• Género Tropidia
• Género Volucella
• Género Xylota

 

Mas tarde, en otro texto hablé del Género Eristalis y Eristalis tenax de nuevo y presenté claves dicotómicas para las especies de Eristalis Europeas; comenté además que en el campo son fácilmente confundibles:

1) E. arbustorum y E. abusivus,
2) E. horticola y E. jugorum
3) Eristalis picea, E. rupium, E. pseudorupium, E. alpina y E. interrupta.

Eristalis picea, E. rupium y E. pseudorupium se diferencian del resto de Eristalis por una combinación de:

1. Un fino polvo blanco en la cara, con una ancha franja central facial negra ( como algunos E. pertinax, pero estos tienen su tarsi frontal amarillo);

2. Tercer segmento antenal a menudo rojizo (como algunos E. nemorum, pero esta especie tiene 2 alas claras y un pequeño pterostigma).

3. Ala generalmente con manchas oscuras (como E. horticola, pero esta especie tiene un segmento abdominal 2 opaco y una raya facial negra pequeña). Una excepción es E. vitripennis y algunas especies de E. picea que tienen alas claras.

E. picea tiene un tercer metatarso oscuro en los Países Bajos, como lo demuestran Zeegers en Van Veen (1992) y Van Veen en Zeegers (1998). Esto es una excepción a todas las claves dicotómicas que hay publicadas.

En la Península ibérica podemos encontrarnos las siguientes 11 especies del género Eristalis Latreille, 1804

• Eristalis alpinus
• Eristalis arbustorum
• Eristalis cryptarum
• Eristalis horticola
• Eristalis interruptus
• Eristalis intricarius
• Eristalis jugorum
• Eristalis pertinax
• Eristalis rupium
• Eristalis similis
• Eristalis tenax

Por lo que confundir E. arbustorúm con  E. abusivos o E. brousii no es posible en España.

Eristalis arbustorum (Linnaeus, 1758)
 

Como sabemos ya la palabra Eristalis deriva del latín "eristalis" que es una piedra preciosa desconocida. La palabra arbustorum deriva del latín "arbustus, -a, -um" que significa de los arbustos.

Esta es una especie florícola de distribución holártica que se distribuye por amplias zonas templadas de Eurasia y el norte del subcontinente indio, y también en América del norte.

Su cuerpo mide 7-10 mm. Presentan los fémures de las patas de color negro, mientras que la base de las tibias es rojiza. El rostro no presenta ninguna banda vertical o ésta es muy clara y estrecha en los individuos de mayor edad. Las antenas presenta pelos largos en la arista (arista plumosa que no posee E. Abusiva). Las alas miden entre 7 y 10 milímetros de longitud y presentan la arista plumosa, al menos en la mitad basal. El patrón de color del abdomen varía en función de la temperatura ambiente en que se desarrollan las larvas, de manera que cuando la temperatura es más baja, los parches amarillos son más pequeños que cuando la temperatura es mayor. Esta diferencia es más acusada en los machos que en las hembras.

Existen otras especies de Eristalis de aspecto muy parecido, de las que E. arbustorum puede diferenciarse por tener la cara completamente blanca, sin una banda oscura vertical o con una banda muy estrecha en los ejemplares viejos.

Tanto Eristalis arbustorum como Eristalis brousii tienen pelos en la cara pero pueden diferenciarse por lo siguiente:

Eristalis arbustorum se alimenta de néctar y polen de diversas plantas: branco (Heracleum sphondylium), cardo blanco (Cirsium arvense), escoba negra (Centaurea jacea) y senecio (Senecio nemorensis), entre otras muchas. 

 

La larva es acuática y vive en aguas estancadas y en montones de compost.

Ischnodemus sabuleti (Fallén, 1826)

He hablado en varias ocasiones de los heterópteros y su gran diversidad biológica. Recordemos que estos insectos están adaptados a una gran cantidad de hábitats dentro de los climas templados del planeta y que viven mayoritariamente sobre el medio terrestre, sea sobre el suelo o sobre las plantas, aunque también he mostrado ejemplos de heterópteros acuáticos. Constituyen uno de los grupos de insectos más comunes en la región paleártica, aunque se estima que sólo hay 1800 especies ibéricas.

Se reconocen hasta cinco infraórdenes actualmente aceptados dentro de los Heterópteros:

• Cimicomorpha
• Dipsocoromorpha
• Leptopodomorpha
• Nepomorpha
• Pentatomomorpha

Sólo el infraorden Nepomorpha engloba especies ligadas a ambientes acuáticos, siempre dulciacuícolas y de alimentación carnívora, como es el caso de Hydrometra stagnorum (Linnaeus, 1758)

Dentro del  Infraorden Pentatomomorpha tenemos las siguientes superfamilias:

• Superfamilia Aradoidea
• Superfamilia Coreoidea
• Superfamilia Lygaeoidea
• Superfamilia Pyrrhocoroidea
• Superfamilia Pentatomoidea

La Superfamilia Lygaeoidea (Schilling, 1829) como ya sabemos, comprende las siguientes familias:

• Familia Artheneidae
• Familia Berytidae
• Familia Blissidae
• Familia Colobathristidae
• Familia Cryptorhamphidae
• Familia Cymidae
• Familia Geocoridae
• Familia Henicocoridae
• Familia Heterogastridae
• Familia Idiostolidae
• Familia Lygaeidae
• Familia Malcidae
• Familia Ninidae
• Familia Oxycarenidae
• Familia Pachygronthidae
• Familia Piesmatidae
• Familia Rhyparochromidae

Encontrándose en la Península ibérica solamente representantes de las remarcadas en negrita.


Familia Blissidae Stal, 1865

Esta familia comprende casi 50 géneros y 400 especies. El grupo a menudo ha sido tratado como una subfamilia de los Lygaeidae, pero fue clasificado como una familia completa por Thomas Henry (1997).

La familia es cosmopolita, con una mayor difusión en las regiones tropicales, pero las especies únicas o los géneros individuales tienen distribuciones circunscritas y múltiples endemismos ocurren, particularmente en las regiones tropicales del continente americano. La familia está completamente ausente en Nueva Zelanda.

La familia es morfológicamente heterogénea, con tamaños y formas variables según el grupo sistemático, aunque los insectos adultos de esta familia se caracterizan por ser alargados, típicamente 4 veces más largos que anchos y en algunas especies hasta 6 o incluso 7 veces. La cabeza es más estrecha que el margen posterior del pronoto y está provista de ocelos. Las antenas y el rostrum se componen de 4 segmentos. Los élitros pueden tener diferente desarrollo, estando a veces bien desarrollados y en otras ocasiones cubriendo el abdomen solo parcialmente, siendo las formas de alas cortas comunes en muchas especies.  Las patas muestran fémures ligeramente dilatados, especialmente el par frontal. En el género Ischnodemus, los fémures anteriores están fuertemente dilatados y provistos de apófisis espinosas. El abdomen lleva los estigmas en la posición dorsal, a excepción de los del VII urito, que se encuentran en posición ventral.

Todas las especies se alimentan de la savia (en lugar de las semillas) de las plantas (principalmente con Monocotiledóneas) y pastos, viviendo la mayoría de las especies entre las vainas de las hojas.  Algunas especies se comportan como plagas contra las gramíneas y en particular, los cereales, el forraje y el césped.

Esta familia se divide en dos subfamilias:

• Subfamilia Blissinae
• Subfamlia Slaterellinae

La Subfamilia Blissinae engloba los siguientes Géneros

• Blissus Burmeister, 1835
• Dimorphopterus Stål, 1872
• Ischnodemus Fieber, 1837

De la Subfamilia Blissinae Stål, 1862 en la Península ibérica tenemos solamente dos géneros con las siguientes especies:

• Género Dimorphopterus Stål, 1872

    Dimorphopterus brachypterus (Rambur, 1839)

• Género Ischnodemus Fieber, 1837

    Ischnodemus genei (Spinola, 1837)
    Ischnodemus quadratus Fieber, 1837
    Ischnodemus sabuleti (Fallén, 1826)


Ischnodemus sabuleti (Fallén, 1826)

También conocido con el sinónimo Pachymerus decurtatus Herrich-Schaeffer, 1837

La especie es común en la mayoría de Europa continental y está ausente solo del extremo norte. Aparece también en el oeste de África del Norte y más al este a través de Europa del Este allega a Siberia y el Cáucaso. Se encuentra ampliamente en Alemania y en muchos lugares es muy numeroso. En el sur, es menos común que en el norte. En Austria, ocurre solo en Oriente. En las Islas Británicas, su historia ha sido de expansión gradual durante muchas décadas. Antes de 1893 solo se conocía de un sitio en Surrey; en 1959 había llegado a Hampshire, Oxfordshire y Essex; la propagación ha continuado desde entonces y en 2014 se estaba informando hasta Yorkshire al norte y al oeste a partes de Somerset.

Ischnodemus sabuleti a menudo se encuentra en las áreas costeras en el pasto marino (Ammophila y Elymus) y otras hierbas de dunas; también en los humedales interiores donde a menudo se encuentran formando enjambres de miles de individuos, especialmente en pastos de  Glyceria y menos comúnmente en Phalaris, Phragmites o espadañas (Typha). Ocasionalmente, se los encuentra en verano en lugares secos, donde viven, por ejemplo, en cañaverales (Calamagrostis). En tiempos de lluvia, las ninfas y los adultos se refugian en la parte inferior de las vainas de las hojas, desde donde los adultos trepan más arriba en los tallos cuando hace buen tiempo. 

Ischnodemus sabuleti (Fallén, 1826) imágo macróptero

Los insectos adultos son de 4-6 mm de largo y de forma elíptica en general, con un color de base negro. El borde posterior del pronoto, las partes del hemelytra, la tibia, el tarso, y las puntas del fémur, son de color amarillo pardo. Existe dimorfismo puesto que algunos individuos son macropteros (completamente alados) y otros micropteros (alas muy pequeñas). 

Se estima que los dos tipos son aproximadamente igualmente numerosos. Ocasionalmente podemos ver una forma con alas de longitud intermedia. Las ninfas son de una forma similar con la parte posterior del abdomen escarlata.

Los insectos requieren dos años para su desarrollo. A finales de otoño, las ninfas alcanzan la tercera a la quinta etapa y luego hibernan. Desde aproximadamente julio del próximo año, las ninfas completan su desarrollo hasta adultos. Los adultos están activos incluso a temperaturas bastante bajas en el invierno.

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

Hoy voy a hablar de un coleóptero polífago del Infraorden Cucujiformia y perteneciente a la Superfamilia Cleroidea Latreille, 1802

Los cleroideos son una superfamilia de coleópteros que se caracterizan por tener élitros blandos, que recubren completamente el abdomen y a menudo vistosos colores. Poseen 5 segmentos en los tarsos de cada patas, aunque el cuarto algunas veces está cubierto por el tercero. Son unas 10.000 especies distribuidas en 11 familias:

• Familia Phloiophilidae Kiesenwetter, 1863

• Familia Trogossitidae Latreille, 1802

            Subfamilia Peltinae Latreille, 1806
           Subfamilia Trogossitinae Latreille, 1802

• Familia Chaetosomatidae Crowson, 1952

• Familia Metaxinidae Kolibáč, 2004

• Familia Thanerocleridae Chapin, 1924

            Subfamilia Zenodosinae Kolibáč, 1992
            Subfamilia Thaneroclerinae Chapin, 1924

• Familia Cleridae Latreille, 1802

            Subfamilia Tillinae Fischer von Waldheim, 1813
            Subfamilia Hydnocerinae Spinola, 1844
            Subfamilia Clerinae Latreille, 1802
            Subfamilia Korynetinae Laporte, 1836

• Familia Acanthocnemidae Crowson, 1964

• Familia Phycosecidae Crowson, 1952

• Familia Prionoceridae Lacordaire, 1857

• Familia Mauroniscidae Majer, 1995

• Familia Melyridae Leach, 1815

            Subfamilia Rhadalinae LeConte, 1861
            Subfamilia Melyrinae Leach, 1815
            Subfamilia Dasytinae Laporte, 1840
            Subfamilia Malachiinae Fleming, 1821

pero en la Península ibérica solo tenemos representantes de las siguientes:

• Familia Acanthocnemidae

• Familia Biphyllidae

• Familia Byturidae

• Familia Cleridae

• Familia Melyridae

• Familia Prionoceridae

• Familia Trogossitidae

Los escarabajos de la Familia Melyridae Leach, 1815 son de cuerpo blando, alargados y ovalados y de unos 10 mm de largo o menos. Muchos tienen colores brillantes marrón o rojo y negro. Algunos melíridos (Malachiinae) tienen estructuras peculiares en forma de saco de color naranja a lo largo de los lados del pronoto y del abdomen, que pueden evaginarse. Algunos melíridos tienen los dos antenómeros basales muy agrandados. La mayoría de los adultos y las larvas son depredadores, y muchos son comunes en las flores.


Esta familia contiene en Europa 16 géneros clasificados de la siguiente manera según ITIS (1 septiembre 2014):

• Género Carphuroides
• Género Endeodes
• Subfamilia Amalthocinae Majer, 2002
• Subfamilia Dasytinae Laporte, 1840
• Subfamilia Gietellinae Constantin & Menier, 1987
• Subfamilia Malachiinae Fleming, 1821
• Subfamilia Melyrinae Leach, 1815
• Subfamilia Pagurodactylinae Constantin, 2001
• Subfamilia Rhadalinae LeConte, 1861

en la Península ibérica tenemos los siguientes géneros y Subfamilias:

• Género Anthodromius
• Subfamilia Chaetomalachinae
• Subfamilia Danaceinae
• Subfamilia Dasytinae
• Género Falsomelyris
• Subfamilia Malachiinae
• Género Melyris
• Subfamilia Rhadalinae

En Europa abundan las especies de los géneros Malachius, Dasytes y Psilothrix.
De Malachius ya presenté a Malachius lusitánicus. Hoy hablaré de un escarabajo perteneciente a la Subfamilia Dasytinae Laporte, 1840 la cual se divide las siguientes tribus y géneros:

• Tribu Chaetomalachiini Majer, 1987

Género Chaetomalachius Kraatz, 1882
Género Dasytidius Schilsky, 1896
Género Dasytiscus Kiesenwetter, 1859
Género Haplothrix Schilsky, 1896

• Tribu Danaceini Thomson, 1859

Género Amauronia Westwood, 1839
Género Danacea Laporte de Castelnau, 1836
Género Hylodanacaea Pic, 1926
Género Mauroania Majer, 1997
Género Pseudamauronia Pic, 1915

• Tribu Dasytini Laporte de Castelnau, 1840

Género Allotarsus Graells, 1858
Género Amecocerus Solier, 1849
Género Dasysoma Schilsky, 1896
Género Dasytes Paykull, 1799
Género Divales Laporte de Castelnau, 1836
Género Dolichophron Kiesenwetter, 1867
Género Dolichosoma Stephens, 1830
Género Enicopus Stephens, 1830
Género Graellsinus Escalera, 1927
Género Listrocerus Majer, 1998
Género Psilothrix Küster, 1850
Género Trochantodon Escalera, 1927

• Tribu Gietellini Constantin & Menier, 1987

Género Gietella faialensis Menier & Constantin, 1988
Género Gietella fortunata Constantin & Menier, 1987

• Tribu Listrini Majer, 1990

Género Adasytes
Género Asydates
Género Byturosomus
Género Calosotis
Género Cradytes
Género Danacaeina
Género Emmenotarsus
Género Eudasytes
Género Eutrichilistra
Género Eutrichopleurus
Género Holomallus
Género Listrimorpha
Género Listromimus
Género Listropsis
Género Listrus
Género Neadasytes
Género Parasytes
Género Picolistrus
Género Pristoscelis
Género Pseudasydates
Género Sinolistrus
Género Sydates
Género Sydatopsis
Género Trichochronellus
Género Trichochrous

• Tribu Rhadalini LeConte, 1861

Género Anthriboclerus Schenkling, 1922
Género Antinea Peyerimhoff, 1929
Género Aploceble Majer, 1998
Género Aplocnemus Stephens, 1830
Género Género Dasyrhadus Fall, 1910
Género Eucymbolus Champion, 1913
Género Flavojulistus Majer, 1990
Género Hemipleurus Peacock, 1987
Género Indiodasytes Pic, 1916
Género Jelinekius Majer, 1990
Género Kubanius Majer, 1983
Género Malthacodes Waterhouse, 1876
Género Microcymbolus Pic, 1951
Género Microjulistus Reitter, 1889
Género Pelecophora Dejean, 1821
Género Rhadalus LeConte, 1852
Género Semijulistus Schilsky, 1894
Género Trichoceble C.G. Thomson, 1859

Del Género Psilothrix Psilothrix Küster, 1850 perteneciente a la Tribu Dasytini Laporte de Castelnau, 1840 podemos encontrar la siguientes especies en la Península ibérica:

• Psilothrix aureola
• Psilothrix constantini
• Psilothrix illustris
• Psilothrix viridicoerulea

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

La palabra Psilothrix deriva del griego "psilos, -e, -on" que significa calvo, liso + "thrix, -ikos" que significa pelo. Viridicaeruleus deriva del latín "iridis, -e" que significa verde + "aeruleus, -a, -um" que significa azulado.

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

Esta especie es de distribució Paleártica por Europa suroccidental, principalmente en Bélgica, Holanda, Dinamarca, Italia, España, Portugal y Grecia, así como en el norte de África y este de Turquía.

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

Habita en prados floridos, márgenes de cultivos, suelos abiertos y secos, bordes de caminos, terrenos incultos, pastos, matorrales; en definitiva, donde haya flores, mostrando una cierta predilección por las de color amarillo, como Hieracium umbellatum, de las que consume su polen. 

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

  Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

Los adultos crecen hasta 5-9 milímetros (0.20-0.35 pulgadas) de largo, de cuerpo alargado y aspecto esbelto, con un color verde metalizado con brillos azulados inconfundible. En sus élitros no se observan estrías, pero aparecen microperforaciones, al igual que su pronoto. El resto del abdomen, cabeza y patas están cubiertos de una pilosidad o pubescencia oscura, hirsuta y corta. El tarso tiene cinco articulaciones. Sus ojos compuestos son relativamente grandes y redondeados, con antenas cortas y finamente dentadas. Su cara es aplanada, sobresaliendo su aparato masticador en forma característica como "de morro".

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

Su desarrollo larvario es relativamente desconocido (son xilófagos en varias especies). Se alimentan básicamente de polen y néctar, aunque esporádicamente pueden capturar insectos diminutos que encuentran en sus visitas florales. Aparecen con las primeras flores (marzo-abril) y podemos observarlos hasta bien entrado el verano. 

Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

 Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

 Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

 Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785)

Pholcus opilionoides

Hacie tiempo hablé de los fólcidos (Familia Pholcidae) y en concreto de la especie Pholcus Phalangioides. Ahora presentaré otra especie de la misma familia y muy parecida, por lo que:

Filo Arthropoda
Subfilo Chelicerata
Clase Arachnida
Orden Araneae
Suborden Araneomorphae
Superfamilia Pholcoidea C.L. Koch, 1850

La Superfamilia Pholcoidea comprende a tres familias: Diguetidae, Pholcidae y Plectreuridae. Las dos primeras familias están formadas por arañas con seis ojos. Las arañas de la tercera tienen ocho.

Si recordamos, los fólcidos (Familia Pholcidae) son arañas de patas largas que construyen telas enmarañadas dentro de los edificios y también al aire libre, sobre todo en la zona mediterránea.  A menudo se confunden con opiliones, aunque se distinguen claramente de estos por su cuerpo dividido en dos secciones (el cuerpo de los opiliones forma una unidad compacta, a menudo en forma de huevo).

En el norte de Europa esta familia está representada por tres especies pertenecientes a dos géneros. Estas tres especies pueden identificarse por su tamaño y los géneros por la forma y el color del abdomen. Éste es largo, tubular y gris en Pholcus y globular y azulado en Psilochorus. El caparazón es subcircular con los ojos formando un grupo compacto cerca del margen anterior. Los ojos se disponen como sigue:  un par en el centro y a cada lado un grupo de tres. El par de ojos central es claramente mas pequeño que los demás ojos; este par central falta en Spermóphora lamellata, especi extendida por el Este mediterráneo (hasta Chequia y el sur de Suiza). Las patas son gráciles, carecen de espinas y están provistas de muchos pelos largos regularmente espaciados. Los tarsos están segmentados, lo que les permite una cierta flexibilidad. Las arañas cuelgan invertidas de sus telas y cuando se les molesta vibran a gran velocidad.

Se trata de una familia primitiva, los machos poseen los órganos copuladores bastante grandes y complejos. Los epiginios de las hembras son visibles y de estructura simple. Cuando el macho encuentra la telaraña de la hembra de un modo bastante sutil hace vibrar su cuerpo para indicar su presencia. La hembra se acerca al macho y cuelga su cabeza hacia abajo, en tanto que el macho inserta ambos palpos juntos. La cópula dura varias horas, después los dos sexos se separan. La puesta de la hembra consta de unos 20 huevos recubiertos por muy pocos hilos de seda, de suerte que son claramente visibles. La puesta es transportada por los quelíceros de la hembra.

De la Familia Pholcidae C.L.Koch, 1850 tenemos en la Penínsulansula ibérica los siguientes géneros:

• Género Crossopriza
• Género Holocnemus
• Género Pholcus
• Género Spermophora
• Género Spermophorides

Y del Género Pholcus Walckenaer, 1805 las siguientes especies:

• Pholcus opilionoides Schrank, 1781 
• Pholcus osellai Brignoli, 1971
• Pholcus phalangioides (Fuesslin, 1775)
• Pholcus baldiosensis (Wunderlich, 1992)
• Pholcus bimbache (Dimitrov & Ribera, 2006)
• Pholcus calcar (Wunderlich, 1987)
• Pholcus corcho (Wunderlich, 1987)
• Pholcus corniger (Dimitrov & Ribera, 2006)
• Pholcus edentatus (Campos & Wunderlich, 1995)
• Pholcus fuerteventurensis (Wunderlich, 1992)
• Pholcus fuerteventurensis (Wunderlich, 1992)
• Pholcus guadarfia (Dimitrov & Ribera, 2007)
• Pholcus helenae (Wunderlich, 1987)
• Pholcus intricatus (Dimitrov & Ribera, 2003)
• Pholcus knoeseli (Wunderlich, 1992)
• Pholcus malpaisensis (Wunderlich, 1992)
• Pholcus mascaensis (Wunderlich, 1987)
• Pholcus multidentatus (Wunderlich, 1987)
• Pholcus ornatus (Bösenberg, 1895)
• Pholcus roquensis (Wunderlich, 1992)
• Pholcus tenerifensis (Wunderlich, 1987)

Pholcus opilionoides (Schrank, 1781)

 

Simon, E. 1874. en “Les arachnides de France, 1. Paris: 1-272” hace la siguiente descripción de esta araña:

Muy parecida a Pholcus phalangioides, su cuerpo es solo de 4-5 mm. De color algo mas oscuro, a menudo mas amarillento. El esternón pardo gris con 6-8 manchas claras, redondas y contrastadas delante de las coxas de las patas. Los adultos se ven de junio a agosto.

Habitan principalmente en el campo, por ejemplo bajo montones de piedras, en huecos de rocas o en agujeros en árboles. También en casas, principalmente en sótanos, aunque aquí mucho mas rara que Pholcus phalangioides. En los últimos decenios ha sido desplazada por Pholcus phalangiodes del ámbito humano. Sólo hace 50 años era una especie muy extendida en casas, mientras que la especie mayor era descrita esporádicamente. Como era menos dependiente del calor que esta última, se  desplazó hacia el campo. En su modo de vida se asemeja mucho a Pholcus phalangioides. Desde lejos sus huevos parecen grises pero al ampliarlos también se ven de un color rosa reluciente.

Ninfa de Tettigonia

Ninfa, del latín nympha, y este a su vez del griego “νύμφη”(nýmphē), es una divinidad menor y por lo tanto mortal, de la mitología griega. Esta típicamente asociada a la naturaleza y representada como una mujer joven y bella. Hay varias categorías: náyades, que son las ninfas de las fuentes; nereidas, que son las ninfas del mar; orestíades, que son las de las montañas; melíades, que habitan en los fresnos y las dríades o hamadríades, que son las que custodian los árboles.

En Biología y Zoología llamamos ninfa al estadio intermedio entre el larvario y el definitivo de un insecto con metamorfosis sencilla, que se caracteriza por un tamaño inferior al del adulto, un desarrollo incompleto de las alas  e inmadurez para la reproducción. A diferencia de la pupa, la ninfa no pierde la capacidad de locomoción ni tiene necesariamente que permanecer en reposo, pues puede moverse por sí misma. 

Hoy mostraré unas imágenes de la ninfa un insecto que ya conocemos, así que simple y rápidamente  os pondré la clasificación con las claves taxonómicas.

Phylum Arthropoda

Animal formado por dos mitades simétricas respecto a un plano medio.
Cuerpo segmentado formado por varios anillos.
Tegumentos endurecidos por quitina formando un exoesqueleto.
Patas articuladas.

Subphylum Hexapoda

Tres pares de patas.

Clase Insecta

Generalmente con alas.
División en cabeza, tórax y abdomen.

Orden Orthoptera

Abdomen sin pinza terminal.
Pronoto extendido hacia atrás sobre el abdomen.
Generalmente patas posteriores adaptadas para el salto.
Élitros no endurecidos y alas posteriores plegadas longitudinalmente en abanico (si las tienen).

Suborden Ensifera

Antenas largas (más largas que cabeza y pronoto juntos) y filiformes.
Órgano estriduladormsituado en la base de las tegminas (si lo hay).

Familia Tettigoniidae

Órgano estridulador ubicado en la base de las tegminas.
Canto producido por fricción.
Órgano timpánico ubicado en la base de las tibias anteriores.
Tarsos gruesos con 4 artejos.
Cercos cortos.

Genus Tettigonia Linnaeus, 1758

Tibias anteriores con espina apical dorsal externa.
Segmento basal de los tarsos posteriores con plántulas poco desarrolladas.

Especies conocidas de este género en la península ibérica:

• Tettigonia cantans (Fuessli, 1775)
• Tettigonia hispanica (Bolívar, 1893)
• Tettigonia viridissima (Linnaeus, 1758)

 Tettigonia sp (ninfa)

  Tettigonia sp (ninfa)

  

Tettigonia sp (ninfa)

 Tettigonia sp (ninfa)

  Tettigonia sp (ninfa)

 Tettigonia sp (ninfa)

 Tettigonia sp (ninfa)

Linyphia hortensis

Ya he hablado en dos ocasiones de la Familia Linyphiidae Blackwall de la que sabemos ya de carrerilla que son una familia de arañas araneomorfas, suborden Araneomorphae) y por ello tienen los quelíceros dispuestos diagonalmente cruzándose en el extremo.

Forman parte de la superfamilia Araneoidea que comprende catorce familias de arañas, todas con ocho ojos y són la familia más extensa en número de géneros y la segunda en número de especie tras los saltícidos.

Europa tiene en total 1248 especies de linífidos, con 267 en España. Se distribuyen por todo el mundo desde las regiones templadas y trópico hasta las zonas heladas de Noruega y se caracterizan por que construyen unas características telarañas que se suelen describir como en forma de manta, alfombra o de hoja, excepto L. marginata, que construye una tela con algunas características de la estructura de Theridion. Se anclan por debajo en hilos de seda que a diferencia de las de los terídidos no contienen gotas adherentes; por encima se tienden a menudo hilos para "tropezar", que provocan la caída de presas voladoras.

Los miembros de esta familia son difíciles de caracterizar. Sus ojos están dispuestos en dos filas transversales; la fila delantera está tan alejada de la base de los quelíceros como de la trasera. La cabeza del macho a menudo presenta protuberancias, sobre las cuales pueden aparecer algunos o todos los ojos.

Esta familia contiene 6 subfamilias:

•Dubiaraneinae Millidge, 1993, con 13 géneros.
•Erigoninae Emerton, 1882, con 393 géneros.
•Linyphiinae Blackwall, 1859, con 69 géneros.
•Micronetinae Hull, 1920, con 89 géneros.
•Mynogleninae Lehtinen, 1967, con 19 géneros.
•Stemonyphantinae Wunderlich, 1986 con 1 género.

En la península Ibérica podemos encontrar especies de los siguientes géneros:

• Género Acartauchenius
• Género Agyneta
• Género Araeoncus
• Género Asthenargus
• Género Bathyphantes
• Género Birgerius
• Género Bolyphantes
• Género Bordea
• Género Centromerita
• Género Centromerus
• Género Ceratinella
• Género Cinetata
• Género Cnephalocotes
• Género Collinsia
• Género Dicybium
• Género Diplocephalus
• Género Diplostyla
• Género Drapetisca
• Género Entelecara
• Género Eperigone
• Género Erigone
• Género Erigonoplus
• Género Floronia
• Género Frontinellina
• Género Gnathonarium
• Género Gonatium
• Género Gongylidiellum
• Género Helophora
• Género Hybocoptus
• Género Hypomma
• Género Iberoneta
• Género Improphantes
• Género Labulla
• Género Lepthyphantes
• Género Lessertia
• Género Linyphia
• Género Lophomma
• Género Mansuphantes
• Género Maso
• Género Mecopisthes
• Género Megalepthyphantes
• Género Meioneta
• Género Metopobactrus
• Género Micrargus
• Género Microctenonyx
• Género Microlinyphia
• Género Microneta
• Género Minyriolus
• Género Moebelia
• Género Monocephalus
• Género Mughiphantes
• Género Nematogmus
• Género Neriene
• Género Oedothorax
• Género Ostearius
• Género Panamomops
• Género Parapelecopsis
• Género Pelecopsis
• Género Piniphantes
• Género Pocadicnemis
• Género Porrhomma
• Género Prinerigone
• Género Saaristoa
• Género Saloca
• Género Savignia
• Género Scotargus
• Género Silometopus
• Género Sintula
• Género Stemonyphantes
• Género Stylotector
• Género Syedra
• Género Tapinocyba
• Género Tapinopa
• Género Tenuiphantes
• Género Theonina
• Género Tiso
• Género Trichoncoides
• Género Trichoncus
• Género Trichopterna
• Género Troglohyphantes
• Género Troxochrus
• Género Turinyphia
• Género Typhochrestus
• Género Walckenaeria

El género Linyphia Latreille, 1804, se encuentra en América, Eurasia, África y Oceanía y según The World Spider Catalogo comprende las siguientes especies:

• Linyphia adstricta (Keyserling, 1886)
• Linyphia albipunctata O. Pickard-Cambridge, 1885
• Linyphia alpicola van Helsdingen, 1969
• Linyphia armata (Keyserling, 1891)
• Linyphia bicuspis (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia bifasciata (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia bisignata (Banks, 1909)
• Linyphia calcarifera (Keyserling, 1886)
• Linyphia catalina Gertsch, 1951
• Linyphia chiapasia Gertsch & Davis, 1946
• Linyphia chiridota (Thorell, 1895)
• Linyphia clara (Keyserling, 1891)
• Linyphia confinis O. Pickard-Cambridge, 1902
• Linyphia consanguinea O. Pickard-Cambridge, 1885
• Linyphia cylindrata (Keyserling, 1891)
• Linyphia decorata (Keyserling, 1891)
• Linyphia duplicata (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia eiseni Banks, 1898
• Linyphia emertoni Thorell, 1875
• Linyphia falculifera (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia ferentaria (Keyserling, 1886)
• Linyphia horaea (Keyserling, 1886)
• Linyphia hortensis Sundevall, 1830
• Linyphia hospita (Keyserling, 1886)
• Linyphia hui Hu, 2001
• Linyphia karschi Roewer, 1942
• Linyphia lambda (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia lehmanni Simon, 1903
• Linyphia leucosternon White, 1841
• Linyphia limatula Simon, 1904
• Linyphia limbata (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• inyphia lineola Pavesi, 1883
• Linyphia linguatula (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia linzhiensis Hu, 2001
• Linyphia longiceps (Keyserling, 1891)
• Linyphia longispina (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia ludibunda (Keyserling, 1886)
• Linyphia lurida (Keyserling, 1886) 
• Linyphia maculosa (Banks, 1909)
• Linyphia maura Thorell, 1875
• Linyphia melanoprocta Mello-Leitão, 1944
• Linyphia menyuanensis Hu, 2001
• Linyphia mimonti Simon, 1884
• Linyphia monticolens Roewer, 1942
• Linyphia neophita Hentz, 1850
• Linyphia nepalensis Wunderlich, 1983
• Linyphia nicobarensis Tikader, 1977
• Linyphia nigrita (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia nitens Urquhart, 1893
• Linyphia obesa Thorell, 1875
• Linyphia obscurella Roewer, 1942
• Linyphia octopunctata (Chamberlin & Ivie, 1936)
• Linyphia oligochronia (Keyserling, 1886)
• Linyphia orophila Thorell, 1877
• Linyphia perampla O. Pickard-Cambridge, 1885
• Linyphia peruana (Keyserling, 1886)
• Linyphia petrunkevitchi Roewer, 1942
• Linyphia phaeochorda Rainbow, 1920
• Linyphia phyllophora Thorell, 1890
• Linyphia polita Blackwall, 1870
• Linyphia postica (Banks, 1909)
• Linyphia rita Gertsch, 1951
• Linyphia rubriceps (Keyserling, 1891)
• Linyphia rustica (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia sagana Dönitz & Strand, 1906
• Linyphia sikkimensis Tikader, 1970
• Linyphia simplicata (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia straminea O. Pickard-Cambridge, 1885
• Linyphia subluteae Urquhart, 1893
• Linyphia tauphora Chamberlin, 1928
• Linyphia tenuipalpis Simon, 1884
• Linyphia textrix Walckenaer, 1842
• Linyphia triangularis (Clerck, 1757)
• Linyphia triangularoides Schenkel, 1936
• Linyphia trifalcata (F. O. Pickard-Cambridge, 1902)
• Linyphia tuasivia Marples, 1955
• Linyphia tubernaculofaciens Hingston, 1932
• Linyphia urbasae Tikader, 1970
• Linyphia virgata (Keyserling, 1886)
• Linyphia xilitla Gertsch & Davis, 1946
• †Linyphia andraei Bertkau, 1878
• †Linyphia byrami Cockerell, 1925
• †Linyphia florissanti Petrunkevitch, 1922
• †Linyphia pachygnathoides Petrunkevitch, 1922
• †Linyphia quievreuxi Berland, 1939
• †Linyphia retensa Scudder, 1890
• †Linyphia rottensis Bertkau, 1878
• †Linyphia seclusa (Scudder, 1890)

de las que en la Peninsula ibérica  solamente podemos encontrar las siguientes cuatro:

• Linyphia hortensis
• Linyphia maura
• Linyphia tenuipalpis
• Linyphia triangularis

Linyphia hortensis Sundevall, 1830

Esta araña habita en bosques y zonas abiertas y se la puede hallar generalmente en arbustos y vegetación de poca altura. Es una araña por lo general frecuente y típica de la primavera, pudiendo verse las formas adultas de Abril a Junio.

Su tamaño es de  3- 4 mm el macho y 4--5 mm la hembra.

Tiene el prosoma de color pardo a pardo rojizo con la zona cefálica oscura, sin banda longitudinal. El opistoma es relativamente corto con una banda longitudinal ancha y oscura dentada lateralmente. La banda blanca se extiende a sus lados hacia atrás generalmente solo hasta la mitad del opistoma pudiendo verse mas abajo, en los costados del opistoma otra banda blanca que da la vuelta por el extremo posterior. Las patas son pardoamarillentas pálidas, sin marcar.  Los machos no tienen quelíceros vistosos.