Lucanus cervus cervus

La familia Lucanidae (lucánidos) está formada por un grupo de coleópteros xilófagos o saproxilófagos con más de 1500 representantes en todo el mundo, de buen tamaño (entre los 10 y los 90 cm) y que engloba a unas 930 especies diferentes. Cuenta con 18 especies en Europa (Baraud, 1993; Muret & Drumont, 1999), de las que nueve están presentes en la Península Ibérica (López-Colón, 2000). Su habitat natural suelen ser los bosques de árboles de hoja ancha pues se alimentan de madrea en putrefacción, hojas, yemas o sabia de los árboles y las hembras utilizan los tocones y troncos viejos para su ovoposición, siendo el medio en el que después se desarrollan las larvas. En la Península Ibérica las especies que tenemos figuran en el libro rojo de especies a proteger.

La familia Lucanidae se divide de la siguiente forma:

• Subfamilia Protolucaninae, Nikolajev, 2007
• Subfamilia Aesalinae MacLeay, 1819

Tribu Aesalini MacLeay, 1819
Tribu Ceratognathini Sharp, 1899
Tribu Nicagini LeConte, 1861

• Subfamilia Ceruchitinae, Nikolajev, 2006
• Subfamilia Syndesinae MacLeay, 1819
• Subfamilia Lampriminae MacLeay, 1819

Tribu Lamprimini MacLeay, 1819
Tribu Streptocerini Kikuta, 1986

• Subfamilia Lucaninae Latreille, 1804

Tribu Chiasognathini Burmeister, 1847
Tribu Lucanini Latreille, 1804
Tribu Platycerini Mulsant, 1842
Tribu Platyceroidini Paulsen and Hawks, 2008

• Subfamilia Paralucaninae, Nikolajev, 2000

En la Península Ibérica solamente podemos encontrarnos representantes de las subfamilias Aesalinae, Lucaninae y Syndesinae. Los de la familia Lucanidae son los siguientes: de la Subfamilia Aesalinae a Aesalus scarabaeoides (Panzer), de la Subfamilia Sindesinae a Sinodendron cylindricum (Linneo) y Ceruchus chrysomelinus (Hochenwarth) y de la Subfamilia Lucaninae los que enumeraré a continuación.

La subfamilia Lucaninae está compuesta por las siguientes tribus:

• Aegini
• Allotopini Maes, 1992
• Chiasognathini Burmeister, 1847
• Cladognathini
• Colophonini
• Dendeziini
• Dorcini Parry, 1864
• Figulini
• Homoderini
• Lissapterini
• Lucanini MacLeay, 1819
• Neoprosopocoilini
• Nigidiini
• Odontolabini Parry, 1870
• Pholidotini Kikuta, 1986
• Platycerini Mulsant, 1842
• Platyceroidini Paulsen and Hawks, 2008
• Prosopocoilini Benesh, 1960
• Pseudodorcini
• Rhaethulini
• Ryssonotini
• Sclerostomini Benesh, 1955

A las que hay que añadir los siguientes géneros sin tribu asignada:

• Altitatiayus Weinreich, 1960
• Apterodorcus Arrow, 1943
• Aulacostethus Waterhouse, 1869
• Auxicerus Waterhouse, 1883
• Caenolethrus Thomson, 1862
• Casignetus MacLeay, 1819
• Charagmophorus Waterhouse, 1895
• Incadorcus Arnaud & Bomans, 2006
• Leptinopterus Hope, 1838
• Macrocrates Burmeister, 1847
• Pseudoscortizus Arnaud et al., 2008
• Sclerostomulus Weinreich, 1960
• Zikanius Grossi & Paulsen, 2009

pero en la península Ibérica solamente tenemos representantes de dos de las tribus:

• Tribu Lucanini Latreille, 1804

Género Dorcus MacLeay, 1819
Dorcus parallelipipedus (Linnaeus, 1758)

Género Lucanus Scopoli, 1763
Lucanus barbarossa Fabricius, 1801
Lucanus cervus (Linnaeus, 1758)

• Tribus Platycerini Mulsant, 1842

Género Platycerus Geoffroy, 1762
Platycerus caprea (DeGeer, 1774)
Platycerus caraboides (Linnaeus, 1758)
Platycerus spinifer Schaufuss, L.W., 1862

Lucanus cervus (Linnaeus, 1758)

A este coleóptero se le conoce también con los siguientes nombres vulgares:

• Cornatero (zona Sierra de Gredos)
• Carouca, vacaloura o escornabois (Galicia)
• Vacalloria (Asturias)
• Escuernabuyes (Cantabria)
• Arkanbelea (País Vasco)

Se reconocen las siguientes subespecies:

L. c. akbesianus en Siria
L. c. cervus en el Cáucaso, Turquía e Irán
L. c. fabiani en Francia
L. c. judaicus en Turquía
L. c. mediadonta en Georgia
L. c. tauricus en Crimea.

En Europa (BARAUD, 1993) solo tenemos dos de estas subespecies y solamente la subespecie típica, Lucanus cervus cervus, se encuentra en la Península Ibérica.

Este escarabajo es una especie asociada a bosques de caducifolias. Parece predominar en la campiña de baja altitud, una mezcla de cultivos, prados, setos y bosques dispersos. Las densidades de adultos son claramente mayores en las manchas boscosas sobre todo de Castaño (Castanea sativa) o bosque mixto. También se encuentra en bosques de ribera, dominados por el Aliso (Alnus glutinosa), el Fresno Común (Fraxinus excelsior), el Álamo (Populus spp.) y la Salguera Negra (Salix atrocinerea). Si bien en todos estos hábitats puede aparecer de modo disperso o formando pequeños bosquetes el Roble Común (Quercus robur), no existe una dependencia fuerte de esta especie por parte de L. cervus. En las plantaciones de Eucalipto (Eucaliptus globulus) persiste debido a la presencia de otras especies de frondosas que suelen quedar más o menos dispersas en el interior de dichas plantaciones. Aparece con cierta frecuencia en el casco urbano y en parques públicos de muchas ciudades, pero se ignora si se trata de individuos que se dispersan desde otras zonas o de poblaciones residentes. No parece existir una dependencia estrecha de bosques maduros o viejos, al margen de la presencia de suficiente madera en el estado requerido de descomposición. El hábitat de la especie está fundamentalmente relacionado con la alimentación larvaria. Las larvas de este insecto pasan de uno a cinco años alimentándose de madera en descomposición y tienen un apetito muy voraz, con tan solo un gramo de peso pueden comer en un sólo día 22,5 centímetros cúbicos de madera y alcanzan un tamaño considerable, llegando incluso a 10 centímetros de largo.

La especie se encuentra restringida a la mitad septentrional de la Península Ibérica, con un límite aproximado en el norte de Cáceres, Sierra de Gredos, norte de Toledo, y Sierra de Guadarrama. A lo largo de la costa mediterránea su límite de distribución es más septentrional, pues apenas existen citas en Teruel y Tarragona.

Se cree que los machos son territoriales pero se desconoce con certeza cómo se produce la cópula y la duración de la misma. Tras ella, las hembras ponen unos 20 huevos de unos 3 mm en ponen sus huevos tanto en madera en descomposición como en las raíces de una variedad de árboles como son: roble, manzano, fresno y cerezo. Eclosionan entre 2 y 4 semanas tras la puesta, y salen larvas, melolontiformes, se alimentan de la madera en descomposición, comiendo una larva de 1 gr unos 22.5 cm cúbicos de madera al día; la duración de la fase larvaria oscila entre uno y cinco años. Después de la última muda larvaria, la larva construye una cámara en la madera o cerca de ella con madera y otras sustancias que pega con la saliva. Se cree que la metamorfosis ocurre en otoño y el adulto hiberna en esta cámara para salir en primavera, aunque también se cree que es la larva la que hiberna. La vida de los adultos oscila entre los quince días y el mes (PAULIAN, 1988) y aparecen entre mediados de junio y mediados de septiembre, con un máximo de abundancia a mediados de julio. Parece existir una tendencia a la aparición algo más temprana de los machos (proterandria). Sobre las fuentes de mortalidad adulta poco se sabe, aparte de que forman parte de la dieta de diversas ave. Los adultos se alimentan de la savia azucarada de heridas en los árboles o de frutos ya muy maduros; las hembras pueden incluso perforar la corteza de los árboles con sus mandíbulas para acceder a la savia. Aunque existe cierto grado de actividad diurna, el periodo de actividad diario es máximo durante el ocaso y parece cesar caída la noche. En zonas más mediterráneas este escarabajo parece mostrar mayor propensión a la actividad diurna.



Lucanus cervus cervus

Se le considera el escarabajo más grande de Europa, variando su tamaño entre los 3 y 10 cm en los machos y los 2,8 y 5,4 cm en las hembras. El cuerpo es alargado, de color negro o pardo rojizo. La cabeza es negra, tiene unas antenas acodadas de color negro, al igual que las patas; en el macho destacan unas mandíbulas de gran tamaño de color pardo rojizo que se disponen a modo de cornamenta, dando pues el nombre común a esta especie; estas mandíbulas no tienen depresión longitudinal en su cara superior y el borde interno tiene numerosos dientes el ápice bífido. El pronoto es subrectangular y negruzco tanto en machos como en hembras, tiene los ángulos posteriores obtusos. Los elitros son pardo rojizos en las machos y negruzcos en las hembras, con un punteado fino muy marcado. La parte media del prosternón está prolongada por una apófisis comprimida y ancha, que sobresale desde las coxas anteriores. Las patas tienen los primeros 4 artejos del tarso con unos cepillos de sedas cortas, densamente dispuestas y regulares en su cara inferior; el artejo 5 tiene una franja de sedas cortas y densas agrupadas en una especie de pincel.

Podemos distinguir a Lucanus cervus de Pseudolucanus Barbarossa facilmente porque:

• Lucanus cervus tiene la cara superior de las mandíbulas del macho sin depresión longitudinal; borde interno con numerosos dientes y ápice bífido (excepto en raras ocasiones). Pronoto con los ángulos posteriores obtusos, poco marcados. Élitros con punteado fino pero muy marcado, de aspecto reticulado y mate. Parte medio-posterior del prosternón prolongada por una apófisis comprimida y ancha, muy saliente desde las coxas anteriores

• Pseudolucanus barbarossa tiene la cara superior de las mandíbulas del macho con un amplio surco longitudinal; borde interno con un solo diente medio y ápice no bífido. Pronoto con los ángulos posteriores rectos y marcados. Élitros con punteado muy fino y esparcido; tegumento liso y brillante. Parte medio-posterior del prosterno, por detrás de las coxas anteriores, prolongada en una débil quilla mediana, no del todo levantada sino más bien en declive.

Esta especie está en regresión debido a la pérdida de su hábitat y a la caza. Está incluido en el anexo III (especie protegida) del Convenio de Berna y en el Anexo II (especies que requieren zonas especiales de protección) de la Directiva de Hábitats. A nivel nacional se incluye en la categoría de “interés especial” en el Catálogo Nacional de Especies Amenazadas. No obstante, no queda recogido en el "Libro Rojo de los Invertebrados de España" (Galante y Verdú, 2006).

El ciervo volante aparece como una especie prioritaria en el marco del Plan de Acción para la Biodiversidad del Reino Unido (UKBAP) y se incluye en el Programa de Recuperación de Especies de la Naturaleza Inglesa.



Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus



Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

Lucanus cervus cervus

La red de vigilancia del ciervo volante (Lucanus cervus) se estrenó en junio de 2017. Surge de la cooperación entre 16 institutos y universidades de 13 países y su objetivo es evaluar la situación del escarabajo más grande de Europa, amenazado en toda su área de distribución.

Arge cyanocrocea

Cuando hablé de Los tentredínidos (Tenthredinidae) y Tenthredopsis comentaba que la Superfamilia Tenthredinoidea está compuesta de las siguientes familias:

• Familia Argidae Konow, 1890
• Familia Blasticotomidae Thomson, 1871
• Familia Cimbicidae W. Kirby, 1837
• Familia Diprionidae Rohwer, 1910
• Familia Pergidae Rohwer, 1911
• Familia Tenthredinidae Latreille, 1803

La Familia Argidae (árgidos) contiene más de 800 especies de himenópteros que son de distribución mundial, especialmente en los trópicos, pero en Europa solo tenemos 60. Se diferencian de los Tentedrínidos por las antenas, con solo res artejos y con el tercer artejo muy largo. Las del macho suelen tener forma de diapasón. Son de cuerpo robusto y la mayoría de color muy oscuro o negro aunque algunas tienen parte de color rojo o amarillo. Sus larvas son herbívoras y se suelen alimentar de las hojas de árboles o arbustos. Unos pocos son plaga de rosales y manzanos.

Esta familia contiene 4 subfamilias:

• Subfamilia Arginae
• Subfamilia Atomacerinae
• Subfamilia Erigleninae
• Subfamilia Sterictiphorinae

En la peninsula ibérica solamente tenemos un género de la Subfamilia Arginae que es Arge Schrank, 1802

Se conocen las siguientes especies de este género en Europa:

Arge auripennis Konow 1891 Arge beckeri (Tournier 1889) Arge berberidis Schrank 1802 Arge caucasica Tournier 1889 Arge ciliaris (Linnaeus 1767) Arge cyanocrocea (Forster 1771) Arge dimidiata (Fallén 1808) Arge enodis (Linnaeus 1767) Arge frivaldszkyi (Tischbein 1852) Arge fuscipennis (Herrich-Schäffer 1833) Arge fuscipes (Fallén 1808) Arge gracilicornis (Klug 1814) Arge melanochra (Gmelin 1790) Arge metallica (Klug 1834) Arge nigripes (Retzius 1783) Arge ochropus (Gmelin 1790)

Arge pagana (Panzer 1798) Arge pagana pagana (Panzer 1798) Arge pagana stephensii (Leach 1817) Arge pallidinervis Gussakovskij 1935 Arge pleuritica (Klug 1834) Arge pullata (Zaddach 1859) Arge rustica (Linnaeus 1758) Arge scita (Mocsáry 1880) Arge shawi Liston 1992 Arge similis (Vollenhoven, 1860) Arge simulatrix Konow 1887 Arge sorbi Schedl & Pschorn-Walcher 1984 Arge stecki Benson 1939 Arge tergestina (Kriechbaumer 1876) Arge thoracica (Spinola 1808) Arge ustulata (Linnaeus 1758)

pero en la península Ibérica solamente podemos encontrar las siguientes:

• Arge berberidis Schrank, 1802
• Arge cyanocrocea (Forster, 1771)
• Arge enodis (Linnaeus, 1767)
• Arge fuscipes (Fallén, 1808)
• Arge gracilicornis (Klug, 1814)
• Arge melanochra (Gmelin, 1790)
• Arge nigripes (Retzius, 1783)
• Arge ochropus (Gmelin, 1790)
• Arge pagana (Panzer, 1798)
• Arge rustica (Linnaeus, 1758)
• Arge ustulata (Linnaeus, 1758)

Arge cyanocrocea (Förster, 1771)

Los adultos de Arge cyanocrocea crecen hasta 7-8 milímetros de longitud. Carece de cintura de avispa, como todas las portasierra y tiene el abdomen de color naranja amarillento. Su cabeza y tórax son negros. Ls patas son rojizas, con pequeños anillos negros. Las alas muestran una banda ancha transversal característica y un ápice gris. Arge cyanocrocea es bastante similar a Arge pagana, que también tiene alas negras.

Arge cyanocrocea

Se pueden encontrar de mayo a julio, alimentándose de polen y néctar de varias especies de Apiaceae (Aegopodium podagraria, Meum athamanticum, Heracleum sphondylium, etc.), especies de Euphorbiaceae (Euphorbia spp.) o especies de Asteraceae (Tanacetum vulgare)

Las larvas de esta especie se parecen a las orugas, pero tienen cinco pares de patas mientras que las orugas tienen cuatro. Se alimentan de las hojas de las zarzas de mora (Rubus fruticosus), frambuesa (Rubus idaeus) y Sanguisorba officinalis.

El ejemplar de la fotografía que ilustra esta entrada ha sido identificado por Vicente Santamaría Saldaña un naturalista aficionado que hace excelentes fotografías y las comparte mediante su Blog Fauna silvestre de Hormaza y Google+ y no tiene ningún reparo en ayudar con amabilidad a otros aficionados cuando detecta errores, como ha sido este caso.

Icius subinermis

Hablemos hoy de otro de los géneros pertenecientes a Salticidae que podemos encontrar en la península ibérica y que ya he dicho en mas de una ocasión que son los siguientes:

Género Aelurillus
Género Afraflacilla
Género Attulus
Género Ballus
Género Bianor
Género Carrhotus
Género Chalcoscirtus
Género Cyrba
Género Dendryphantes
Género Euophrys
Género Evarcha
Género Habrocestum
Género Hasarius
Género Heliophanus
Género Icius
Género Leptorchestes
Género Macaroeris
Género Marpissa
Género Mendoza

Género Menemerus
Género Myrmarachne
Género Neathea
Género Neon
Género Pellenes
Género Philaeus
Género Phintella
Género Phlegra
Género Plexippus
Género Pseudeuophrys
Género Pseudicius
Género Saitis
Género Salticus
Género Sitticus
Género Synageles
Género Talavera
Género Thyene
Género Yllenus


Género Icius Simon, 1876

El género de araña saltadora Icius fue erigido por Simón en 1876.  La especie tipo del género es el Icius notabilis  ( CL Koch , 1846) , que ahora se llama Icius hamatus (CL Koch, 1846) , para evitar la confusión con el Icius notabilis Simon, 1871, que es una identificación errónea de Icius subinermis (Simon, 1937), como se describe en un estudio de Prószynski de 1983.

De las 34 especies incluidas en este género desde 2017, 18 se encuentran en África, 7 en Asia (3 especies en China, una en Afganistán, una en Sumatra, una en Japón y una distribuida por toda la zona Paleártica), cinco en Europa (incluida una registrada en los tramos inferiores del río Volga en Rusia), tres en América y una en la Micronesia.

De las cinco especies de Icius confinadas a la región mediterránea de Europa, dos de ellas, I. hamatus (CLKoch, 1846) (Tomasiewicz y Wesołowska 2006, Schäfer & Deepen-Wieczorek 2014) e Icius subinermis Simon, 1937 (Jäger 1995, Helsdingen 2006) también se han descrito recientemente en Europa Central y Occidental.

En la península Ibérica odemos encontrar las siguientes especies:

• Icius congener Simon, 1871
• Icius crassipes (Simon, 1868)
• Icius hamatus (C.L. Koch, 1846)
• Icius insolitus Alicata & Cantarella, 1994
• Icius subinermis Simon, 1937

Icius subinermis  Simon, 1937

No se ha aclarado demasiado de donde procede el término Icius, pero la palabra subinermis deriva del latín "sub" que significa debajo, dependiente de + "inermis, -e" que significa sin armas, inofensivo.

Icius subinermis es una especie que tiene un origen mediterráneo (Alicata y Cantarella 1994) siendo muy conocida en España, Francia (incluida Córcega), Italia (incluidas Sicilia y Cerdeña) y Portugal, pero también se ha descrito en Macedonia, Eslovenia, Suiza (Helsdingen 2017), Alemania (Blick et al., 2016) y Serbia (Stanković 2012). Recientemente se la ha visto en los Países Bajos (Helsdingen 2006), en la República Checa (Šich 2015) y en Hungría.

Icius subinermis probablemente vive en hábitats húmedos en condiciones naturales (Stanković 2012, Leroy et al., 2014), como por ejemplo, cerca de arroyos o en prados húmedos. Construye un refugio de seda sobre plantas frondosas o debajo de rocas cerca de ríos o arroyos (Stanković 2012). También puede encontrarse en los árboles, especialmente en la vegetación que limita con los ambientes acuáticos, pero generalmente está presente en el agua en el momento de su reproducción. Sin embargo, también se ha observado en entornos urbanos o cerca de áreas residenciales (Jäger 1995, Komnenov 2005, Kostanjšek & Fišer 2005, Helsdingen), en la mayoría de los casos, en edificios (por ejemplo, en una casa, invernadero o apartamento) (Jäger 1995, 1996, Komnenov 2005, Helsdingen 2006), lo que explica su expansión desde el mediterráneo hacia centro europa.

La longitud corporal de esta especie va de los 5 a los 7 mm habiendo un claro dimorfismo sexual por el que es fácilmente diferenciable el sexo atendiendo al diseño.

 Icius subinermis macho

Los machos son semejantes a los de Pseudicius encarpatus, con una parte posterior del prosoma de color negro, una parte anterior con vello pardo rojizo y blanco que se prolonga hacia a trás en un triángulo blanco, un rostro con vello rojizo entre los ojos y a los lados y por encima y por debajo una lista de color blanco. El dorso del opistoma posee listas longitudinales blancas y un ribete rojo, negro en los lados y mas hacia fuera de nuevo con una delgada banda lateral blanca. El par de patas anteriores son de color pardo oscuro, siendo las restantes de un color amarillento claro. Los palpos del macho tiene la parte proximal del fémur de color oscuro y la base del tarso es más oscura que la tibia. Poseen un proceso tibial pequeño, dirigido hacia afuera y con un ápice afilado doblado hacia adelante, engrosándose en su base con un proceso apenas visible. El embolus es corto y uniformemente curvo. La parte distal del bulbo es aproximadamente tan larga como ancha y posee con una proyección apical apenas perceptible.

Icius subinermis hembra

Las hembras son de color mucho mas claro que los machos, con predominante vellosidad blancuzca y rojiza clara; prosoma detrás del borde anterior blanco con una banda oblicua pardo oscura; dorso del opistoma con una ancha banda longitudinal blancuzca enmarcada por los lados y por detrás por una banda negra igual de ancha; el límite entre ambas bandas no es recto, sino claramente dentado. El epigineo de las hembras tiene el margen posterior fuertemente convexo, conductos copulatorios cortos y una inclinación variable.

A los adultos se les puede ver desde finales de verano hasta la primavera del año siguiente.

Pone unos sacos de seda  en los frutos de los juncos y debajo de piedras donde permance bajo condiciones climáticas desfavorables. Amenudo varios de estos hilados se encuentran a tocar unos de otros. A las hembras a menudo se las ve protegiendo sus huevos (Ledoux 2007).

 

Icius subinermis macho

Icius subinermis hembra

Icius subinermis macho

Icius subinermis macho

Icius subinermis macho

Icius subinermis macho

Sittipub pubescens

Hace tiempo hablé de la Familia Salticidae en la Península ibérica y daba ejemplos de varias especies pertenecientes a diferentes géneros.

En ese momento explicaba que son arañas pequeñas, de pocos milímetros en general, que cazan al acecho, sin utilizar redes y en las que destaca su agilidad en el salto y su vista.

Sus ojos tienen una lente protectora encargada de proyectar la imagen en la retina que cuenta con cuatro capas distintas de células fotosensibles. Debido a la distancia entre las respectivas capas de la retina del ojo, la luz verde se centra solo en la capa más profunda del ojo mientras que la otra capa de la retina sensible a la luz verde se encarga de recibir las imágenes borrosas y difusas que se proyectan y combinando así las cuatro capas, la araña saltarina logra conformar una visión en 3 dimensiones y ser capaz de medir distancias. Los ojos frontales proporcionan visión estereoscópica, a la vez que los laterales completan un campo de visión de 360°, así que no necesitan girarse para controlar todo su entorno. El cuerpo parece cubierto de pelos que a la vez son escamosos, a veces iridiscentes. Los palpos de los machos, pero no los de las hembras, son a menudo grandes y vistosos, empleados durante el cortejo. Las patas anteriores son algo más grandes y sujetan a la presa cuando caen sobre ella.

Pueden saltar hasta 50 veces su tamaño, a pesar de no tener prácticamente músculos en sus patas. Para sus saltos utilizan una especie de bomba hidráulica situada en sus patas traseras que expulsa hemolinfa a gran velocidad impulsando así a la araña. Son capaces de saltar con precisión en cualquier dirección, también de lado o hacia atrás.

Los Géneros de la Familia Salticidae que podemos encontrar en la Península Ibérica según Iberfauna son los siguientes:

Género Aelurillus Género Afraflacilla Género Attulus Género Ballus Género Bianor Género Carrhotus Género Chalcoscirtus Género Cyrba Género Dendryphantes Género Euophrys Género Evarcha Género Habrocestum Género Hasarius Género Heliophanus Género Icius Género Leptorchestes Género Macaroeris Género Marpissa Género Mendoza

Género Menemerus Género Myrmarachne Género Neathea Género Neon Género Pellenes Género Philaeus Género Phintella Género Phlegra Género Plexippus Género Pseudeuophrys Género Pseudicius Género Saitis Género Salticus Género Sitticus Género Synageles Género Talavera Género Thyene Género Yllenus

Del Género Sitticus Simon, 1901 podríamos ver a las siguientes especies:

• Sitticus floricola (C.L. Koch, 1837)
• Sitticus pubescens (Fabricius, 1775)
• Sitticus rupicola (C.L. Koch, 1837)
• Sitticus saltator (O. Pickard-Cambridge, 1868)
• 
  

Género Sittipub Prószyński 2016

Sittipub es un género que fue descrito por primera vez en 2016 por Prószyński. Este género se separó del género Sitticus aceptándose como la especie tipo a Aranea pubescens. A partir de Septiembre de 2017, se consideran dos especies adscritas este género:

• Sittipub pubescens (Fabricius, 1775): Europa, Norte de Africa a Turquía, Afganistan y recientemente introducida en USA

• Sittipub relictarius (Logunov, 1998): Rusia, Georgia, Iran, yAzerbaijan

El nombre del género se deriva de las primeras partes de los nombres genéricos y específicos de Sitticus pubescens.

Sittipub pubescens (Fabricius, 1775)

Hasta el 2017 se la clasificaba como Sitticus pubescens.

La identificación correcta se basa en la estructura precisa del epiginio femenino y el bulbo de los palpos del macho.

Esta araña habita principalmente en sitios cálidos y soleados en rocas, muros o troncos de árbol, también asentamientos humanos en viejos edificios (sobre todo en construcciones de entramado), en verjas corroídas, en grietas de roca o en desfiladeros. En la Europa central se encuentra muy extendida, especialmente en zonas de clima favorable.

Habita pues, casas y jardines y se la puede ver a los machos entre Marzo y Octubre y a las hembras durante todo el año en el interior de las casas. Lo mas habitual es poder ver a ambos sexos entre Mayo y Junio.

Tiene una longitud corporal de unos 4 a 5 mm el macho y 4,5 a 6 mm la hembra. El caparazón es de color base en ambos sexos oscila entre pardo grisáceo y gris oscuro. Semejante a Sitticis floricola, pero con los dibujos claros (un pequeño triángulo entre el par de ojos posterior y un par de manchas pequeñas en la parte anterior y otras grandes detrás de la línea media, y dos o tres pares en la parte posterior, en el opistoma) por lo general sin los contornos tan nítidos, especialmente en la hembra, sin listas en el prosoma. Los lados poseen manchas de pelos blancos Las patas tienen anillos claros y oscuros mas o menos perceptibles con pelos blancos. Los machos son mas oscuros, con las manchas abdominales mas patentes y tienen los palpos con puntas negras y vello gris blanco por delante. 



Tropinota sp y Oxythyrea funesta

Hace exactamente un año escribí sobre un escarabajo Oxythyrea funesta, conocido vulgarmente como escarabajo del sudario y lo ejemplificaba con una fotografía que ha día de hoy no veo tan claramente. Hace unos días hice unas cuantas fotografías mas de escarabajos, pensando que podían ser la misma especie o una muy parecida, lo que me ha llevado a hacer una revisión de lo publicado y añadir información.  He aquí la actualización que he hecho.

Como decía en su día, los escarabeoideos, coleópteros polífagos del infraorden Scarabaeiformia, Superfamilia Scarabaeoidea, se caracterizan por tener las antenas terminadas en un maza de 3 a 7 artejos en forma de abanico, y la presencia de patas fuertes provistas de grandes dientes (para excavar). Muchas especies poseen cuernos en la cabeza y/o el protórax, más desarrollados en los machos. Las larvas tienen típicamente forma de "C". Muchas especies son coprófagas o se alimentan de  madera en descomposición y algunas de flores u hojas.

Esta superfamilia se puede subdividir en las siguientes familias con sus correspondientes subfamilias:

Familia Pleocomidae LeConte, 1861

    Subfamilia Pleocominae LeConte, 1861
    Subfamilia Cretocominae Nikolajev, 2002 †
    Subfamilia Archescarabaeinae Nikolajev, 2010 †

Familia Geotrupidae Latreille, 1802

    Subfamilia Taurocerastinae Germain, 1897
    Subfamilia Bolboceratinae Mulsant, 1842
    Subfamilia Geotrupinae Latreille, 1802

Familia Belohinidae Paulian, 1959

Familia Passalidae Leach, 1815

    Subfamilia Aulacocyclinae Kaup, 1868
    Subfamilia Passalinae Leach, 1815

Familia Trogidae MacLeay, 1819

    Subfamilia Avitortorinae Nikolajev, 2007 †
    Subfamilia Troginae MacLeay, 1819
    Subfamilia Omorginae Nikolajev, 2005

Familia Glaresidae Kolbe, 1905

Familia Diphyllostomatidae Holloway, 1972

Familia Lucanidae Latreille, 1804

    Subfamilia Protolucaninae Nikolajev, 2007 †
    Subfamilia Aesalinae MacLeay, 1819
    Subfamilia Ceruchitinae Nikolajev, 2006 †
    Subfamilia Syndesinae MacLeay, 1819
    Subfamilia Lampriminae MacLeay, 1819
    Subfamilia Lucaninae Latreille, 1804
    Subfamilia Paralucaninae Nikolajev, 2000 †

Familia Ochodaeidae Mulsant and Rey, 1871

    Subfamilia Cretochodaeinae Nikolajev, 1995 †
    Subfamilia Ochodaeinae Mulsant and Rey, 1871
    Subfamilia Chaetocanthinae Scholtz, 1988

Familia Hybosoridae Erichson, 1847

    Subfamilia Mimaphodiinae Nikolajev, 2007 †
    Subfamilia Anaidinae Nikolajev, 1996
    Subfamilia Ceratocanthinae Martínez, 1968
    Subfamilia Hybosorinae Erichson, 1847
    Subfamilia Liparochrinae Ocampo, 2006
    Subfamilia Pachyplectrinae Ocampo, 2006

Familia Glaphyridae MacLeay, 1819

    Subfamilia Glaphyrinae MacLeay, 1819
    Subfamilia Amphicominae Blanchard, 1845
    Subfamilia Cretoglaphyrinae Nikolajev, 2005 †

Familia Scarabaeidae Latreille, 1802

    Subfamilia Lithoscarabaeinae Nikolajev, 1992 †
    Subfamilia Chironinae Blanchard, 1845
    Subfamilia Aegialiinae Laporte, 1840
    Subfamilia Eremazinae Iablokoff-Khnzorian, 1977
    Subfamilia Aphodiinae Leach, 1815
    Subfamilia Aulonocneminae Janssens, 1946
    Subfamilia Termitotroginae Wasmann, 1918
    Subfamilia Scarabaeinae Latreille, 1802
    Subfamilia Prototroginae Nikolajev, 2000 †
    Subfamilia Cretoscarabaeinae Nikolajev, 1995 †
    Subfamilia Dynamopodinae Arrow, 1911
    Subfamilia Phaenomeridinae Erichson, 1847
    Subfamilia Orphninae Erichson, 1847
    Subfamilia Allidiostomatinae Arrow, 1940
    Subfamilia Aclopinae Blanchard, 1850
    Subfamilia Melolonthinae Leach, 1819
    Subfamilia Rutelinae MacLeay, 1819
    Subfamilia Dynastinae MacLeay, 1819
    Subfamilia Cetoniinae Leach, 1815
   
Familia Coprinisphaeridae Genise, 2004 †

Familia Pallichnidae Genise, 2004 †

La Familia Scarabaeidae contiene casi 30.000 especies de tamaño comprendido entre los 2 y los 180 mm. Se caracterizan por tener las antenas lameladas formadas por once artejos, de los cuales los tres últimos forman una maza laminar o arrosetada. El clípeo está completamente fusionado con la frente y el labro queda oculto bajo el clípeo. Sus patas son de tipo caminador, excavador y su fórmula tarsal es 5-5-5 (en ocasiones pueden faltar los tarsos  anteriores y las uñas en todas las patas). El color puede ser negro, azul, verde, pardo, amarillo o rojo, a veces iridiscente, metálico, brillante o contrastado con marcas oscuras. El abdomen tiene seis esternitos visibles.

Cetoniinae es una subfamilia de escarabajos de la familia Scarabaeidae. Los adultos de muchas especies son diurnos y visitan flores, alimentándose de polen y nectar o de los pétalos. Algunos comen frutas. Hay alrededor de 4.000 especies descritas. Se distinguen de otros escarabajos por la combinación de los siguientes caracteres: la forma de la pleura, con el borde lateral de los élitros sinuoso, la inserción de la antena es visible desde arriba. Las larvas de la mayoría se alimentan de material orgánico en el suelo o madera semipodrida de árboles muertos. Algunas están asociadas con hormigas y los adultos también se suelen encontrar en los nidos de hormigas.

La Subfamilia Cetoniinae Leach, 1815 se puede clasificar de la siguiente manera:

Tribu Cetoniini Leach, 1815

Subtribu Cetoniina Leach, 1815
Subtribu Euphoriina Horn, 1880
Subtribu Leucocelina Kraatz, 1882

Tribu Cremastocheilini  Burmeister and Schaum, 1841

Subtribu Aspilina Krikken, 1984
Subtribu Coenochilina Burmeister, 1842
Subtribu Cremastocheilina Burmeister and Schaum, 1841
Subtribu Cymophorina Krikken, 1984
Subtribu Genuchina Krikken, 1984
Subtribu Goliathopsidina Krikken, 1984
Subtribu Heterogeniina Krikken, 1984
Subtribu Lissogeniina Krikken, 1984
Subtribu Macromina Burmeister and Schaum, 1840
Subtribu Nyassinina Krikken, 1984
Subtribu Oplostomina Krikken, 1984
Subtribu Pilinurgina Krikken, 1984
Subtribu Spilophorina Krikken, 1984
Subtribu Telochilina Krikken, 1984
Subtribu Trichoplina Krikken, 1984   
Subtribu Trogodina Krikken, 1984

Tribu Diplognathini Burmeister, 1842

Tribu Goliathini Latreille, 1829

Subtribu Coryphocerina Burmeister, 1842
Subtribu Dicronocephalina Krikken, 1984
Subtribu Goliathina Latreille, 1829
Subtribu Ichnestomatina Burmeister, 1842

Tribu Gymnetini Kirby, 1827

Subtribu Blaesiina Schoch, 1895
Subtribu Gymnetina Kirby, 1827
Tribu Phaedimini Schoch, 1894

Tribu Schizorhinini Burmeister, 1842

Subtribu Lomapterina Burmeister, 1842
Subtribu Schizorhinina Burmeister, 1842

Tribu Stenotarsiini Kraatz, 1880

Subtribu Anochiliina Krikken, 1984
Subtribu Coptomiina Schenkling, 1921
Subtribu Chromoptiliina Krikken, 1984
Subtribu Doryscelina Schenkling, 1921
Subtribu Euchroeina Paulian and Descarpentries, 1982
Subtribu Heterophanina Schoch, 1894
Subtribu Heterosomatina Krikken, 1984
Subtribu Pantoliina Krikken, 1984
Subtribu Parachiliina Krikken, 1984
Subtribu Stenotarsiina Kraatz, 1880

Tribu Taenioderini Mikšic, 1976

Subtribu Chalcotheina Mikšic, 1976
Subtribu Taenioderina Mikšic, 1976

Tribu Trichiini Fleming, 1821

Subtribu Cryptodontina Lacordaire, 1856
Subtribu Incina Burmeister, 1842
Subtribu Osmodermatina Schenkling, 1922
Subtribu Platygeniina Krikken, 1984
Subtribu Trichiina Fleming, 1821

Tribu Valgini Mulsant, 1842

Subtribu Microvalgina Kolbe, 1904
Subtribu Valgina Mulsant, 1842

Tribu Xiphoscelidini Burmeister, 1842


Según Iberfauna, de la Tribu Cetoniini Leach, 1815, tenemos en España ejemplares de las siguientes subtribus

• Subtribu Cetoniina Leach, 1815

• Subtribu Leucocelina Kraatz, 1882

De la subtribu Cetoniina Leach, 1815 podemos encontrarnos los siguientes géneros en la Panínsula Ibérica:

• Género Aethiessa 

• Género Cetonia 

• Género Protaetia 

• Género Tropinota 

y de la Subtribu Leucocelina Kraatz, 1882

• Género Oxythyrea Mulsant, 1842

• Género  Paleira Reiche, 1871

Género Tropinota Mulsant, 1842

El término Tropinota deriva del griego"tropis, -idos" que significa en forma de quilla + "nootos, -ou" que significa dorso o espalda. La palabra hirta deriva del altín "hirtus, -a, -um" que significa, hirto, hirsuto, erizado o velludo.

Tropinota (especie-tipo: Tropinota reyi Mulsant, 1842) agrupa a un total de 11 especies y presenta una distribución general europeo-mediterráneo-turánica, con la mayor diversidad específica en el mediterráneo oriental y oriente medio. La mayoría de los autores admiten tres subgéneros:

Epicometis Burmeister,1842 (especie-tipo: Scarabaeus hirtellus Linnaeus, 1767)
Hemiopta Bedel, 1896 (especie-tipo:Epicometis bleusei Bedel, 1896)
Tropinota.

Según Iberfauna del Genero Tropinota en la Península Ibérica tenemos:
 

• Subgenero Tropinota (Epicometis) 

    Tropinota (Epicometis) hirta (Poda, 1761)
       
        Subspecie Tropinota (Epicometis) hirta hirta (Poda, 1761)

• Subgenero Tropinota (Tropinota)

 
    Tropinota (Tropinota) squalida 
       
        Subspecie Tropinota (Tropinota) squalida squalida


Tropinota hirta (Poda, 1761)

Tropinota (Epicometis) hirta (Poda, 1761) es una especie presente en toda Europa, alcanzando Rusia, Turquía y Oriente Próximo (Baraud, 1992). En Europa occidental y Marruecos la subespecie que encontramos es T. h. hirta (Poda, 1761); existiendo otras tres subespecies admitidas:

• T. h. hirtiformis Reitter, 1913,

• T. h. suturalis Reitter, 1913

• T. h. crispa Petrovitz, 1971

Conocido también como el escarabajo de las flores, ya que el imago se alimenta de polen  y órganos florales de diversas plantas, es un escarabajo de unos 8 a 15 mm de longitud y de color negro o marrón oscuro, densamente cubierto de largos pelos blanquecinos o amarillentos. Su pronoto carece de manchas, mientras que los élitros están salpicados de puntos blancos que a menudo forman cortas líneas en dirección transversal. La superficie de los élitros es accidentada con pequeñas depresiones en forma de puntos o franjas y salientes longitudinales como crestas. Tiene 3 dientes en la tibia de las 2 patas anteriores (lo que la diferencia claramente de Oxythyrea funesta, que tiene dos).

La hembra hace la puesta en el propio suelo, sobre restos de materia orgánica (estiércol y vegetales en descomposición), de lo cual se alimentará la futura larva. La larva mide hasta 20 mm  y posee tres pares de patas torácicas, curvada y de color blanco. Vive en el suelo. La larva tras completar su ciclo pupa. En primavera comienzan a emerger los adultos de forma escalonada y hasta el mes de julio. Permanecerán enterrados en el suelo hasta la primavera siguiente iniciándose de nuevo los daños en el cultivo.

Los imagos macho una vez que consiguen una flor o un posadero, no lo abandonan en días, a la espera de que llegue alguna hembra hambrienta.

Tropinota hirta es menos común que Tropinota scualida.

Se había propuesto que para distinguir la especie de T. squalida es necesario observar el escudete (escutelo), en concreto la distribución de puntos en el mismo. Si la puntuación se concentra en la base es T. squalida, si se reparte por todo el escudete es tropinota hirta. Sin embargo, este criterio parece erróneo y actualmente se ha invalidado como clave para identificación. La densidad y color de los pelos es extremadamente variable en ambas especies de Tropinota y no sirve para identificación.


Género Oxythyrea

Especie tipo: Scarabaeus sticticus Linnaeus, 1767 (= Scarabaeus funestus Poda, 1761)
   
Los miembros de este género son típicamente de aproximadamente 10-15 mm de tamaño, y generalmente de color negro con puntos blancos o líneas en el tórax, el elytra y el abdomen. Cada especie tiene su propio patrón distintivo. Oxythyrea está activo durante el día, y a menudo se encuentran en las flores, de las que se alimentan. Algunas de las especies a menudo se clasifican en un género estrechamente relacionado denominado Leucocelis.

El género contiene las siguientes especies:

• Oxythyrea abigail
• Oxythyrea albopicta
• Oxythyrea cinctella
• Oxythyrea cinctelloides
• Oxythyrea densata
• Oxythyrea dulcis
• Oxythyrea funesta
• Oxythyrea groenbechi
• Oxythyrea guttifera
• Oxythyrea noemi
• Oxythyrea pantherina
• Oxythyrea producta
• Oxythyrea subcalva
• Oxythyrea tripolitana

Oxythyrea funesta (Poda, 1761)

El término Oxythyrea deriva del griego "oxys" que significa, afilado +  el término griego "thyreos", que significa escudo. El apellido de funesta deriva del latín "funestus, -a, -um" que significa fúnebre, desolado.

Oxythyrea funesta es una especie de coleóptero de la familia Scarabaeidae (englobada en la superfamilia escarabeidos), subfamilia Cetoniinae. Se distribuye por el paleártico: Europa central y meridional, Canarias, Magreb y Oriente Medio. Es uno de los coleópteros florícolas más frecuentes en la península Ibérica. Habita claros de bosques, matorrales, zonas de vegetación baja, frutales, jardines, zonas de cultivos.  Vive en lugares cálidos, praderas y lindes de los bosques. En primavera y a principios de verano, Oxythyrea funesta es muy común sobre las flores grandes, como las de las rosáceas y cistáceas, alimentándose de polen, néctar y de los propios órganos florales. Su comportamiento es bruto, con frecuencia destruye las yemas florales de las vides y los árboles frutales.

Es un escarabajo de cuerpo redondeado y aspecto fornido, con la cabeza pequeña y con antenas terminadas en forma de peine que puede mover a voluntad. El tamaño de los adultos es de entre 8 y 12 milímetros. Su cuerpo es negro con reflejos cobrizos o violáceos, puntitos blancos irregulares en el dorso y un recubrimiento de pelos largos y claros que favorecen la polinización y que se irán desgastando con el uso, por lo que los de mayor edad tendrán muchos menos y pequeños. Al volar provoca un zumbido como el de las abejas. Es un insecto fitófago.

La hembra realiza la puesta bajo tierra, donde se desarrollarán las larvas, royendo las raíces de la planta.  Cuando alcanzan los 30 mm de longitud, se transforman en pupa, bajo tierra también.

Este escarabajo puede ser confundida con Epicometis hirta, muy semejante y de la misma longitud. Ambas miden lo mismo y tienen un color semejante. El mejor método para diferenciarlas se encuentra en el número de espinas presentes en las tibias del primer par de patas. En los O. funestas hay dos, mientras que en los E. hirta son tres.

Imagen intrepretada en su día como Oxythyrea funestas(creo imposible saber por la fotografía si es O. Funesta o Tropinota sp, pues no se pueden ver las espinas de las tibias del primer par de patas).

Aparentemente Oxythyrea funesta en una flor de cala. Se aprecian dos espinas en la tibia de la pata anterior izquierda

Imagen del mismo escarabajo en la flor de cala, en este caso se observan "tres espinas" en la tibia de la pata anterior derecha, lo que nos orienta a clasificarlo como Tropinota.

Oxythyrea funesta (se aprecian dos espinas en la tibia de la pata anterior derecha)

Oxythyrea funesta (se aprecian dos espinas en la tibia de la pata anterior izquierda)

Oxythyrea funesta (una pareja en la misma flor, posiblemente macho y hembra. Es curioso como se enlazan con la patita trasera)

Oxythyrea funesta  (en esta imagen no se aprecian bien las espinas de ninguna de las patas anteriores, por  lo que la clasificación por está única imagen sería dificilísima)

Oxythyrea funesta  (al igual que en la imagen anterior, las espinas tibiales de la pata anterior se ven mal, aunque se intuyen solo dos)

Poecilochroa variana

Hoy voy a hablaros de un gnafósido del que hizo fotografías con el tlf de su madre, el pequeño de la casa de 12 años de edad, David.

Los Gnafósidos son un grupo de arañas, por lo que antes de nada, hablaré un poco de la clasificación de las arañas y de los grupos que en ella hacemos.

Las arañas se clasificaron durante mucho tiempo en familias que luego se agruparon en superfamilias, algunas de las cuales a su vez se colocaron en una serie de taxones superiores por debajo del nivel de infraorden. Cuando se aplicaron enfoques más rigurosos, como la cladística, a la clasificación de arañas, quedó claro que la mayoría de las principales agrupaciones utilizadas en el siglo XX no eran compatibles. En el nivel superior, la filogenia de las arañas se discute ahora con nombres informales de clados, como el "clado RTA", el clado "Calmistrum oval" o el clado "Divided Cribellum".Los nombres antiguos que se usaban formalmente anteriormente se usan como nombres de clado, como por ejemplo Entelegynae y Orbiculariae.

Ante todo recordemos que los Araneomorphae Smith, 1902 los dividíamos en dos infraordenes,

• Hypochilae (con solo la familia Hypochilidae)
• Neocribellatae.

Los Neocribellatae podrían dividirse en Austrochiloidea, y los dos clados Entelogynae y Haplogynae (este último no es un grupo monofilético), cada uno contando con sus respectivas superfamilias.

Los Entelegynae se caracterizan por la posesión de 8 ojos, aunque algunas especies tienen 6 ojos y otras no tienen ojos o los tienen de muy reducido tamaño. Es un clado de arañas que engloba arañas cribeladas y arañas sin cribelo.

En el año 2005 se publicó la siguiente clasificación de estas arañas:

Agelenidae Amaurobiidae Ammoxenidae Amphinectidae Anapidae Anyphaenidae Araneidae Archaeidae Chummidae Cithaeronidae Clubionidae Corinnidae Cryptothelidae Ctenidae Cyatholipidae Cybaeidae Cycloctenidae Deinopidae Desidae Dictynidae

Eresidae Gallieniellidae Gnaphosidae Hahniidae Halidae Hersiliidae Holarchaeidae Homalonychidae Huttoniidae Lamponidae Linyphiidae Liocranidae Lycosidae Malkaridae Mecysmaucheniidae Micropholcommatidae Mimetidae Miturgidae Mysmenidae Neolanidae

Nesticidae Nicodamidae Oecobiidae Oxyopidae Palpimanidae Pararchaeidae Philodromidae Phyxelididae Pimoidae Pisauridae Prodidomidae Psechridae Salticidae Selenopidae Senoculidae Sparassidae Stenochilidae Stiphidiidae Symphytognathidae Synaphridae

• Synotaxidae
• Tengellidae
• Tetragnathidae
• Theridiidae
• Theridiosomatidae
• Thomisidae
• Titanoecidae
• Trechaleidae
• Trochanteriidae
• Uloboridae
• Zodariidae
• Zoridae
• Zorocratidae (muchos de sus géneros ahora se incluyen en Udubidae)
• Zoropsidae

10 años despues, en 2015, Jonathan A. Coddington clasifica los Entelegynae en tres grandes grupos:

• Superfamilia Eresoidea C.L. Koch, 1850
• Superfamilia Palpimanoidea
• Clado "Canoe tapetum"

Aunque hay quien agrupa en un solo grupo Eresoidea y Palpimanoidea.

El nombre del clado "canoe tapetum" hace referencia a la forma del tapetum lucidum de los ojos secundarios de estas arañas, es decir, la capa de tejido situada en la retina que actúa como espejo para aumentar la luz que incide en los fotorreceptores y aumentar la visión en condicones de poca luz. Las capas del tapetúm de estas arañas forman un ángulo de 90-100º, dándole forma parecida a la de una canoa.

Tomado de Sensory Perception: Mind and Matter. Editado por Friedrich G. Barth, Patrizia Giampieri-Deutsch, Hans-Dieter Klein

Este clado lo subdividimos a su vez en otros tres grandes grupos

• Orbiculariae
• Familia Nicodamidae Simon, 1897
• Clado "divided cribellum"

El cribelo es un órgano de las arañas que se encuentra delante de las hileras y produce una seda que tiene una estructura similar a la lana, también llamada seda cribelar, la cual se crea a partir de sus fúsculas funcionales. El cribelo es una sinapomorfia del Infraorden Araneomorphae, donde apareció por primera vez como una placa ovalada (Platnick, 1977; Forster et al., 1987). Sin embargo, en algunos araneomorfos el cribelo está dividido medialmente. Es facilmente comprensible que la división del cribellum haya servido como elemento para la lasificación de las arañas.

El clado de arañas con cribelo dividido se subdivide a su vez en dos grupos:

• Titanoecoides
• Clado RTA

El clado RTA se caracteriza por la posesión de una apófisis tibial retrolateral, una proyección dirigida hacia atrás en la tibia del pedipalpo masculino. Este clado contiene más de 21,000 especies, casi la mitad del total actual de alrededor de las 46,000 especies de arañas conocidas. Los miembros de este clado son vagabundos y no construyen redes. Este clado lo subdividimos a su vez en

El Clado Dionycha se caracteriza por tener en el tarso dos garras con mechones de pelos (setas) para facilitar el trepado de la araña. Un análisis de 2014 dio como resultado la clasificación en este clado de unas 20 familias, incluyendo Salticidae, Thomisidae y Clubionidae. La mayoría de las especies de este clado cazan a sus presas en lugar de construir redes y son arañas acribeladas.

Hoy se piensa que la reducción de la tercera garra presente en las arañas ancestrales evolucionó de forma independiente en varios momentos de la historia por lo que no se considera la existencia de las dos garras un criterio que de forma aislada defina el clado.

En 2014, Martín J. Ramírez publicó un importante estudio sobre la filogenia de Dionycha e incluyó a las familias que se enumeran a continuación, donde * significa que la familia puede no ser monofilética o existe alguna otra razón por la cual la inclusión no es directa. Clasificó dos subclados el "clado OMT", caracterizado por la posesión de un tapetum oblicuo, y el "clado CTC", anidado dentro del clado OMT.

Anyphaenidae*

Clubionidae*

Corinnidae*

Eutichuridae

Miturgidae

Philodromidae

Salticidae

Selenopidae

Sparassidae

Thomisidae

OMT clade

Lamponidae

Liocranidae*

CTC clade

Ammoxenidae

Cithaeronidae

Gallieniellidae

Gnaphosidae

Phrurolithidae

Prodidomidae

Trachelidae

Trochanteriidae*

Con respecto a Gnaphosoidea, según las forma de las hileras se ha diferenciado a los Prodidomidae, Lamponidae y Gnaphosidae que han sido considerados "gnaphosoides superiores"de los "gnaphosoids inferiores", Ammoxenidae, Cithaeronidae, Gallieniellidae y Trochanteriidae.

Así pues, Gnaphosoidea se considera una superfamilia constituida por siete familias de arañas con ocho ojos:

• Ammoxenidae: 4 géneros, 18 especies
• Cithaeronidae: 2 géneros, 7 especies
• Gallieniellidae: 11 géneros, 57 especies
• Gnaphosidae: 117 géneros, 2128 especies
• Lamponidae: 23 géneros, 192 especies
• Prodidomidae: 30 géneros, 303 especies
• Trochanteriidae: 19 géneros, 152 especies

Un estudio de 2014 de las arañas pertenecientes al clado Dionycha no evidencia a Gnaphosoidea como un grupo monofilético, sino que lo subdivide en familias (Gnaphosidae, Prodidomidae, Liocranidae, Trachelidae y Phrurolithidae), para formar parte de un clado más grande.

Según Iberfauna que sigue otra clasificación no cladística, la familia Gnaphosidae se encuentra clasificada dentro de la Superfamilia Heteropodoidea Thorell, 1873, dentro de la cual podemos encontrar en la península Ibérica las siguientes familias más

• Familia Clubionidae
• Familia Corinnidae
• Familia Eutichuridae
• Familia Heteropodidae
• Familia Liocranidae
• Familia Miturgidae
• Familia Prodidomidae
• Familia Selenopidae
• Familia Sparassidae
• Familia Zodariidae
• Familia Zoridae
• Familia Zoropsidae

La familia Gnaphosidae Pocock, 1898

El término Gnaphosidae: deriva del griego “grapheys, -eo” que significa cardador, batanero.

Los gnafósidos son una familia de arañas araneomorfas de colores oscuros (pardos o ngeros) con hileras tubulares considerablemente largas. El prosoma de los gnafósidos suele ser ancho en su parte anterior, aunque hay excepciones. Los ojos se colocan formando dos líneas siendo los ojos anteriores oscuros y los posteriores nacarados; los jos medianos posteriores pueden ser ovalados, triangulares o estrechos y alargados. El caparazón es ancho en su parte anterior en la mayoría de los géneros, si bien puede ser puntiagudo en otros. El abdomen es estrechamente ovalado y bastante puntiagudo en su parte posterior. Puede estar uniformemente coloreado y de aspecto brillante o presentar un dibujo de manchas blancas. Las patas son de longitud media, bastante robustas en algunos géneros y con pocas espinas. A menudo presentan pubescencia y escópulas en los segmentos apicales. Las hileras anteriores son prominentes, tubulares y ampliamente separadas en su base.

Se diferencian de los a menudo semejantes Clubiónidos principalmente por las hileras cilíndricas, que en posición de reposo están dispuestas paralelamente o se abren oblicuamente como unos dedos. Por lo demás, a menudo los ojos centrales posteriores no son redondos sinó angulados u ovales. Entre nosotros se encuentran unas 100 especies, en muchos casos difíciles de distinguir.

La mayoría de las especies de esta familia son nocturnas y durante el día pueden encontrarse dentro de su nido de seda, debajo de piedras o entre detritos en lugares secos. Son casi todas adultas en los primeros meses del año. Los machos construyen sus nidos cerca de los de las hembras subadultas y se aparean con ellas inmediatamente después de que han mudado. Los encuentros subsiguientes de los dos sexos pueden dar por resultado la cópula con pocos signos visibles de cortejo, excepto un pequeño rozamiento de las patas. Una vez que ha culminado el apareamiento, los machos se alejan a cierta velocidad. Las hembras construyen sus puestas en verano; los huevos están contenidos en un saco de paredes gruesas que está ubicado en el nido. La madre permanece junto al saco hasta que eclosionan las crías.

Se reconocen los siguientes géneros dentro de esta familia:

Allomicythus Ono, 2009

Allozelotes Yin & Peng, 1998

Amazoromus Brescovit & Höfer, 1994

Amusia Tullgren, 1910

Anagraphis Simon, 1893

Aneplasa Tucker, 1923

Anzacia Dalmas, 1919

Aphantaulax Simon, 1878

Apodrassodes Vellard, 1924

Apodrassus Chamberlin, 1916

Apopyllus Platnick & Shadab, 1984

Aracus Thorell, 1887

Arauchemus Ott & Brescovit, 2012

Arboricaria Bosmans, 2000

Asemesthes Simon, 1887

Asiabadus Roewer, 1961

Australoechemus Schmidt & Piepho, 1994

Benoitodes Platnick, 1993

Berinda Roewer, 1928

Berlandina Dalmas, 1922

Cabanadrassus Mello-Leitão, 1941

Callilepis Westring, 1874

Camillina Berland, 1919

Canariognapha Wunderlich, 2011

Ceryerda Simon, 1909

Cesonia Simon, 1893

Chatzakia Lissner & Bosmans, 2016

Civizelotes Senglet, 2012

Cladothela Kishida, 1928

Coillina Yin & Peng, 1998

Coreodrassus Paik, 1984

Cryptodrassus Miller, 1943

Cubanopyllus Alayón & Platnick, 1993

Diaphractus Purcell, 1907

Drassodes Westring, 1851

Drassodex Murphy, 2007

Drassyllus Chamberlin, 1922

Echemella Strand, 1906

Echemographis Caporiacco, 1955

Echemoides Mello-Leitão, 1938

Echemus Simon, 1878

Eilica Keyserling, 1891

Encoptarthria Main, 1954

Epicharitus Rainbow, 1916

Fedotovia Charitonov, 1946

Gertschosa Platnick & Shadab, 1981

Gnaphosa Latreille, 1804

Haplodrassus Chamberlin, 1922

Hemicloea Thorell, 1870

Herpyllus Hentz, 1832

Heser Tuneva, 2004

Hitobia Kamura, 1992

Homoeothele Simon, 1908

Hongkongia Song & Zhu, 1998

Hypodrassodes Dalmas, 1919

Ibala Fitzpatrick, 2009

Intruda Forster, 1979

Kaitawa Forster, 1979

Kishidaia Yaginuma, 1960

Ladissa Simon, 1907

Laronius Platnick & Deeleman-Reinhold, 2001

Latonigena Simon, 1893

Leptodrassex Murphy, 2007

Leptodrassus Simon, 1878

Leptopilos Levy, 2009

Litopyllus Chamberlin, 1922

Macarophaeus Wunderlich, 2011

Matua Forster, 1979

Megamyrmaekion Reuss, 1834

Micaria Westring, 1851

Microdrassus Dalmas, 1919

Microsa Platnick & Shadab, 1977

Micythus Thorell, 1897

Minosia Dalmas, 1921

Minosiella Dalmas, 1921

Montebello Hogg, 1914

Nauhea Forster, 1979

Neodrassex Ott, 2012

Nodocion Chamberlin, 1922

Nomisia Dalmas, 1921

Nopyllus Ott, 2014

Notiodrassus Bryant, 1935

Odontodrassus Jézéquel, 1965

Orodrassus Chamberlin, 1922

Parabonna Mello-Leitão, 1947

Parasyrisca Schenkel, 1963

Phaeocedus Simon, 1893

Poecilochroa Westring, 1874

Pseudodrassus Caporiacco, 1935

Pterotricha Kulczyński, 1903

Pterotrichina Dalmas, 1921

Sanitubius Kamura, 2001

Scopoides Platnick, 1989

Scotocesonia Caporiacco, 1947

Scotognapha Dalmas, 1920

Scotophaeus Simon, 1893

Sergiolus Simon, 1892

Sernokorba Kamura, 1992  

Setaphis Simon, 1893

Shaitan Kovblyuk, Kastrygina & Marusik, 2013

Shiragaia Paik, 1992

Sidydrassus Esyunin & Tuneva, 2002

Smionia Dalmas, 1920

Sosticus Chamberlin, 1922

Symphanodes Rainbow, 1916

Synaphosus Platnick & Shadab, 1980

Talanites Simon, 1893

Talanitoides Levy, 2009

Titus O. Pickard-Cambridge, 1901

Trachyzelotes Lohmander, 1944

Trephopoda Tucker, 1923

Trichothyse Tucker, 1923 

Turkozelotes Kovblyuk & Seyyar, 2009

Urozelotes Mello-Leitão, 1938

Vectius Simon, 1897

Verita Ramírez & Grismado, 2016

Xenoplectus Schiapelli & Gerschman, 1958

Xerophaeus Purcell, 1907

Xizangia Song, Zhu & Zhang, 2004

Zelanda Özdikmen, 2009

Zelominor Snazell & Murphy, 1997

Zelotes Gistel, 1848

Zelotibia Russell-Smith & Murphy, 2005

Zelowan Murphy & Russell-Smith, 2010

Zimiromus Banks, 1914

 

Y los siguientes géneros extintos:

†Captrix Petrunkevitch, 1942

†Drassyllinus Wunderlich, 1988

†Eognaphosops Wunderlich, 2011

†Eomactator Petrunkevitch, 1958

†Palaeodrassus Petrunkevitch, 1922

†Zelotetis Wunderlich, 2011

Poecilochroa Westring, 1874

Desde el 2017 se reconocen las siguientes especies dentro de este género

 

Poecilochroa albomaculata (Lucas, 1846)

Poecilochroa alcala Barrion & Litsinger, 1995

Poecilochroa anomala (Hewitt, 1915)

Poecilochroa antineae Fage, 1929

Poecilochroa barmani Tikader, 1982

Poecilochroa behni Thorell, 1891

Poecilochroa bifasciata Banks, 1902

Poecilochroa capensis Strand, 1909

Poecilochroa carinata Caporiacco, 1947

Poecilochroa dayamibrookiana Barrion & Litsinger, 1995

Poecilochroa devendrai Gajbe & Rane, 1985

Poecilochroa faradjensis Lessert, 1929

Poecilochroa furcata Simon, 1914

Poecilochroa golan Levy, 1999

Poecilochroa haplostyla Simon, 1907

Poecilochroa incompta (Pavesi, 1880)

Poecilochroa insularis Kulczyński, 1911

Poecilochroa involuta Tucker, 1923

Poecilochroa joreungensis Paik, 1992

Poecilochroa latefasciata Simon, 1893

Poecilochroa loricata Kritscher, 1996

Poecilochroa malagassa Strand, 1907

Poecilochroa parangunifasciata Barrion & Litsinger, 1995

Poecilochroa patricia (Simon, 1878)

Poecilochroa pauciaculeis Caporiacco, 1947

Poecilochroa perversa Simon, 1914

Poecilochroa phyllobia (Thorell, 1871)

Poecilochroa pugnax (O. Pickard-Cambridge, 1874)

Poecilochroa rollini Berland, 1933

Poecilochroa sedula (Simon, 1897) 

Poecilochroa senilis (O. Pickard-Cambridge, 1872)

Poecilochroa senilis auspex (Simon, 1878)

Poecilochroa taborensis Levy, 1999

Poecilochroa taeguensis Paik, 1992

Poecilochroa tikaderi Patel, 1989

Poecilochroa tridotus Caleb & Mathai, 2013

Poecilochroa trifasciata Mello-Leitão, 1918

Poecilochroa variana (C. L. Koch, 1839)

Poecilochroa viduata (Pavesi, 1883)

Poecilochroa vittata Kulczyński, 1911

En la península Ibérica podemos ver solamente las siguientes: Poecilochroa albomaculata Poecilochroa conspicua Poecilochroa furcata Poecilochroa senilis Poecilochroa variana

Poecilochroa variana (C. L. Koch, 1839)

Son sinónimos de esta especie: Drassus nigrofemuratus, Drassus varianus, Gnaphosa variana, Melanophora variana y Pythonissa variana

 

Poecilochroa variana

Las hembras son un poco mas grandes que los machos (8 mm frente a 6 mm). El abdomen es de color negro, mate. En el dorso presenta algunas manchas de pelos blancos muy densos: una mancha anterior arqueada y dos transversales en la parte media que pueden ser interpretadas como una línea transversal interrumpida, y una mancha mas pequeña en la parte terminal. El caparazón es castaño rojizo oscuro con una banda central longitudinal de pelos blancos y alguna manchas en los márgenes. Las patas son de color castaño rojizo con los fémures de color negro y están cubiertas de pelos blancos mas numerosos en las patas posteriores.

Poecilochroa variana

* En esta imagen se aprecia como la araña tiene el abdomen y las hileras cubiertas con una capa de seda. Probablemente sea parte del nido en el que la araña se encontraba refugiada bajo alguna piedra o la tierra.