Género Polydius Dejean, 1821

Hoy bajaremos de nuevo la escalera taxonómica hasta el Infraorden cucujiformia como hicimos ya en otras ocasiones:

Reino:  Animalia 
Superfilo:  Panarthropoda 
Filo:  Arthropoda 
Subfilo:  Pancrustacea 
Infrafilo:  Atelocerata 
Superclase:  Hexapoda 
Classe:  Insecta 
Subclase:  Dicondylia 
Infraclase:  Pterygota 
Orden:  Coleoptera 
Suborden:  Polyphaga 
Infraorden:  Cucujiformia 

para entrar de lleno en un grupo de coleópteros polífagos  con especies que en su gran mayoría son comedoras de plantas, incluyendo hojas, semillas, polen, madera, detritos, etc  y que tiene 6 superfamilias

• Superfamilia  Chrysomeloidea
• Superfamilia Cleroidea
• Superfamilia Cucujoidea
• Superfamilia Curculionoidea
• Superfamilia Lymexyloidea
• Superfamilia Tenebrionoidea

A nosotros nos interesa la Superfamilia Curculionoidea que sabemos que contiene más de 60.000 especies. Esta superfamilia la subdividimos en:

1)  Orthoceri o gorgojos primitivos: Anthribidae, Attelabidae, Belidae, Brentidae, Caridae y Nemonychidae

2) Gonatoceri o “verdaderos gorgojos” (Familia Curculionidae)

Los curculiónidos o verdaderos gorgojos tienen una filogenia compleja, con más de 40 000 especies, pero se aceptan universalmente las siguientes subfamilias:

• Subfamilia Baridinae
• Subfamilia Cossoninae
• Subfamilia Curculioninae
• Subfamilia Cyclominae
• Subfamilia Entiminae
• Subfamilia Molytinae
• Subfamilia Platypodinae
• Subfamilia Scolytinae.

La subfamilia Entiminae contiene a la mayoría de los gorgojos con probóscide corta y de importancia para el agricultor porque muchos de ellos son considerados plagas. Dentro de esta Subfamilia tenemos las siguientes tribus:

•Tribu Agraphini
•Tribu Alophini
•Tribu Anomophthalmini
•Tribu Anypotactini
•Tribu Blosyrini
•Tribu Brachyderini
•Tribu Celeuthetini
•Tribu Cneorhinini
•Tribu Cratopini
•Tribu Cylydrorhinini
•Tribu Cyphicerini
•Tribu Dermatodini
•Tribu Ectemnorhinini
•Tribu Elytrurini
•Tribu Embrithini
•Tribu Entimini
•Tribu Episomini
•Tribu Eudiagogini
•Tribu Eupholini
•Tribu Eustylini
•Tribu Geonemini
•Tribu Holcorhinini
•Tribu Hormorini
•Tribu Hyperini
•Tribu Laparocerini
•Tribu Leptostethini
•Tribu Lordopini
•Tribu Mesostylini
•Tribu Myorhinini
•Tribu Nastini
•Tribu Naupactini
•Tribu Nothognathini
•Tribu Omiini
•Tribu Oosomini
•Tribu Ophryastini
•Tribu Ophtalmorrhynchini
•Tribu Otiorhynchini
•Tribu Ottistirini
•Tribu Pachyrhynchini
•Tribu Peritelini
•Tribu Phyllobiini
•Tribu Polycatini
•Tribu Polydrosini
•Tribu Premnotrypini
•Tribu Pristorhynchini
•Tribu Prypnini
•Tribu Psallidiini
•Tribu Rhyncogonini
•Tribu Sciaphilini
•Tribu Sitonini
•Tribu Tanymecini
•Tribu Tanyrhynchini
•Tribu Thecesternini
•Tribu Trachyphloeini
•Tribu Tropiphorini
•Tribu Typhlorhinini

A nosotros hoy nos interesa la Tribu Cneorhinini Lacordaire, 1863 que contiene los siguientes géneros:

Género Acherdus
Género Analeurops
Género Anaptoplus
Género Ansorus 
Género Ascopus
Género Attactagenus
Género Bletonius
Género Catapionus
Género Cneorhinus
Género Cneorrhinicollis
Género Ectatopsides
Género Embolodes
Género Eucrines
Género Euonychus
Género Fleurops
Género Formanekia
Género Gypopnychus
Género Haplocopes
Género Heydeneonymus
Género Leptolepurus
Género Leurops
Género Mestorus
Género Mimaulus
Género Mutocneorrhinus
Género Nodierella
Género Oenassus
Género Omotrachelus
Género Philetaerobius
Género Philopedon
Género Polydius
Género Pomphoplesius
Género Pomphus
Género Proictes
Género Protostrophus
Género Pseudoblosyrus
Género Pseudoneliocarus
Género Pseudopantomorus
Género Pseudoproictes
Género Pseudoscolochirus
Género Pseuonyx
Género Rhadinocopes
Género Scolochirus
Género Synaptocephalodes
Género ynaptocephalus
Género Tanysomus

Género Polydius Dejean, 1821

Sinonimia:  Lacordaireus Desbrochers, 1875; Tretinus Jekel, 1875 y Tretinus Bedel, 1883

El género Cneorhinus Schönherr, 1823 fue creado por Charles BRISOUT DE BARNEVILLE en 1869 y en 1875 DESGROCHERS crea el subgénero Lacordaireus.  

En 1871 GEMMINGER & H AROLD (1871), en su catálogo de Curculionidae, modificaron la ortografía del género Cneorhinus doblando el r (Cneorrhinus), pero mas tarde de nuevo es desposeído de su segunda r para seguir la ortografía utilizada por SCHÖNHERR en sus obras. 

BEDEL propone en 1883 el nombre de Tretinus Bedel en lugar de Lacordaireus para tener en cuenta la homonimia de Lacordaireus Desbrochers, 1875, con Lacordairius Brisout, 1866 (sinónimo de Trachyphloeus Germar). Esta propuesta fue adoptada por A. ROUDIER en su revisión del subgénero Tretinus en 1961.

El subgénero Lacordaireus Desbrochers fue luego separado del género Cneorhinus y ALONSO - ZARAZAGA  en 1988 lo hace sinónimo de Polydius Dejean, 1821, en su catálogo global de familias y tipos de Curculionoidea.

Las especies  y Subepecies de este género Polydius Dejean, 1821  que podemos encontrar en el área Ibero-Balear son las siguientes:

• Polydius bellieri (Brisout, Ch., 1869)

    Polydius bellieri bellieri (Brisout, Ch., 1869)
    Polydius bellieri mirei (Hoffmann, 1965)

• Polydius heydeni (Tournier, 1874)

    Polydius heydeni grandis (Stierlin, 1887)
    Polydius heydeni heydeni (Tournier, 1874)

• Polydius hispanus (Herbst, 1797)

    Polydius hispanus hispanus (Herbst, 1797)
    Polydius hispanus lepesmei (Roudier, 1961)
    Polydius hispanus ludificator (Gyllenhal, 1833)

• Polydius prodigus (Fabricius, 1798)

    Polydius prodigus biungulatus (Roudier, 1961)
    Polydius prodigus roudieri (Viedma, 1965)

Polydius sp

  

Polydius sp

Polydius sp

 Polydius sp

 Polydius sp

 Polydius sp

 Polydius sp

Polydius sp

Chyromya flava

De nuevo a vueltas con una diminuta mosca braquícera, esta vez de la Familia Chyromidae. Por lo tanto, de entrada podemos decir lo siguiente:

Orden: Díptera
Suborden: Brachycera
Infraorden: Muscomorpha
Sección: Schizophora
Subseccción: Acalyptratae
Superfamila: Sphaeroceroidea
Familia: Chyromyidae

La superfamilia Sphaeroceroidea contiene tres familias: Sphaeroceridae (1550 especies), Heleomyzidae (~ 720 especies), y la pequeña familia Chyromyidae. La enigmática afrotropical Mormotomyia hirsuta Ausdiez, 1936 fue clasificada como Sphaeroceridae pero ahora se la engloba dentro de la Superfamilia Ephydroidea (también llamada Drosophiloidea). Hay quien incluye otras dos: Nannodastiidae y Mormotomyiidae (normalmente incluida en Hippoboscoidea con Glossinidae, Nycteribiidae y Streblidae)

En el Manual of Nearctic Diptera, Volume 3, McAlpine (1989) propone el siguiente árbol

Mas tarde, en el 20017 McAlpine propuso unificar Sphaeroceridae y Heleomyzidae en una sola familia a la que llamó Heteromyzidae.

Los Chyromyidae se clasifican hoy la mayoría de las veces dentro de  Heleomyzidaea. La familia está representada en todos los continentes, excepto en la Antártida. Hay alrededor de unas 180 especies de esta familia en todo el mundo.

La mayoría de estas moscas tiene un tegumento de color amarillo pálido y brillantes e iridiscentes ojos verdes, rojos o morados. Las alas son hialinas.

La biología de Chyromyidae es poco conocida y no se ha dilucidado completamente el ciclo vital de ninguna especie. Los adultos son xerofílicos y se han recolectado en plantas con flores. Existe cierta asociación con los nidos de pájaros y mamíferos, aunque la naturaleza de esta asociación no está clara. Algunas especies se crían a partir de guano y estiércol, en huecos de árboles y nidos de pájaros y mamíferos.

La Familia Chyromyidae cuenta con 4 géneros:
   

• Género Aphaniosoma Becker, 1903
• Género Chyromya Robineau-Desvoidy, 1839
• Género Gymnochiromyia Hendel, 1933
• Género Somatiosoma

El género Chyromya se caracteriza por la presencia de 10 a 12 setulas (pelos cortos) y 4 largas setas marginales en el escutelo. Los otros géneros tienen un escutelo desnudo con 4 a 6 setas marginales.

En la Península ibérica de Chyromya Robineau-Desvoidy, 1830 tenemos las siguientes especies:

• Chyromya apicalis
• Chyromya femorella
• Chyromya flava
• Chyromya miladae
• Chyromya robusta

Chyromya flava

 Chyromya flava

Chyromya flava

Mylabris quadripunctata

Después de presentar al escarabajo de la patata, vengo de nuevo con otro coleóptero polífago del Infraorden Cucujiformia y Superfamilia Tenebrionoidea.

Como he mencionado varias veces esta superfamilia incluye las siguientes familias:

• Aderidae Winkler, 1927
• Anthicidae Latreille, 1819
• Archeocrypticidae Kaszab, 1964
• Boridae C. G. Thomson, 1859
• Chalcodryidae Watt, 1974
• Ciidae Leach, 1819
• Colydiidae Erichson, 1842
• ndryidae Leach, 1815
• Meloidae Gyllenhal, 1810
• mmatidae Blanchard, 1845
• Mordellidae Latreille, 1802
• Mycetophagidae Leach, 1815
• Mycteridae Blanchard, 1845
• Oedemeridae Latreille, 1810
• Perimylopidae St. George, 1939
• Prostomidae C. G. Thomson, 1859
• Pterogeniidae Crowson, 1953
• Pyrochroidae Latreille, 1807
• Pythidae Solier, 1834
• Ripiphoridae Gemminger and Harold, 1870
• Salpingidae Leach, 1815
• Scraptiidae Mulsant, 1856
• Stenotrachelidae C. G. Thomson, 1859
• Synchroidae Lacordaire, 1859
• Tenebrionidae Latreille, 1802
• Tetratomidae Billberg, 1820
• Trachelostenidae Lacordaire, 1859
• Trictenotomidae Blanchard, 1845
• Ulodidae Pascoe, 1869
• Zopheridae Solier, 1834

La Familia Meloidae Gyllenhal, 1810 tiene 64 especies en la península Ibérica y Baleares, agrupadas en 18 géneros pertenecientes a las dos subfamilias —Meloinae Gyllenhal, 1810 y Nemognathinae Cockerell, 1910— representadas en la región paleártica.

De la Subfamilia Meloinae hay descritas unas 330 especies  clasificadas en las siguientes tribus:

• Tribu Cerocomini Leach, 1815
• Tribu Epicautini
• Tribu Eupomphini
• bu Lyttini
• Tribu Meloini
•  Mylabrini
• Tribu Pyrotini

La taxonomía interna de la tribu Mylabrini, al igual que la de otros grupos de Meloidae, se basaba en buena medida en el diseño elitral, carácter extremadamente variable a nivel intra- e interespecífico, lo que generó numerosas confusiones entre especies y errores arrastrados en la bibliografía. Pardo Alcaide (1948) inició la revisión crítica de este grupo de Mylabris, con la exploración de rasgos hasta el momento ignorados en la sistemática del género,como la morfología de la placa mesosternal, la conformación de las tibias anteriores de los machos y la genitalia masculina.


Los Géneros que hay en Europa de esta Subfamilia  Meloinae son:

• Actenodia Laporte de Castelnau 1840
• Alosimus Mulsant 1857
• Berberomeloe Bologna 1989
• abalia Mulsant & Rey 1858
• Croscherichia Pardo Alcaide 1950
• Cerocoma Geoffroy 1762
• Epicauta Dejean 1834
• Hycleus Latreille 1817
• Lagorina Mulsant & Rey 1858
• Lydus Dejean 1821
• Lytta Fabricius 1775
• Meloe Linnaeus 1758
• Muzimes Aksentjev 1988
• Mylabris Fabricius 1775
• Oenas Latreille 1802
• Physomeloe Reitter 1911
• Semenovilia Kuzin 1954
• Teratolytta Semenov 1894
• Trichomeloe Reitter 1911

El género Mylabris perteneciente a la Tribu Mylabrini fue descrito por el entomólogo Danés Johan Christian Fabricius en 1775. Tiene una distribución fundamentalmente paleártica, aunque con intrusiones en zonas de transición a la región Oriental, albergando alrededor de 170 especies distribuidas en 12 subgéneros. En la fauna europea están representados 8 subgéneros, con un total de 43 especies, siendo el subgénero Micrabris Kuzin, 1954 el mejor representado con un total de 18. La fauna ibérica incluye al menos 9 especies del subgénero Micrabris, la mayoría de las cuales son endémicas y presentan áreas de distribución relativamente restringidas.

• Mylabris amori
• Mylabris dejeani
• Mylabris flexuosa
• Mylabris hieracii
• Mylabris impressa
• Mylabris maculosopunctata
• Mylabris nevadensis
• Mylabris oleae
• Mylabris pauper
• Mylabris platai
• Mylabris quadripunctata
• Mylabris schreibersi
• Mylabris sobrina
• Mylabris tricincta
• Mylabris uhagoni
• Mylabris variabilis
• Mylabris varians

Este género se extiende por otras zonas del paleártico como el norte de África y Asia, hasta el oeste de China.

Los imagos pertenecientes a este género se caracterizan por tener élitros rojos con manchas o bandas negras.  Las antenas son de 11 artejos: el primero más grande; el último cónico, puntiagudo. Terminan arqueadas y tienen la misma longitud que el pronoto. La cabeza está muy inclinada, y es tan ancha como el pronoto. La boca está compuesta de un labio superior un poco indentado, dos mandíbulas comprimidas, arqueadas y casi dentadas hacia el final; dos mandíbulas bífidas, un labio inferior indentado y cuatro antenas truncadas filiformes. Las cuatro patas anteriores son de 5 artejos y las dos posteriores de 4 (fórmula tarsal 5-5-4). Tienen un ciclo biológico muy complejo. Se alimentan durante la fase larvaria de huevos y larvas de saltamontes.

Se distinguen los siguientes Subgéneros: Chalcabris, Eumylabris, Mesosulcata, Micrabris, Mylabris s. str. Y Zitunabris

Mylabris quadripunctata (Linnaeus, 1767)

Sinónimo: Meloe quadripunctata Linné, 1767

La palabra Mylabris deriva del griego “mylabris” que era como se denominaba a un escarabajo de los molinos de harina o de panaderías. Según Arístófanes este era un insecto o cucaracha blando.

La palabra quadripunctata deriva del latín “quadratus, -i” que significa cuadrado  y “punctus, -a, -um” que significa punto; este término a su vez es derivado de “pungo, pungere” verbo que significa picar, taladrar.

Mylabris quadripunctata es una especie común en el sur de Europa, incluyendo la Península Ibérica. Frecuentan las praderas con flores y los bordes de los caminos soleados, puesto que se alimentan de polen y hojas y brotes tiernos.

Su tamaño oscila entre los 13 y 16 milímetros. Los élitros son rojos y tienen cada uno 4puntos negros de tamaño y forma variables, y una banda terminal también negra. El cuerpo es negro brillante.

Vuelan entre junio y octubre.  

Las hembras depositan los huevos en tierra, en las proximidades de una ooteca de ortóptero. Una vez eclosionada, la larva penetra en la ooteca y se nutre de los huevos y las larvas. El resto de las etapas del desarrollo las pasan inmóviles al sol.

Hay una subespecie llamada Mylabris quadripunctata mesoasiatica.





Rhadiurgis variabilis

Presentaré hoy otro asílido, en este caso de la Subfamilia Asiliinae, que observe este Julio enfrente de casa.

Recordemos que la Subfamilia Asilinae se divide en tribus, siendo una de ellas la Tribu Asilini que contiene los siguientes géneros:

• Género Asilus
• Género Dicropaltum
• Género Eccritosia
• Género Efferia
• Género Machimus
• Género Mallophora
• Género Negasilus
• Género Neoitamus
• Género Philonicus Loew, 1849
• Género Polacantha
• Género Proctacanthella
• Género Proctacanthus
• Género Prolatiforceps
• Género Promachella
• Género Promachus
• Género Rhadiurgus 

El Género Rhadiurgus

En su "insecta Laponicum", Zettersted (1838) describió a Asilus variabilis, una mosca asesina del bosque de coníferas Escandinavo. Denominó a la especie variabilis debido a la gran variación observada en la proporción de setas blancas y negras del mystax. Posteriormente Loew (1849) dividió Asilidae en varios géneros y colocó de forma aislada a A. variabilis en uno que llamó Rhadiurgus. Estableció como rasgos diferenciadores de este género una cara negra y brillante y los genitales, distintivos de ambos sexos. También señaló que su rango de distribución abarcaba todo el norte de Europa y Asia, y que prefería los hábitats de montaña a las tierras bajas, al menos en las partes meridionales de su área de distribución.

Hine (1908) describió a Nigrasilus nitidifacies, en las montañas del sudoeste de la Columbia Británica, Canadá. Su descripción es claramente la de un insecto muy similar a Rhadiurgus variabilis. Hine planteó un género monotípico para su especie, aunque estaba familiarizado con la clasificación de las moscas asesinas que había hecho Loew. Posteriormente, en su monografía sobre las moscas asesinas norteamericanas (sensu lato), Hine (1909) incluyó a N. nitidifacies en un subgénero  monotípico que denominó Nigrasilus.

Desde entonces hubo quienes ya hicieron a Rhadiurgus y Nigrasilus sinónimos. Tanto Curran (1934) como Wood (1981) citan Rhadiurgus en lugar de Nigrasilus en sus claves para los géneros norteamericanos de moscas asesinas, aunque la mayoría de los trabajos (por ejemplo, Baker y Fischer 1975, Martin y Wilcox 1965) hablan de Nigrasilus. G. C. Wood observó que, a pesar de la implicación en su clave (Wood 1981), no había hecho sinónimos a los dos géneros, pero ese problema lo solucionó Robert A. Cannings en un estudio publicado en The Canadian Entomologist en 1993

El género Rhadiurgus contiene dos especies de forma clara: R. variabilis, especie holoartica y R. ussuriensis Lehr de la Krai de Primorskiy del Lejano Oriente ruso (Lehr 1981)

Antiguamente se colocaron otras especies en el género Rahdiurgus, pero al parecer todas de forma errónea. En el catálogo de dípteros de América del Norte de Aldrich (1905), Rhadiurgus estuvo representado únicamente por R. leucopogon Williston. Esta especie se transfirió a Poctacanthella Bromley en un catálogo posterior (Martin y Wilcox 1965) en el que el género Rhadiurgus no se incluyó. Asilus cacopilogus Hine también fue colocado en el género Rhadiurgus (Hine 1909) pero también se cambió a Proctacanthella. Hull (1962) enumeró dos especies además de R. variabilis bajo el género Rhadiurgus en su trabajo "world asilid genera", a saber: R. notatus Bigot, una especie africana y R. bifidus (Fabricius) de la India. Hull también incluye el género Nigrasilus en este trabajo. Blaisdale (1957) hace sinónimos R. notatus y Philodicus temerarius Walker. Oldroyd (1975) observó que la ubicación de las especies africanas e indias en el género Rhadiurgus era cuestionable. Finalmente salieron del género Rhadiurgus.

La frons negra y desnuda sobre el mystax de R. variabilis es una autapomorfia, y fue uno de los caracteres de diagnóstico del género; en R. ussuriensis esta área es densamente pruinosa, como es típico en otros géneros relacionados. Sin embargo, las otras apomorfias de Rhadiurgus siguen siendo válidas; Lehr (1981) destaca algunos de estas:

• El ovopositor subcilíndrico no se encuentra en ningún otro género (los géneros relacionados tienen ovopositores lateralmente aplanados).
• Los lóbulos epandriales tienen cada uno un diente dorsal subapical en el margen interno (esta proyección es más prominente en R. variabilis que en R. ussuriensis).
• Las setas en la cara interna del gonostilo están adpresas y orientadas al eje largo del gonostilo, mientras que en otros géneros estas saeta están orientadas perpendicularmente.
• Los pelos del anepisternum (mesopleuron) están bien desarrollados en los márgenes dorsal y anterior; cuando hay setas anepisternas (mesopleurales) en géneros relacionados, están bien desarrolladas al menos en el margen posterior.

Sin un análisis filogenético, las relaciones entre los géneros Rhadiurgus, Machimus Loew (incluido Tolmerus Loew), Antiphrisson Loew, Kytr Lehr y otros no pueden establecerse por completo. Sin embargo, Lehr (1981) considera que Rhadiurgus está estrechamente relacionado con el género Kytr, basándose en apomorfías genéticas. Las especies de Kytr van desde el Medio Oriente hasta Mongolia, justo al sur del rango de Rhadiurgus. La tribu Asilini es más diversa en el Paleártico que en el Neártico; dado sus estrechos vínculos con géneros predominantemente euroasiáticos, Rhadiurgus es probablemente de origen paleártico.


Rhadiurgus variabilis (Zetterstedt, [1838])

Sinónimo: Asilus variabilis Zetterstedt, [1838]

Es una mosca asesina relativamente pequeña de color fundamentalmente gris con patas con zonas negras y marrón rojizas. El área situada justo debajo de los ojos (lo que llamamos frons) es de color negro, brillante, sin pruinosidad y de 0,6 mm de ancho en su punto más estrecho. Rhadiurgus variabilis y R. ussuriensis se separan fácilmente por esta característica: R. ussuriensis, tiene la frons cubierta de una pruinosidad color plata y mide 0,5 mm de ancho. El abdomen es de color Marrón negruzco. El tórax es significativamente más oscuro que el abdomen. Los genitales del macho se distinguen claramente de las especies estrechamente relacionadas.

Rhadiurgus variabilis

La especie vive como depredadora de insectos más pequeños en hábitats secos, generalmente en áreas forestales. En Europa, R. variabilis vive principalmente en áreas arenosas dominadas por pinos y brezos (Hobby 1930, Melin 1923). Melin también lo registró en los bordes del bosque de abetos en Hyloocomium Br. EUR. y en las fronteras interiores de las dunas de la playa. Un hábitat adicional registrado es el valle de Storelven, en Noruega.

El período de vuelo conocido de R. variabilis en Europa se extiende desde principios de junio hasta fines de agosto (Melin, 1923).

Rhadiurgus varibilis por lo general caza desde el suelo o las rocas, pero también se posa sobre hierba. En Europa, Melin (1923) y Hobby (1930) informan algunas especies de presas que representan una amplia variedad de taxones: Blattodea (Blattidae: Ectobius lapponica L.), Neuroptera (Hemerobiidae: Hemerobius L. sp), Lepidoptera (Pyralidae) y Diptera (Empidae: Hybos Meigen sp.). Según Melin (1923), la hembra pone sus huevos de forma aislada en agujas de coníferas caídas al suelo, palos, musgo u otros tallos en el suelo. Los huevos son elípticos alargados y están cementados al soporte de modo que los ejes largos del huevo y soporte son paralelos. Melin describe como las larvas viven en suelo arenoso; la pupación dura alrededor de 22 días.

Thereva sp

Hoy presentaré un díptero del Suborden Brachycera, Infraorden Muscomorpha y Superfamilia Asiloidea.

Ya he hablado con anterioridad de esta Superfamilia de moscas salteadoras o “moscas bravas” como a mi me gusta llamarlas, por lo que simplemente voy a hacer un recordatorio. Las moscas pertenecientes a esta familia, suelen ser moscas fuertes, en muchos casos muy grandes y con fuertes cerdas. La frente está claramente hundida entre los grandes ojos y la probóscide es corta y fuerte. Sobre la probóscide se encuentra un "bigote" formado por largas cerdas. Se alimentan de otros insectos, a los que atrapan en pleno vuelo. En centroeuropa hay unas 100 especies.

La Familia Therevidae es una familia de moscas que en la actualidad se engloba dentro de la Superfamilia Asiloidea, pero es poco conocida. La historia taxonómica de esta familia ha sido revisada repetidamente; en el pasado muchas especies de esta familia estaban asignadas a otras familias diferentes mientras que muchas otras moscas del Suborden Brachycera hoy incluidas en familias diferentes a Therevidae habían sido asignadas a la misma. Desde la década de 1970, gracias a los estudios taxonómicos de Lyneborg e Irwin, basados en las relaciones filogenéticas cladísticas entre varios grupos de Asiloidea, se ha racionalizado la composición de esta familia. Es decir, al inicio la Familia Therevidae era en su composición polifilética, siendo hoy tras las revisiones un clado monofilético denominado clado Therevidae (aunque hablemos en muchas ocasiones del grupo como una Familia). A día de hoy se conocen unas 1.600 especies formando parte del clado y las clasificamos gracias a los trabajos taxonómicos de Lyneborg (1976) y Winterston y colaboradores (2001) en cuatro Subfamilias:

• Subfamilia Agapophytinae:  incluye 12 géneros
• Subfamilia Phycinae: incluye 13 géneros
• Subfamilia Therevinae: incluye  84 géneros
• Subfamilia Xestomyzinae:  incluye 12 géneros

A estos 121 géneros hay que añadir géneros ya extintos que datan del Cenozoico, como son  Dasystethos, Glaesorthactia , Kroeberiella, y Palaeopherocera. Posiblemente también Helicorhaphe.

En Europa, solo se pueden encontrar :

• Subfamilia Phycinae, con dos géneros
• Subfamilia Therevinae, con 15 géneros

Los Therevidae están representados en todas las regiones zoogeográficas de la Tierra, estando presentes en todos los continentes, aunque con menor frecuencia en la región oriental.

Los Therevidae adultos son de tamaño pequeño a mediano con una longitud corporal de 2.4 a 18 mm y un tegumento peludo. El color varía desde el marillo al negro. Los machos tienen unos grandes ojos compuestos siendo en muchas especies holópticos mientras que los de las hembras sondiópticos. Tienen tres ocelos y unas antenas relativamente cortas. El escapo es alargado, el pedicelo muy corto y ambos son pubescentes. El primer flagelómero es cónico y alargado. El apex tiene un estilete de uno a tres segmentos. A diferencia de Asilidae, el labium de los Therevidae no es un órgano depredador y penetrante, sino que termina en dos labios  carnosos adaptados a la succión de alimentos líquidos. Otra diferencia es que, aunque Therevidae posee setas esponjosas por encima de las piezas bucales, las cerdas no son rígidas, como las de la mayoría de las especies de Asilidae. Además,  la depresión que hay entre los ojos en el apex tienden a ser más obvia en ASilidae que Therevidae. El tórax es ancho y moderadamente convexo, con cerdas largas (macrotrichae).El abdomen generalmente es alargado y cónico, típicamente de 3 a 4 veces más largo que ancho. Se pueden observar externamente ocho segmentos abdominales (uriti). Las patas son largas y delgadas, con fémur y tibia con cerdas; las tibias no tienen espolones apicales. Los tarsos tienen dos almohadillas. Las alas están bien desarrolladas, son hialinas u opacas, a menudo con pigmentación de las venas localizadas al final de las venas transversales y longitudinales. La venación de las alas es de la siguiente forma:

Se alimentan fundamentalmente de néctar, miel y polen, aunque en ocasiones también lo hacen de secreciones de origen animal o vegetal. Se encuentran en diversos ambientes y se como en arroyos, prados, bosques abiertos, o como muchos otros Asiloidea, en lugares secos y arenosos o en playas. Aunque habitan en regiones semiáridas, o posiblemente por esa razón, se sienten especialmente atraídos por el agua y, en general, permanecen cerca de las fuentes de humedad. En reposo, eligen diversos sustratos según la especie: algunas especies descansan en el suelo, otras en rocas, vegetación o restos intermareales. Son diurnos y se mueven en vuelos cortos y rápidos.

Las larvas son depredadores de otras larvas de insectos en el suelo y sus ecosistemas preferidos son matorrales de plantas xerófilas en desiertos y en playas arenosas. Son ápodas y con una cabeza cilíndrica, muy larga y delgada; los extremos son cónicos. La epidermis es lisa, blanca o rosa. Cuando se las expone a la luz se entierran rápidamente en el sustrato.

Tienen un ciclo vital poco conocido y de duración de un año, aunque hay especies en Europa que tienen ciclos de dos o mas años de duración.

Los géneros incluidos en la Subfamilia Therevinae son:

• Género Acrosathe Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Ammonaios Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Arenigena Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Brachylinga Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Breviperna Irwin, 1977
• Género Chromolepida Cole, 1923
• Género Cyclotelus Walker, 1850
• Género ialineura
• Género Dichoglena
• Género Litolinga Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Lysilinga Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Megalinga
• Género Melanothereva
• Género Nebritus Coquillett, 1894
• Género Ozodiceromya
• Género Ozodiceromyia
• Género Pandivirilia Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Penniverpa Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Psilocephala
• Género Rhagioforma
• Género Spiriverpa Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Tabuda Walker, 1852
• Género Tabudamima
• Género Thereva Latreille, 1797
• Género Viriliricta

Presentes en la Península ibérica según Iberfauna:

• Género Acrosathe Irwin & Lyneborg, 1981
• Género Chrysanthemyia Becker, 1912
• Género Cionophora Egger, 1854
• Género Cliorismia Enderlein, 1927
• Género Salentia A.Costa, 1857
• Género Thereva Latreille, 1796

El Género Thereva Latreille, 1796 contiene muchas especies, estando presentes en la Península ibérica las siguientes:

• Thereva albovittata Czerny & Strobl, 1909
• Thereva apicalis  Wiedemann, 1921
• Thereva cincta Meigen, 1820
• Thereva cinifera Meigen, 1830
• Thereva circumscripta Loew, 1847
• Thereva fulva(Meigen, 1804)
• Thereva hispanica Czerny & Strobl, 1909
• Thereva laufferi Czerny & Strobl, 1909
• Thereva marginula Meigen, 1820
• Thereva nobilitata (Fabricius, 1775)
• Thereva plebeja (Linnaeus, 1758)
• Thereva spiloptera Wiedemann, 1824
• Thereva spinulosa Loew, 1847
• Thereva tristis Loew, 1847
• Thereva tuberculata Loew, 1847
• Thereva unica (Harris, 1780)

Thereva sp (posiblemente Thereva plebeja)

Machimus contra Calopteryx

Ayer mientras paseaba con el pequeño de la casa éste me avisó de que pasaba volando un insecto extraño, con un vuelo errático. De pronto se posó bruscamente en el suelo, mas bien parecía que caía y fuimos corriendo a ver de que se trataba.

En el suelo yacía un Antiphrisson con la presa que había cazado al vuelo, un Calopteryx.

No hubo tiempo a sacar la fotografía del rápido ataque, pero sí la del atacante y el cadáver abandonado, que muestro a continuación

Atacante

Filo Arthropoda
Subfilo Hexapoda
Clase Insecta
Orden Diptera
Suborden Brachycera
Familia Asilidae
Subfamilia Asilinae

Recordemos que de los asílidos tenemos en la Península Ibérica los siguientes géneros

• Género Aneomochtherus
• Género Antipalus Loew, 1849
• Género Antiphrisson Loew, 1849
• Género Asilus Linnaeus, 1758
• Género Dysmachus Loew, 1860
• Género Dystolmus Lehr, 1996
• Género Eccoptopus Loew, 1860
• Género Engelepogon Lehr, 1992
• Género Epitriptus Loew, 1849
• Género Erax Scopoli, 1763
• Género Eutolmus Loew, 1848
• Género Kurzenkoiellus Lehr, 1995
• Género Machimus Loew, 1849
• Género Machiremisca Lehr, 1996
• Género Neoepitriptus Lehr, 1992
• Género Neoitamus Osten-Sacken, 1878
• Género Neomochtherus Osten-Sacken, 1878
• Género Paritanus Verrall, 1909
• Género Phileris Tsacas & Weinberg, 1976
• Género Philonicus Loew, 1849
• Género Stilpnogaster Loew, 1849
• Género Templasilus Peris, 1957
• Género Tolmerus Loew, 1849
• Género Yksdarhus Hradsky & Huttinger, 1983

Machimus sp (probablemente M. rusticus)

Presa

Filo Arthropoda
Subfilo Hexapoda
Clase Insecta
Orden Odonata
Suborden Zygoptera
Familia Calopterygidae Selys, 1850
Género Calopteryx Leach, 1815

Del Género Calopteryx Leach, 1815 solamente tenemos tres especies en la Península ibérica:

• Calopteryx haemorrhoidalis (Vander Linden, 1825)
• Calopteryx virgo (Linnaeus, 1758)
• Calopteryx xanthostoma (Charpentier, 1825)

Calopteryx virgo (cadáver)

Leptinotarsa decemlineata (Say,1824): el escarabajo de la patata

Veamos a otro coleóptero polífago del Infraorden Cucujiformia

Como sabemos el infraorden Cucujiformia lo subdividimos en:

• Superfamilia Chrysomeloidea
• Superfamilia Cleroidea
• Superfamilia Cucujoide
• Superfamilia Curculionoidea
• Superfamilia Lymexyloidea
• Superfamilia Tenebrionoidea

La Superfamilia Chrysomeloidea la subdividimos a su vez en:

• Familia Oxypeltidae Lacordaire, 1868
• Familia Vesperidae Mulsant, 1839
• Familia Disteniidae Thomson, 1861
• Familia Cerambycidae Latreille, 1802
• Familia Megalopodidae Latreille, 1802
• Familia Orsodacnidae Thomson, 1859
• Familia Chrysomelidae Latreille, 1802

La familia Chrysomelidae es uno de los grupos con mayor riqueza específica dentro del orden Coleoptera, con más de 35,000 especies descritas a nivel mundial, principalmente de hábitos fitófagos. Muchos crisomélidos son de importancia económica, ya que se convierten en plagas de plantas cultivadas, mientras que otras especies pueden emplearse como controladores biológicos; en el ámbito ecológico, los crisomélidos forman un eslabón importante de las redes tróficas. Además, la gran riqueza específica en esta familia y su rol como grupo funcional fitófago, los convierten en un potencial indicador de la biodiversidad de una región, la calidad ambiental, y como un taxón para el control de cambios en áreas naturales. Esta Familia la clasificamos de la siguiente manera:

• Subfamilia Sagrinae Leach, 1815
• Subfamilia Bruchinae Latreille, 1802
• Subfamilia Donaciinae Kirby, 1837
• Subfamilia Criocerinae Latreille, 1804
• Subfamilia Chrysomelinae Latreille, 1802
• Subfamilia Galerucinae Latreille, 1802
• Subfamilia Lamprosomatinae Lacordaire, 1848
• Subfamilia Cryptocephalinae Gyllenhal, 1813
• Subfamilia Eumolpinae Hope, 1840
• Subfamilia Spilopyrinae Chapuis, 1874
• Subfamilia Synetinae LeConte and Horn, 1883
• Subfamilia Protoscelidinae† Medvedev, 1968

La Subfamilia Chrysomelinae está formada por individuos con una longitud total entre 3 y 22 mm. Coloraciones variadas que van de amarillo claro a negro incluyendo tonos metálicos. Forma alargada a convexa. Cabeza regularmente prognata, superficie punteada irregularmente en la mayoría; ojos débilmente emarginados; antenas clavadas o capitadas; inserción antenal ampliamente separada; clípeo ovalado, trapezoidal o triangular; labro rectangular; mandíbulas bidentadas, tridentadas y tetradentadas, de forma triangular o rectangular. Protórax usualmente ancho, en ocasiones convexo; prosterno plano, proyectado o hendido; proceso prosternal en algunos surcado, ápice de formas variadas; procoxas transversas, ampliamente separadas; escutelo triangular, semitriangular u ojival; élitros convexos cubriendo el abdomen, lisos o con puntuaciones distribuidos irregularmente, con bandas longitudinales o manchas; epipleura de grosor variado en la parte anterior. Uñas conadas, parcialmente divergentes o completamente divergentes. Abdomen de coloración variada, de amarillo claro a tonalidades negras o metálicas; la mayoría con puntos distribuidos irregularmente. Se asemejan a Eumolpinae, pero se distinguen por las coxas transversas, el lóbulo ventral del tarsomero iv generalmente entera o débilmente emarginado en el ápice, en los eumolpinos el lóbulo es bilobado (Arnett, 2000).

Distinguimos dentro de esta Subfamilia las siguientes tribus

• Tribu Chrysomelini
• Tribu Gonioctenini
• Tribu Phyllocharitini
• Tribu Timarchini

Dentro de la Tribu Chrysomelini englobamos los siguientes géneros:

• Género Cadiz Andrews & Gilbert, 1992
• Género Calligrapha Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Chrysolina Motschulsky, 1860
• Género Chrysomela Linnaeus, 1758
• Género Entomoscelis Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Gastrophysa Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Gonioctena Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Labidomera Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Leptinotarsa Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Microtheca Stål, 1860
• Género Paropsisterna
• Género Phaedon Megerle von Mühlfeld in Dahl, 1823
• Género Phratora Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Plagiodera Chevrolat in Dejean, 1836
• Género Prasocuris Latreille, 1802

El género Leptinotarsa Chevrolat, 1836 se compone de individuos con una longitud entre 8 y 13 mm, de forma ovalada y convexa. Cabeza con antenas clavadas; clípeo trapezoidal; mandíbulas conadas, bidentadas; dientes redondos, con puntos distribuidos irregularmente, en las partes laterales externas; cara interna con puntos distribuidos irregularmente, superficiales. Pronoto rectangular, transverso, con los lados en el tercio apical, ángulo apical proyectado hacia delante, superficie con puntos distribuidos irregularmente, generalmente de color amarillo, verde o azul metálico. Escutelo ojival a triangular; superficie con escasos puntos distribuidos irregularmente. Élitros de 3-4.5 mm de ancho, convexos, generalmente de color amarillo claro, anaranjado, verde y azul metálicos, algunos con tonos crema claro u obscuro, superficie con puntuaciones en el margen de los diferentes patrones de manchas, generalmente de color azul metálico y negras. Epipleura más ancha en la parte anterior, de 7 a 8 veces más angosta que el ancho del élitro, margen interno más ancho que el externo. Prosterno plano, transversal, liso, punteado finamente, algunos con el margen posterior bilobado, glabro a pubescente. Proceso prosternal generalmente no surcado, ápice bilobado, punteado finamente; presencia de sedas largas en la cara interna, ápice recto, punteados finamente, presencia de escasas sedas, algunas especies con puntuaciones profundas, ápice redondo con sedas en el margen posterior. Uñas divergentes, generalmente de color marrón obscuro a rojizas.
Algunas de las especies de este género son:

• Leptinotarsa behrensi Harold, 1877
• Leptinotarsa collinsi Wilcox, 1972
• Leptinotarsa decemlineata Say, 1824
• Leptinotarsa defecta Stål, 1859
• Leptinotarsa haldemani Rogers, 1856
• Leptinotarsa heydeni
• Leptinotarsa juncta Germar, 1824
• ptinotarsa lineolata Stål, 1863
• Leptinotarsa peninsularis Horn, 1894
• Leptinotarsa rubiginosa Rogers, 1856
• Leptinotarsa texana
• Leptinotarsa tlascalana Stål, 1858
• Leptinotarsa tumamoca Tower, 1918
• Leptinotarsa typographica
• Leptinotarsa undecimlineata

Leptinotarsa decemlineata (Say,1824)

Sinónimos: Chrysomela decemlineata, Doryphora decemlineata, Polygramma decemlineata

La palabra Leptinotarsa deriva del griego “leptos” que significa, delgado y “tarsos” que significa planta del pie. Decemlineata deriva del latín “decem” que significa diez y “linea, ae” que significa, línea o raya.

Este escarabajo fue descrito en 1824 por Thomas Say a partir de especímenes recogidos en plantas de Solanum rostratum en las Montañas Rocosas (Colorado y México). En 1785 fue introducida en Francia, después se extendió con rapidez por toda Europa. En 1877, el escarabajo de la patata llegó a Alemania, pero fue erradicado. Se ha detectado en Austria (1941), Bélgica (1935), Bulgaria, Checoslovaquia, Francia, Alemania (1914), Hungría (1947), Italia, Polonia (1946), Portugal (1943), Rumania, ex-Unión Soviética (1949), España (1935), Suiza (1937) y ex-Yugoeslavia; localmente establecida en Grecia (1963), Luxemburgo (1936), Holanda (1937), Dinamarca, Finlandia, Gran Bretaña (1939), Noruega (1948), Suecia y el Reino Unido (en setiembre de 1976, se encontró una colonia en reproducción en el Reino Unido, la primera desde 1941-1952 en que fuera erradicado).

Durante la Segunda Guerra Mundial el régimen nazi alemán y los de varios estados satélites de la Unión Soviética usaron este insecto en sus campañas de propaganda, asegurando que estos escarabajos habían sido lanzados por aviones del ejército estadounidense. Después de la guerra también se acusaba a los estadounidenses cuando en 1950 la zona de Alemania ocupada por los rusos, casi la mitad de las plantaciones de patata fueron infectadas por este insecto. En la Unión Europea actualmente existen periodos de cuarentena para este insecto en el Reino Unido, Irlanda, Islas Baleares, Chipre, Malta y las zonas meridionales de Suecia y Finlandia.

En África se ha encontrado en Libia.

Este escarabajo fue un verdadero azote para los cultivos de patata (Solanum tuberosum)  y también berenjena (Solanum melongena), tomate (Lycopersicon esculentum), coles (Brassica oleracea), tabaco y belladona.

Los adultos miden unos de 10 x 6 mm, tiene un cuerpo robusto, ovalado, fuertemente convexo y endurecido. Se distingue fácilmente por su color pardo amarillento sobre el que destacan 5 bandas longitudinales negruzcas en cada élitro; tiene además una docena de pequeñas manchas negras en la parte superior de la cabeza y tórax y otras pardo oscuras o negras en los extremos de las patas.

El ciclo anual del escarabajo de la patata comienza en primavera o principios de verano, cuando emergen del suelo  de froma masiva y en 1-2 días, los escarabajos que pasaron el invierno enterrados en diapausia. El escarabajo realiza entonces un vuelo hasta su alimento. 

Tras la copulación la hembra pone entre 10 y 30 huevos en varias filas ordenadas en la superficie inferior de las hojas; son amarillos o anaranjados pálidos, ovalados, alargados, de 1.2 mm. La ovoposición dura hasta varias semanas, finalizando a mediados de verano (hay hembras muy prolíferas que pueden poner hasta 2000 huevos). Con temperaturas superiores a 12 ºC, los huevos eclosionan entre 4 y 12 días.

Las larvas tienen el abdomen grande y el cuerpo arqueado; sólo dejan de comer para mudar, cuatro veces en 2 o 3 semanas. El primer estadío tiene el abdomen rojo cereza, con las patas y la cabeza de color negro brillante; en el último ya toma un color rojo anaranjado y luego anaranjado pálido, con una línea de varios puntos pequeños negros a cada lado del cuerpo, marcando los espiráculos por donde respira. 

Las larvas originadas en el mismo grupo de huevos permanecen juntas en la misma hoja hasta la primera muda, para luego migrar a las yemas terminales de la planta; en el cuarto estadío, atacan peciolos y tallos, más duros que las hojas. Al madurar caen al suelo y excavan, según las condiciones, más o menos centímetros en el suelo. La pupación se realiza en celdas bien alineadas y tiene una duración de 10 a 20 días, tras los cuales emerge la primera generación de escarabajos.

En las zonas nórdicas de la región mediterránea, estos escarabajos se alimentan y luego se entierran unos 25 - 40 cm para hibernar. En áreas más cálidas, la primera generación de escarabajos comienza la oviposición, pero la fecundidad de las generaciones subsiguientes es menor que la de las primeras o la de los emergentes en primavera y, el número de huevos, también decrece abruptamente un 25 % por mes durante el verano. El número de generaciones está relacionado con la temperatura, variando en alrededor de 4 en las áreas más cálidas de su hábitat (el ciclo se completa en 30 días) y una generación completa y una parcial cerca de los extremos más fríos. Hay algunas áreas frías con sólo 1 generación parcial, donde el escarabajo no puede realmente establecerse en forma permanente.

En general, con clima soleado y una temperatura media diurna de 17-20º C se produce una dispersión masiva y desarrollo, pero si la temperatura no excede los 11 - 14º C y la humedad es alta, ésto no ocurre y la población puede realmente decrecer. El medio principal de dispersión del escarabajo en grandes áreas es el viento, particularmente de la generación de primavera.

Fue eliminado por la implantación masiva de tratamientos pesticidas, resultando hoy en día una curiosidad para los entomólogos.

Megischina rosinae

Vuelvo hoy de nuevo con otro coleóptero polifago del infraorden Cucujiformia y de la Superfamilia Tenebrionoidea.

Ya sabemos que los escarabajos pertenecientes a esta Superfamilia se distribuyen por todo mundo adelante y suelen tener cinco artejos en los tarsos anteriores y medios, y cuatro en los posteriores (fórmula tarsal 5-5-4).

La superfamilia Tenebrionoidea incluye las siguientes familias:

• Aderidae Winkler, 1927
• Anthicidae Latreille, 1819
• Archeocrypticidae Kaszab, 1964
• Boridae C. G. Thomson, 1859
• Chalcodryidae Watt, 1974
• Ciidae Leach, 1819
• Colydiidae Erichson, 1842
• Melandryidae Leach, 1815
• Meloidae Gyllenhal, 1810
• Monommatidae Blanchard, 1845
• Mordellidae Latreille, 1802
• Mycetophagidae Leach, 1815
• Mycteridae Blanchard, 1845
• Oedemeridae Latreille, 1810
• Perimylopidae St. George, 1939
• Prostomidae C. G. Thomson, 1859
• Pterogeniidae Crowson, 1953
• Pyrochroidae Latreille, 1807
• Pythidae Solier, 1834
• Ripiphoridae Gemminger and Harold, 1870
• Salpingidae Leach, 1815
• Scraptiidae Mulsant, 1856
• Stenotrachelidae C. G. Thomson, 1859
• Synchroidae Lacordaire, 1859
• Tenebrionidae Latreille, 1802
• Tetratomidae Billberg, 1820
• Trachelostenidae Lacordaire, 1859
• Trictenotomidae Blanchard, 1845
• Ulodidae Pascoe, 1869
• Zopheridae Solier, 1834

El escarabajo del que hablare hoy pertenece a la Familia  Tenebrionidae Latreille, 1802 que como conocemos se divide en las siguientes Subfamilias

• Subfamilia Lagriinae
• Subfamilia Phrenapatinae
• Subfamilia Zolodininae
• Subfamilia Pimeliinae
• Subfamilia Tenebrioninae
• Subfamilia Alleculinae
• Subfamilia Diaperinae
• Subfamilia Coelometopinae
• Subfamilia Cossyphodinae

La Subfamilia que nos concierne es la Subfamilia Alleculinae Laporte de Castelnau, 1840
Los escarabajos pertenecientes a esta Subfamilia se caracterizan por un cuerpo ovalado, antenas filiformes, patas relativamente largas y tarsos bastante alargados. Sin embargo, su característica más llamativa son los clavos peinados de los tarsos traseros, que muestran dientes finos.

De los 34 géneros que se conocen de esta Subfamilia en Europa tenemos:
 

• Tribu Alleculini Laporte de Castelnau 1840

    Genero Allecula Fabricius 1801
    Genero Hymenalia Mulsant 1856
    Genero Hymenorus Mulsant 1852
    Genero Prionychus Solier 1835

• Tribu Gonoderini Seidlitz 1896

    Genero Gonodera Mulsant 1856
    Genero Isomira Mulsant 1856
    Genero Pseudocistela Crotch 1873

• Tribu Mycetocharini Mulsant 1856

    Genero Gerandryus Rottenberg
    Genero Mycetochara Berthold 1827

• Tribu Omophlini Mulsant 1856

    Genero Cteniopus Solier 1835
    Genero Heliotaurus Mulsant 1856
    Genero Megischia Reitter
    Genero Megischina Solier
    Genero Omophlus Solier 1835
    Genero Podonta Mulsant 1856
    Genero Proctenius Reitter
    Genero Cteniopinus
    Genero Gastrhaema
    Genero Copistethus

En la Península ibérica tenemos 5 especies de tres géneros  de esta ultima tribu, muy difíciles de distinguir entre si, a saber

• Genero Megischia Solier, 1835

    Megischia curvipes (Brullé, 1832)

• Genero Megischina Reitter, 1906

    Megischina rosinae (Seidlitz, 1896)

• Genero Omophlus

    Subgénero Omophlus (Omophlus) Dejean, 1834

        Omophlus (Omophlus) lepturoides (Fabricius, 1787)

    Subgénero Omophlus (Paromophlus) Iablokoff-Khnzorian, 1983

        Omophlus (Paromophlus) picipes (Fabricius, 1792)
        Omophlus (Paromophlus) pubescens (Linnaeus, 1767)

Clave dicotomica para distinguir entre estas especies

(1) Pronoto y elitros  totalmente glabros. Intervalos de las estriaciones convexos y con una puntuación casi imperceptible; epilpleuras visibles casi hasta la cúspide de los elitros; patas anteriores completamente testaceas, tibias y tarsos posteriores y medios testaceos, antenas amarillentas hasta el quinto artejo; tamaño de 11-14 mm .................................... Megischina rosinae (Seidlitz)

(2) Pronoto con una fina vellosidad dorada o grisácea; elitros cubiertos de una fina pilosidad dorada. Intervalos de planos a subplanos, punteado fino pero muy visible; epipleuras con una retracción brusca a nivel de las coxas medias o poco después; todos los fémures de color negro,antenas completamente negras

    (2a) tamaño mediano de 11-14 mm ; proyección proesternal en forma de espolón, especialmente en los machos; tibias medias muy curvadas en el macho; patas completamente negras .....................................Megischia curvipes (Brullé)

    (2b) tamaño mas peque;o 9-11,5 mm; proyección proesternal en forma de punta roma; tibias intermedias sin curvatura en el macho tibias; todos los fémures de color negro y y tibias anteriores y medias de color amarillento...................Omophlus picipes (Fabricius)

El género Megischina Reitter, 1906 es similar en apariencia y morfología a género Omophlus Solier, 1835 del que se distingue por las epipleuras que son regulares y por el adelgazamiento progresivo del ápice de los elitros en contraste con el acortamiento abrupto a la altura de los primeros segmentos abdominales del genero Omophlus. Al igual que otros Omophlini, Megischina rosinae es diurna, fotófila y termo-xerófila, alimentándose de polen de gramíneas y flores de arbustos.

Probable Megischina rosinae (Seidlitz)

Eristalis jugorum

El género Eristalis Latreille, 1804, del que ya he hablado en varias ocasiones, está ampliamente distribuido en las regiones paleártica, neártica y oriental. 

• Kanervo (1938) distinguió varios grupos de especies basándose en la estructura de la terminalia masculina y otros caracteres morfológicos.

• Peck (1988) enumeró 46 especies de Eristalis en el Palaearctico, 22 de ellas como europeas. y Telford (1970) contó 25 para la región Neártica.

• Holinka (1999) revisó el grupo de especies de Eristalis rupium para las Repúblicas Checa y Eslovaca y dio una clave para las especies centroeuropeas.

• Hippa y colaboradores en 2001 hacen revisión completa de las especies de Eristalis paleárticas occidentales en la que discuten sobre la identidad de 20 especies y sus caracteres diagnósticos, mostrando que dos especies, E.stackelbergi Dolezil y Rozkosny y E.vitripennis Strobl, son sinónimos menores de otras especies europeas y reduciendo así el número de especies europeas a 20. También dan una nueva clave y establecen nuevos sinónimos y designan varios lectotipos y neotipos.

• La descripción de Eristalis tecta (Vujic et al, 2004) ha elevado posteriormente el total a 21.

Como ya he comentado en mas de una ocasión con anterioridad, en la Península ibérica podemos encontrarnos unicamente con 11 especies de Eristalis, pero eso no hace que sea fácil a los aficionados Naturalistas determinar la especie de un individuo del genero Eristalis, y mucho menos simplemente viendo fotografiás.

Aunque no lo exprese cada vez que escribo sobre una especie de Insecto y muestre fotografiás, la clasificación que hago es siempre una aproximación, pues me baso unicamente en el análisis de las fotografiás y nunca dispongo del ejemplar para analizarlo y mucho menos disecarlo. En ocasiones he cometido grandes errores de clasificación que otros aficionados me han ayudado a corregir. Otras veces me he dado cuenta yo mismo del error, al ir cada vez analizando mas especies. Así, poco a poco, uno va aprendiendo e incluso haciéndose sus tablas dicotómicas de andar por casa para ayudarse en el análisis de las fotografías.

Precisamente eso es lo que os muestro hoy, una tabla dicotómica de andar por casa con la que pretendo ayudarme cada vez que fotografío una especie del genero EristalisTabla  dicotómica para las especies del Género Eristalis de la Península ibérica


1a. Ojos con dos bandas bien diferenciadas de pelos..……………….....… E. Tenax
1b. Ojos con menos de dos bandas de pelo.......…………………………….................2

2a.  Tórax y tergitos abdominales 3-4 (machos) o 4 (hembras) densamente cubiertos de pelo grueso que es casi tan largo como la longitud media del escutelo (simula un abejorro). Machos con abdomen completamente marrón. Hembras con el último tergito con pelos blancos.............................E. intricarius
2b. Tórax y tergitos abdominales con pelos cortos o sin pelo.…….…….…............3

3a. Rostro sin ninguna banda vertical negra (o esta es muy clara y estrecha en los individuos de mayor edad). Arista plumosa.....………………..…. E.arbustorum
3b.  Rostro con banda vertical negra bien definida...……………………….......…....4

4a.  Cabeza alargada hacia abajo y adelante y rostro con amplia linea facial negra....……………..................................................................................................5
4b.  Cabeza no alargada hacia abajo y adelante y linea facial negra mas fina.....…………….........................................................................................…….....6

5a.  Tercer fémur negro en su base. Franja posterolateral de pelos (generalmente negro en los machos, pero a veces parcialmente, o predominantemente amarillento en las hembras) en el fémur delantero notablemente más densa que la franja posterolateral en el fémur posterior. Tarsómeros 4 + 5 de todas las patas de pelo pálido dorsalmente. ..………………………………...........................................................……....E. jugorum
5b. Base del tercer fémur pálida. Tarsómeros 4 + 5 pueden ser predominantemente de pelo claro o predominantemente de pelo negro, dorsalmente....……………....................................……………………..…. E. horticola

6a. Tercer fémur engrosado, más del doble de grueso que el primer y segundo fémur en dos tercios de su longitud. Tercer metatarso pálido…….…... E. alpinus
6b. Tercer fémur no engrosado.....................................…………………………….....7

7a. Tercera tibia completamente naranja..…………………......……... E. cryptarum
7b.  Tercera tibia negra.....……………………………………….............................…....8

8a. Todos los tarsos de las patas delanteras y medias completamente amarillas/anaranjadas……………………………...........................…..……E. pertinax
8b. Tarsos oscuros.……………………………………………….............................…......9

9a.  Alas hialinas con un pterostigma cuadrado (incluidas las venas circundantes que son más cortas que anchas).....…………............. E. interruptus
9b. Pteroestigma del ala mas largo que ancho..……………….....................…......10

10a. Pterostigma 2-3 veces más largo que ancho (medido con las venas limítrofes); subcostal a menudo parduzca-negruzca en la mitad superior.................................................................................................. E. rupium
10b.  Pterostigma 4-6 veces más largo que ancho, amarillo (hembras) o gris claro (machos) con borde oscuro....………………………………….............. E. similis


Otras características, ademas de las utilizadas en la tabla dicotomica, que pueden ser útiles para diferenciar estas especies entre si sin llegar a analizar los genitales son las siguientes

• Eristalis tenax. El tercer artejo de la antena es de color marrón oscuro o negro. El segundo tergito tiene marcas laterales amarillas, anaranjadas o rojizas. No posee pelos en los lados. Todos los tarsos son de color negro. 

• Eristalis arbustorum.  Alas hialinas y que presentan la arista plumosa, al menos en la mitad basal. Fémures de las patas de color negro, mientras que la base de las tibias es rojiza. Segunda tibia con el cuarto superior de color negro. 

• Eristalis jugorum.  Pterostigma negro, cuadrado; ala con marcas negras débiles.

• Eristalis horticola. Márgenes posteriores de los tergitos amarillos ligeramente anaranjados, menos que jugorum pero más que otros eristalis. Segundo tergito abdominal completamente opaco; tercer y cuarto tergitos con pelo claro o con un pequeño parche de pelos negros en el margen posterior. Pteroestigma ligeramente más largo que profundo y ala con marcas oscuras.

• Eristalis alpinus. Parte posterior del tórax con la mitad frontal fuertemente (hembras) o algo (machos) pruinosa, creando un contraste con la mitad posterior. Hembra: marca cuadrada oscura en el ala; abdomen oscuro, a lo sumo segundo tergito con marca amarilla, tergitos opacos solo en la parte posterior. Macho: ala casi hialina.

• Eristalis cryptarum.  tercer segmento de las antenas pálido. El rostro, bajo los ojos con pelo negro o blanco y negro. pleura torácica y coxas de todas las patas casi completamente negras, con abundantes pelos negros y algunos pelos pálidos. Arista del ala desnuda.

• Eristalis pertinax. Ala con una banda oscurecida difusamente en la parte media. Machos con el abdomen triangular.

• Eristalis interruptus. Rostro con pruinosidad densa, franja negra bien marcada y relativamente estrecha. Arista plumosa mitad basal. El cuerpo es de pelo amarillo. Los pelos del cuerpo son cortos. El fémur es negro en el macho. Los metatarsos traseros están oscurecidos. Todos los tarsos son extensamente negros. 

• Eristalis intricarius. El tórax y el abdomen están cubiertos de pelos largos; tergitos abdominales 3-4 (machos) o 4 (hembras) densamente cubiertos de pelo grueso que es casi tan largo como la longitud media del escutelo (simula un abejorro). Squamulae de color gris-negro. Callo postalar con pelos negros. Machos con abdomen completamente marrón. Hembras con el último tergito con pelos blancos.

• Eristalis rupium. Tórax con denso pelaje anaranjado-rojizo.  Tergitos tercero y cuarto completamente brillantes, con pelos erectos negros; el resto de su superficie negro mate; tergito 2 intensamente brillante en toda su superficie.

• Eristalis similis. Macho con el abdomen cuadrado y bastante oscuro. Las hembras se parecen mucho a E. pertinax.

En esta ocasión intente utilizar esta tabla para aproximarme a la especie Eristalis jugorum, aunque ya sabéis que no es difícil que me confunda.

Eristalis jugorum Egger, 1858

Eristalis jugorum hembra

Esta especie se extiende desde Polonia al sur de los Pirineos y el norte de España; desde Bélgica (Ardennes) hacia el este a través de el sur de Europa (norte de Italia, la antigua Yugoslavia, Grecia) en partes europeas de Rusia y hasta el Cáucaso, Turquía e Irán.

Su ambiente preferido son las corrientes de agua dulce / bosque; arroyos dentro del bosque Fagus / Picea, por lo que es frecuente encontrarla al lado de arroyos, senderos y claros cerca del agua; usualmente vuela a 3 m del suelo; los machos con frecuencia patrullan los rodales de las plantas en flor junto al agua. Flores visitadas: umbelíferas blancas; Chrysanthemum leucanthemum, Knautia, Polygonum, Rubus idaeus, Scabiosa, Sorbus aucuparia, Succisa.

Período de vuelo: mayo / julio (y agosto a altitudes más altas). 

Eristalis jugorum hembra

Los machos de E.jugorum pueden distinguirse de los de todas las especies relacionadas por la franja extremadamente densa de pelos gruesos (por lo general completamente negros) que cubren por completo la superficie posterolateral de la fémur anterior. Esta franja es notablemente más gruesa que la franja en la superficie dorsal de la fémur posterior. En las otras especies, estas dos franjas de pelo son de densidad equivalente y los pelos son de grosor normal. Además, en estas otras especies (excepto E.rupium), la franja de la superficie posterolateral del fémur delantero rara vez es predominantemente de color negro. 

Eristalis jugorum hembra

La hembra de E.jugorum se puede distinguir por el hecho de que la parte inferior de su cara se prolonga en una extensión inusual, de modo que, en vista lateral, la línea más corta entre el ojo y el medio del borde superior de la boca es más corta que la línea más corta entre el ojo y la punta anterior del borde lateral de la boca. En las hembras de especies relacionadas, estas dos líneas tienen la misma longitud, o entre el ojo y el medio del borde de la boca superior es la más larga.

Eristalis jugorum hembra